羅大衛,鄒海東,劉 堃,鄭 志,孫曉東,許 迅,朱弼珺
(上海交通大學附屬第一人民醫院眼科 200080)
糖尿病視網膜病變(diabetic retinopathy,DR)是糖尿病(diabetes mellitus,DM)最常見、最嚴重的并發癥之一,也是成年人低視力和盲的主要原因[1]。DR發病機制迄今尚未完全闡明,且無有效的治愈方法,早期發現、早期治療對延緩其進展至關重要[2]。一氧化氮(NO)作為一種重要的血管活性物質,與DR中毛細血管閉塞、微循環障礙、內皮細胞增殖相關[3]。一氧化氮合成酶(NOS)是NO合成過程中的關鍵酶,可直觀反映NO在DR中的作用機制[4]。氨基胍是一類NOS抑制劑,可以抑制NOS的活性,對DR等具有一定的治療效果[5],但是其作用途徑及機制尚不明確,因此,研究氨基胍治療DR的機制可以指導臨床用藥,對開發新的治療藥物具有一定的指導作用。
1.1 材料 (1)實驗動物:健康雄性 Wistar大鼠共60只,體質量180~200g,由安徽醫科大學實驗動物中心提供,合格證號:SYXK(皖)2012004。在普通環境下(通風,溫度18~23℃,濕度50%~60%)飼養,自由飲水。(2)實驗試劑與儀器:氨基胍(AG,Sigma);胰激肽原酶(常州千紅生化制藥);鏈脲佐菌素(STZ,Alexi);DMEM,誘導型 NOS(iNOS)、內皮細胞型NOS(eNOS)、神經型 NOS(nNOS)ELISA試劑盒購自碧云天;蛋白質提取試劑盒(碧云天),iNOS、eNOS、nNOS抗體,羊抗鼠二抗,鼠β-actin抗體購自北京中杉金橋,手術器材,CO2培養箱,光學顯微鏡,酶標儀,紫外分光光度計,離心機。
1.2 方法
1.2.1 動物分組及造模 將60只大鼠分為糖尿病組、氨基胍治療組和對照組,每組20只。氨基胍治療組和糖尿病組大鼠使用STZ制造糖尿病模型。按50mg/kg稱取STZ溶于pH為4.4的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液,對禁食12h的大鼠進行腹腔注射STZ造模,注射后24~48h取尾血測血糖。造模成功標準:血糖大于16.65mmol/L,對照組20只僅腹腔注射等體積的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液。
1.2.2 給藥方法 氨基胍治療組大鼠每天灌胃給藥氨基胍100mg/kg,糖尿病組和對照組大鼠予等量的生理鹽水灌胃。連續灌胃給藥14d后,處死大鼠取出雙眼眼球,用生理鹽水清洗,一只放于4%多聚甲醛中固定過夜后存放于70%乙醇中,用于HE染色;另一只存放于-80℃冰箱中,用于 Western blot和PT-PCR檢測。血液在室溫下靜置0.5h后放于4℃冰箱中過夜,第2天離心后取出上清液存放于4℃冰箱中,用ELISA檢測。
1.2.3 HE染色 多聚甲醛固定過的眼球標本用石蠟包埋,連續切片,厚度5μm,常規HE法染色。
1.2.4 ELISA檢測大鼠血清iNOS、eNOS、nNOS水平 大鼠血液靜置過夜后離心,取上清液,使用iNOS、eNOS、nNOS酶聯免疫試劑盒檢測血清中iNOS、eNOS、nNOS水平。
1.2.5 Western blot檢測大鼠視網膜中iNOS、eNOS、nNOS表達水平 將大鼠眼球組織塊取出,剪碎后用蛋白質提取試劑盒提取蛋白,18 000r/min離心1h,去上清液,固定后進行蛋白質定量,然后使用SDS-PAGE電泳分離,轉移到纖維膜,封閉。在漂洗后敷iNOS、eNOS、nNOS抗體(1∶500)和β-actin抗體(1∶300),TPBS漂洗后敷二抗(1∶5 000),ECL顯色,曝光。
1.2.6 PT-PCR測定iNOS、eNOS、nNOS mRNA表達 將眼球勻漿后,用Trizol法提取總RNA,然后取2μg RNA用逆轉錄試劑盒合成cDNA,PCR擴增,擴增條件為50℃2min,95℃10min,95℃15s,60℃1min,40個循環。95℃15s,60℃1min,95℃15s,60℃15s。結果采用SDS軟件進行2-ΔΔCT法相對定量分析。引物序列:eNOS上游引物5′-GGA GAG ATC CAC CTC ACT GTA GC-3′,下 游 引 物 5′-CAC ATA GGT CTT AGG G-3′,擴增產物長度421bp;nNOS上游引物5′-GTG GAG GTG CTG GAG GAG TTC-3′,下游引物5′-CGG ATT CAT TCC TTT GTG TTG-3′,擴增產物長度374bp;iNOS上游引物 5′-CAA TAA CCT GAA GCC CGA AGA C-3′,下游引物5′-GTA ATC CTC AAC CTG CTC CTC AC-3′,擴增產物長度 496bp;β-actin上游引物5′-CCG TAA AGA CCT CTA TGC CAA C-3′,下游引物5′-ACT CAT CGT ACT CCT GCT TGC T-3′,擴增產物長度227bp。
1.3 統計學處理 采用SPSS18.0統計軟件進行數據分析,計量資料采用x±s表示,多樣本均數比較采用 One-way ANOVA分析,檢驗水準α=0.05,多樣本組間比較采用方差分析,以P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 3組大鼠視網膜病理組織學HE染色比較 通過光學顯微鏡觀察HE染色的大鼠視網膜切片,結果發現,對照組大鼠組織結構清晰,完成,染色較為均勻,神經節細胞排列均勻。糖尿病組大鼠缺損最為明顯,神經節細胞減少。氨基胍治療組大鼠缺損不明顯,神經節細胞略少于正常大鼠。見圖1。

圖1 各組視網膜切片HE染色(×100)
2.2 3組大鼠血清中NOS水平比較 檢測結果發現,氨基胍治療組、對照組iNOS水平顯著低于糖尿病組,對照組nNOS水平明顯低于其他兩組,3組eNOS水平差異無統計學意義(P>0.05)。氨基胍治療組與糖尿病組比較,iNOS蛋白表達降低(P<0.05),與對照組比較差異無統計學意義(P>0.05)。見表1。
表1 3組大鼠血清中NOS水平比較s,n=20,U/mgprot)

表1 3組大鼠血清中NOS水平比較s,n=20,U/mgprot)
a:P<0.05,與糖尿病組比較;b:P<0.05,與對照組比較。
組別iNOS eNOS nNOS糖尿病組 0.393±0.092 0.263±0.051 0.313±0.031b氨基胍治療組 0.285±0.063a0.257±0.066 0.286±0.043b對照組0.276±0.076 0.249±0.058 0.216±0.074
2.3 3組大鼠NOS蛋白表達比較 Western blot結果顯示,對照組大鼠視網膜中iNOS、eNOS、nNOS蛋白表達較低,糖尿病組較高。氨基胍治療組中iNOS的蛋白表達明顯弱于糖尿病組(P=0.039),與對照組比較差異無統計學意義(P>0.05),見圖2、3。

圖2 3組大鼠視網膜中NOS蛋白表達比較

圖3 3組大鼠血清中NOS蛋白表達比較
2.4 3組大鼠NOS mRNA表達比較 PT-PCR檢測顯示,氨基胍可以抑制iNOS mRNA的高表達,對eNOS mRNA和nNOS mRNA的高表達影響不明顯,見表2。
表2 各組大鼠NOS mRNA表達比較s,n=20)

表2 各組大鼠NOS mRNA表達比較s,n=20)
a:P<0.05,與糖尿病組比較。
組別iNOS mRNA eNOS mRNA nNOS mRNA糖尿病組1.684±0.280 1.413±0.250 1.553±0.130氨基胍治療組 1.166±0.130a1.378±0.230 1.399±0.180對照組1.209±0.210 1.105±0.190 1.018±0.210
DR是一種多因素、多作用途徑的糖尿病并發癥,嚴重危害人類生命健康。DR的發生受到多種條件控制,例如視網膜新生血管,細胞凋亡等等[6],早期糖尿病的研究主要集中在細胞凋亡,細胞凋亡與DR的發病有著密切的聯系[7]。研究發現,氨基胍會引起蛋白非酶糖基化終產物(AGEs)增加,AGEs可以通過使Bc-l2/Bax的比例降低以及caspase3的活化,從而引起毛細血管周細胞凋亡[7-8]。同時,氨基胍作為一種NOS抑制劑,對NOS具有顯著的抑制作用[8-9],并有文獻報道,氨基胍對DR的治療作用與抑制NOS有關,但是其抑制作用是否具有NOS亞型選擇作用目前并不清楚,需要進一步的研究證實[9-10]。
DR都會引起視網膜細胞的缺損,神經節細胞減少[10-11],降低視網膜細胞的缺損,增加神經節細胞數量是治療視網膜病變的主要目的。本研究發現,使用氨基胍的大鼠視網膜細胞缺損情況減輕,神經節細胞明顯增多。說明氨基胍可以抑制糖尿病大鼠的視網膜病理性病變。
NOS分為iNOS、nNOS、eNOS 3個亞型[11-12],它們在體內起到不同的作用。研究發現,糖尿病大鼠視網膜中iNOS mRNA水平明顯提高,iNOS陽性細胞數也顯著增多,且陽性細胞主要分布在INL[13]。有研究表明,在正常大鼠視網膜中,iNOS免疫反應沉淀物主要出現在INL的 Müller細胞中[12-15],而此細胞是維系視網膜血管結構的重要的神經膠質細胞[16]。由此可推測iNOS產生的過多的NO有可能對血管造成損傷。因此,抑制iNOS的表達可能對治療DR具有一定的效果。本研究發現,氨基胍對iNOS的水平及表達具有顯著的抑制作用,且具有選擇性。
本研究證實了氨基胍可以改善DR,且作用途徑與選擇性地抑制iNOS有關。對于氨基胍參與多作用途徑治療糖尿病微血管病變提供了試驗依據,同時,為研究和開發新型的治療DR藥物起到一定的指導作用。
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