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基于石英和載玻片的微電極制備工藝研究*

2014-09-25 08:15:14張曉飛譚秋林熊繼軍薛晨陽
傳感器與微系統 2014年7期
關鍵詞:酵母菌

張曉飛, 張 洋, 譚秋林, 孫 東, 熊繼軍, 薛晨陽

(1.中北大學 電子測試技術重點實驗室,山西 太原 030051;2.中北大學 儀器科學與動態測試教育部重點實驗室,山西 太原 030051;3.香港城市大學 機械及生物醫學工程系,香港 九龍 999077)

0 引 言

微流控芯片技術在環境監測、分析化學、生物醫藥等領域有著廣泛的應用。在微流控芯片的設計中,電極常被用作檢測電極、控制電極、電滲流驅動電極、加熱及溫度傳感元件等。介電泳技術作為微流控芯片技術的重要組成部分,成為高通量微粒分離、捕獲和操縱研究的熱點。微流控芯片以其集成化、自動化和微型化的優勢在環境監測、分析化學、生物醫藥等領域有著廣泛的應用前景。近年來,各種材料的芯片不斷涌現,有單晶硅片、石英、玻璃和有機聚合物等[1]。玻璃和石英有很好的電滲和優良的光學性能,兩者的表面吸附和表面反應能力易于對表面進行改性,具有良好的化學惰性,作為電極基底散熱效果好[2]。在用紫外分光光度法檢測的微流控芯片中,最好采用石英基底[3]。聚二甲基硅氧烷(polydimethylsiloxane,PDMS)材料易于成型和鍵合,具有良好的生物相容性、透光性、電絕緣性和化學惰性,常用來制作微流控芯片的微通道。

為進一步證實電極制造方法的實用性,本文選用了由載玻片作為基底的PDMS—玻璃微流控芯片,進行酵母菌細胞的正負介電泳實驗[4~6]。

本文以較常見的叉指型電極為例,基于光刻工藝中各工藝參數要求,重點研究以石英片和載玻片為基底的電極的制備工藝。制得的2種不同基底的電極,采用對比度、精度等關鍵參數進行分析,最終確定選用載玻片作為芯片基底并獲得其最佳工藝參數,制作帶電極的PDMS—玻璃微流控芯片,通過實驗,成功觀察到酵母菌細胞的正、負介電泳現象。

1 實驗部分

1.1 設備和材料

儀器包括:勻膠機(KW—4A);烘臺(EH20B,Lab Tech);光刻機(URE—2000A,中國科學院微電子研究所);磁控濺射鍍膜機(JTRC—550型);超聲波清洗機(SB—5200 DT,寧波新芝生物科技股份有限公司);Harrick等離子清洗機(PDC—32G—2);真空干燥箱;光學觀察平臺(實驗室自制);函數信號發生器(GWIUSTEK)。

研究中所用試劑包括:丙酮、乙醇(天津市富宇精細化工有限公司);去離子水(實驗室自制);正性光刻膠(RZJ304 25 mpa.s,蘇州瑞紅);正性光刻膠顯影液(RZX—3038);正性光刻膠剝離液(RBL—3368);SU—8 2050光刻膠(MICRO CHEM);SU—8 2050剝離液(蘇州瑞紅);DC—184(道康寧);安琪釀酒高活性酵母菌(安琪酵母股份有限公司)。耗材為2 in(1 in=2.54 cm)單面拋光硅片(浙江立晶光電科技有限公司);載玻片(25.4 mm×76.2 mm×1 mm,帆船牌7101);2 in雙面拋光石英片(1 mm厚,連云港晶圣石英制品有限公司)。

1.2 叉指型電極微流控芯片的加工過程

叉指型電極微流控芯片的制作工藝流程如圖1所示。實驗中掩模版均為正版(所需圖形為透光部分)。電極的制作流程為:將基底(載玻片或石英片)依次用去離子水、丙酮、乙醇、去離子水超聲清洗各5 min,用氮氣吹干后在基底表面用勻膠機旋涂RZI—304正性光刻膠得到圖1(a),經前烘、曝光、顯影、后烘、濺射、剝離后制得帶電極基底如圖1(b)所示。PDMS微流腔體的加工過程為:將清洗(清洗方法同基底)后的硅片用勻膠機旋涂SU—8膠,經前烘、曝光、后烘、顯影后制的反模如圖1(c)所示,用道康寧SYLGARD 184硅橡膠雙組分(基本組分與固化劑按10∶1重量比)混合后,進行倒模如圖1(d)所示,95 ℃固化2 h后得到微流腔體如圖1(e)所示。最后將帶電極的基底與制得的PDMS腔用等離子清洗機,在氧環境下處理3~5 min后鍵合制得圖1(f)所示微流控芯片。

圖1 微流控芯片制作工藝流程

2 加工步驟

本文設計的電極結構如圖2所示,電極寬度和間距均為10 μm。實驗中載玻片和石英片的勻膠轉速和勻膠時間相同,參考廠商提供的條件,分別為3 000 rpm,40 s,在此參數下的勻膠厚度為1.8 μm。光刻機汞燈的曝光強度為40~45 mJ/cm2。JTRC—550型磁控濺射鍍膜機在工藝參數為被底真空5.0×10-3Pa,氬氣流量30 mL/min,濺射電流0.4 A,濺射時間為10 min,在工作氣體壓強為6.0×10-2Pa條件下,濺射厚度為700 nm的Au。前烘溫度100 ℃ ,前烘時間90 s,曝光時間和顯影時間見表1,去離子水沖洗時間60 s,后烘溫度100 ℃ ,后烘時間120 s,剝離液沖洗時間120 s。

圖2 電極結構設計圖

表1 2種基底的曝光和顯影時間

圖3 不同曝光和顯影時間得到的電極CCD照片

3 結果和討論

3.1 曝光和顯影時間對叉指型電極的影響

如圖3所示:載玻片(2)質量效果最好,電極對比度好,滿足實驗用電極的要求。載玻片(1)曝光時間過長,比(2)長5 s,曝光時在掩模圖形的邊緣發生衍射,使得圖形邊緣部分感光,電極部分相對變寬且邊緣不整齊。載玻片(3)曝光時間太短,光刻膠反應不完全。載玻片(4)顯影時間過長,比(2)長30 s,導致光刻膠膜溶脹邊緣被進一步顯掉,電極邊緣變圓滑,對比度低。載玻片(5)顯影時間比(2)短30 s,顯影不足,電極處光刻膠有殘余,經剝離后電極破損。

對于石英片基底:石英片(1)的工藝參數與載玻片(2)相同,電極表面粗糙,可能是由于曝光不足或者顯影時間過短。石英片(2)和(3)是分別增加曝光時間和顯影時間的結果,電極表面粗糙仍沒有改善。石英片(4)比(1)同時增加曝光和顯影時間,得到的電極質量效果較好。石英片(5)是進一步增加曝光時間的結果,電極表面仍有破損。由于石英片本身表面光滑度不夠,電極不規整,對于尺寸小的電極,不宜選用石英片作為基底。

3.2 酵母菌細胞的正負介電電泳現象

將帶有電極的載玻片和PDMS通道鍵合后得到如圖4所示的成品芯片。運用Harrick等離子清洗機將通道和電極基底不可逆鍵合,使用時用注射器注入酵母菌液,流體流動平滑,無側漏和變形現象,說明此鍵合方法鍵合效果良好,滿足實驗要求。

圖4 加工出的帶電極的PDMS—玻璃微流控芯片

運用實驗操作平臺進行酵母菌細胞的正負介電泳實驗,以此來證明運用本文中的工藝參數,制作的電極可用于實際應用。實驗用酵母菌液的濃度為2×108個/mL,介質電導率σ=30 μS/cm,所加交流電場的峰峰值為8 V。實驗結果如圖6所示,無外加電場時酵母菌細胞的分布如圖5(a)所示;當所加交流電場的頻率為5 kHz時,酵母菌細胞向遠離電極的方向移動,產生負介電泳現象,圖5(b),(c)分別是tf=5 kHz=2 s和tf=5 kHz=6 s的細胞分布;當所加交流電場的頻率為5 MHz時,酵母菌細胞向靠近電極的方向移動,產生正介電泳現象,圖5(d),(e)分別是tf=5 MHz=4 s和tf=5 MHz=8 s時細胞的分布,即運用此電極芯片成功觀察到酵母菌細胞的正負介電泳現象。

圖5 交流電場8 V頻率分別為5 kHz和5 MHz酵母菌細胞分布情況

4 結束語

通過研究以石英片和載玻片為基底的電極的制備工藝,得到加工線寬10 μm電極,兩者各自的最佳工藝參數。在勻膠機轉速3 000 rpm、勻膠時間40 s、前烘溫度100 ℃、前烘時間90 s、曝光強度40~45 mJ/cm2、后烘溫度100 ℃、后烘時間120 s、剝離液沖洗時間120 s相同時,2種基底的最

佳工藝參數分別是:載玻片曝光時間5 s,顯影時間120 s;石英片曝光時間8 s,顯影時間150 s。此外,當電極尺寸較小時,由于石英片表面光滑度不夠,應選用載玻片作為基底。選用載玻片制作叉指型電極的PDMS—玻璃微流控芯片,通過實驗,成功觀察到酵母菌細胞的正、負介電泳現象。證明本文的電極制造工藝可成功應用于實際實驗,實驗過程中,無滲液和通道變形現象,說明制造的芯片電滲性能穩定,滿足微流控芯片中電極的制造要求。

參考文獻:

[1] 林炳承,秦建華.圖解微流控芯片實驗室[M].北京:科學出版社,2008: 32,35.

[2] Ruano Jesus M,Benoit Vincent,Aitchison J Stewart,et al.Flame hydrolysis deposition of glass on siliconfor the integration of optical and microfluidic devices [J].Anal Chem,2000,72(5): 1093-1097.

[3] Destgeer Ghulam,Lee Kyung Heon,Jung Jin Ho,et al.Conti-nuous separation of particles in a PDMS microfluidic channel via travelling surface acoustic waves (TSAW) [J].Lab on a Chip,2013,13: 4210-4216.

[4] Doh Il,Cho Young-Ho .A continuous cell separation chip using hydrodynamic dielectrophoresis (DEP) process [J].Sensors and Actuators A,2005,121(1): 59-65.

[5] Hughes M P .Strategies for dielectrophoretic separation in laboratory-on-a-chip systems [J].Electrophoresis,2002,23(16): 2569-2582.

[6] Huang Y,Holzel R,Pethig R,et al.Difference in the AC electrodynamics of viable and non-viable yeast cells determined through combined dielectrophoresis and electrotation studies [J].Phys Med Biol,1992,37(7):1499-1517.

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