外源DNA導入番茄引起后代性狀變異的初步研究

丁錦平

摘要：通過提取大豆DNA，采用浸胚法在不同的濃度和溫度下來處理番茄種子，觀察后代植株一系列生理指標的變化，通過用紫外分光光度法測定后代植株葉綠素含量，用聚丙烯酰胺凝膠電泳（PAGE）對植株同工酶（SOD）進行分析，發現經處理的番茄種子，后代植株性狀產生變異：葉綠素總含量與對照相比出現增加，其中DNA濃度為136.50 μg/mL經4 ℃浸泡避光處理的番茄種子總葉綠素含量變化最大，比對照增加了116%；同工酶（SOD）譜帶一致，沒有新的譜帶出現，但酶活發生了變化。

關鍵詞：番茄；浸胚法；外源DNA；生理指標

中圖分類號：F3文獻標識碼：A文章編號：0439-8114（2014）10-2344-03

Trait Variation of Offsprings from Tomato Transfermed by Exogenous DNA

DING Jin-ping

（Key Laboratory of Plant-Microbe Interactions，College of Life Science，Shangqiu Normal University，Shangqiu 476000，Henan，China）

Abstract： Tomato seeds were treated in different concentrations of soybean DNA and temperature. Changes of a series of physiological indexes of the offsprings were observed. The content of chlorophyll of offsprings was determined by uv spectrophotometry. Polypropylene gel electrophoresis（PAGE）was used to analyze the peroxidase isozyme（SOD） of plants. Results showed that content of total chlorophyll was increased compared with contrast. When the DNA concentration was 136.50 μg/mL and tomato seeds were soaked lightly at 4 ℃， content of total chlorophyll had the biggest changes with increase of 116%. Band of peroxidase isozyme （SOD） was consistent. There was no new band， but the activity of enzyme was changed.

Key words： tomato； dip embryo law； exogenous DNA； physiological indicators

基金項目：河南省科技廳科技攻關項目（122102110213）；河南省基礎與前沿技術研究項目（122300410149）

番茄（Lycopersicon esculentum Mill.）為茄科，茄屬。它是一種含有多種維生素和營養成分的蔬菜，據營養學家研究測定，每人每天食用50～100 g鮮番茄，即可滿足人體對幾種維生素和礦物質的需要。另外，番茄中的番茄紅素具有很強的抗氧化活性，能夠抗衰老、降低心血管疾病的危險性和防癌等。但其蛋白質含量較少，如能將大豆的基因轉入到番茄中，創造高蛋白含量的番茄品種，既能豐富其營養價值，又能拓寬番茄的遺傳物質基礎，豐富其遺傳類型，創造新的種質資源。

利用外源DNA直接導入技術培育農作物新品種或創建新種質是20世紀70年代以來在中國創立的一個育種新途徑。它以植物為受體，帶有目的性狀的外源遺傳物質（總DNA）或目的基因為供體，進行直接導入，既不同于載體轉化的基因工程技術，也有別于通過有性雜交實現植物間基因交流的傳統育種方式。種胚浸泡法[1]（即浸胚法）是以供體的DNA溶液浸泡受體干種子的胚或萌動的種子，將外源DNA導入受體細胞，達到轉化目的的一種外源DNA直接導入植物的方法，具有無需特殊設備，可行、簡便、易操作的特點。浸胚法與其他育種方法相比有自己的優點：①導入體是含有目的性狀基因的總DNA，有可能一次導入達到改良多基因控制的數量性狀的目的，不需事先分離、提純和克隆目的性狀基因，導入操作方法簡便易行，勿需特殊設備和條件。②不受供體種類限制，植物和動物等均可作為外源DNA的供體，具有廣闊的應用前景。③能夠實現遠緣雜交不親和植物間的遺傳物質（基因）重組，獲得各種有價值的變異新類型，豐富育種資源。

通過將供體外源總DNA片段導入受體中可以研究一些具有重大經濟價值的農作物，而遺傳背景差異極大的農藝性狀是否能夠通過DNA片段進行轉移，是否為單基因或單基因控制的多基因決定的性狀，從而為近期的基因工程課題選擇打下了基礎。有研究[2-4]表明，外源DNA導入作物可以獲得10-3～10-1的遺傳變異率。

1材料與方法

1.1供試材料

供體：大豆（豫豆29號）。

受體：番茄（MM）。

1.1.1試劑十六烷基三甲基溴化銨（CTAB）、乙二胺四乙酸（EDTA）、0.05 mol/L磷酸緩沖液（pH 7.8）、巰基乙醇、氮藍四銼、甲硫氨酸、四甲基乙二胺（TEMED）、丙烯酰胺、過硫酸銨。

1.1.2主要儀器臺式冷凍離心機（Eppendorf 5417C/R型），快速核酸/蛋白析儀，電泳儀（EPS601型）。

1.2方法

1.2.1外源DNA的誘導

1）大豆DNA的提取方法。采用CTAB法[5]，總DNA的純度鑒定采用紫外吸收光譜，測得DNA濃度為136.50 μg/mL。測定結果表明，純化后的供體總DNA溶液純度符合誘導條件，用蒸餾水溶液配制DNA溶液。配制的DNA終濃度分別為136.50、273.00、341.25、477.700、546.00、682.50 μg/mL。

2）外源DNA的導入方法。用上述配制的同體積的不同濃度的DNA溶液分別浸泡番茄種子，并分別在4 ℃（A）、20 ℃（B）、25 ℃（C）和35 ℃（D）溫度下暗處理24 h，同時用相同體積的雙蒸水（ddH2O）浸泡番茄種子作對照，將種子在田間種植，重復3次。

1.2.2誘導后生理指標的測定方法

1）葉綠素含量測定方法。葉綠素含量的測定用乙醇浸提法[6]。首先取新鮮植物葉片，擦凈組織表面污物，去除中脈剪碎。稱取剪碎的新鮮樣品2 g，放入研缽中，加少量石英砂和碳酸鈣粉及3 mL 95%乙醇，研成均漿，再加乙醇10 mL，繼續研磨至組織變白。靜置3～5 min。然后取濾紙1張置于漏斗中，用乙醇濕潤，沿玻璃棒把提取液倒入漏斗，濾液流至100 mL 棕色容量瓶中；用少量乙醇沖洗研缽、研棒及殘渣數次，最后連同殘渣一起倒入漏斗中，用滴管吸取乙醇，將濾紙上的葉綠體色素全部洗入棕色容量瓶中。直至濾紙和殘渣中無綠色為止。最后用乙醇定容至100 mL，搖勻。取葉綠體色素提取液在波長663、645、652 nm下測定吸光度，以95%乙醇為空白對照。求得吸收率，并根據公式計算出葉綠素a和葉綠素b的含量。在葉綠素測定時要注意兩點：光照會造成葉綠素的迅速破壞，因此提取時要在黑暗中進行，動作要快[7]。注意在酸性條件下，葉綠素也會遭到破壞[8]。按照Arnon公式，分別計算植物材料中葉綠素a、b和總葉綠素的含量。葉綠素Ca=12.7 A663 -2.69 A645，葉綠素Cb=22.9 A645-4.68A663，總葉綠素C=20.21A645+8.02A663。

2）同工酶（SOD）測定方法。①同工酶的提取：采用李合生[9]的方法并略微改動。把取得的材料洗凈吸干水分，將0.5 g葉片加入1 mL 14 ℃預冷的pH 為7.8 PBS，于冰浴中研磨成勻漿，轉移到10 mL試管中，然后加緩沖液至5 mL，取2 mL與離心管中離心15 min，吸取上清液，分管裝編號后放入20 ℃冰箱中冷藏備用。

②電泳：采用聚丙烯酰胺凝膠電泳法[10]，上層濃縮膠濃度4%、pH 6.7，下層分離膠濃度為10%、pH 8.9，每板15個進樣孔，每孔上樣20 uL，以pH 8.3的Tris-甘氨酸溶液為電極緩沖液、0.005%的溴酚藍作指示劑，在溫度為4 ℃下進行電泳，電泳開始時電流要小，控制在15～20 mA，30 min后加大電流至30～50 mA，約2～3 h，待指示劑移到接近凝膠正極末端停止電泳。

③凝膠染色[11]。染色液Ⅰ：0.200 3 g NBT，加50 mL蒸餾水溶解后，定容到100 mL；染色液Ⅱ：0.001 g核黃素，0.045 9磷酸二氫鈉，1.186 g磷酸氫二鈉，0.418 mL四甲基乙二胺，加50 mL蒸餾水定容到100 mL；染色液Ⅲ：0.002 9 g乙二胺四乙酸，0.062 4 g磷酸二氫鈉，1.647 g磷酸氫二鈉，加50 mL蒸餾水溶解后，定容到100 mL；將剝出的凝膠板浸入染色液Ⅰ中，黑暗中浸泡20 min，取出凝膠至染色液Ⅱ中，黑暗中浸泡15 min，再取出轉移至染色液Ⅰ中，置于日光燈下光照20～30 min，直至藍色背景上出現清晰透明的SOD譜帶。倒掉染液并用蒸餾水洗凈，照相，繪制圖譜，并測量酶譜帶相對遷移率Rf值。

Rf=

2結果與分析

2.1大豆DNA的電泳檢測結果

提取的大豆DNA電泳結果如圖1所示。由圖1可知，大豆DNA約為20 000 bp。

2.2番茄葉片葉綠素含量的測定

由表1可知，試驗組番茄植株的葉綠素含量發生了變化，與對照組相比，葉綠素含量增加了，其中DNA濃度為136.50 g/mL經4 ℃浸泡避光處理的番茄種子葉綠素含量變化最大，比對照組高116%，其余其他條件處理的番茄種子葉綠素含量均增加。還可以看出，在DNA濃度為273.00 g/mL的條件下經20 ℃浸泡避光處理的番茄種子葉綠素a的含量比對照低6%，其余的均比對照組高，但是變化量不是很明顯；試驗組植株葉片葉綠素b的含量均比對照組高，而且變化明顯。

2.3番茄同工酶SOD分析

由圖2可知，變異株與對照株的同工酶遷移率Rf1=0.48、Rf2=0.6具有相同的譜帶；變異株的同工酶酶譜中，3-C即DNA濃度為341.25 μg/mL經過25 ℃處理的譜幅寬，顏色深，酶活性強；1-C即DNA濃度為136.50 μg/mL經過25 ℃處理的譜帶顏色淺，酶活性弱。其余的酶譜帶與對照相比差異不大。根據上述所知，后代變異植株的同工酶確實發生了變化。

3討論

浸胚法導入外源DNA已經得到證實，王邕等[12]報道了外源DNA導入玉米引起后代性狀變異，觀察D0代變異株及D1代植株的性狀，并采用聚丙烯酰胺凝膠電泳法（PAGE）對D0代植株及其供體進行了同工酶分析，從而初步證實了大豆DNA的功能片段已整合到了受體基因組內并得到了表達。劉傳雪等[13]報道了應用浸胚法轉化寒地水稻的遺傳轉化，發現后代產生了變異。國內外采用外源總DNA導入受體，不僅創造了大量有價值的種質資源，而且選育出的新品系已廣泛應用于生產。這些都為浸胚法導入外源DNA后代變異提供了依據。本試驗研究了外源DNA導入番茄后的變異性狀，通過配制不同濃度的DNA溶液，在不同的條件下進行暗處理，發現葉綠素含量和同工酶有變化。但是對于這種變異是因為外源DNA導入引起的，還是由于基因突變引起的還不能確定，有待進一步的研究。

參考文獻：

[1] 楊前進.用浸胚法將外源DNA 導入水稻的研究進展[J].安徽農業科學，2006，34 （24）：6452-6454.

[2] 許勇，周長久，王福鈞，等.外源DNA注射茄子子房后代性狀的變異[J].園藝學報，1991，18（1）：49-54.

[3] 黃駿麒，錢思穎，劉桂玲.外源海島棉DNA誘導中棉性狀的變異[J].江蘇農業科學，1982（11）：18-20.

[4] 董偉，陳玲，吳勇 .黃瓜自花授粉后外源DNA導入技術研究[J].園藝學報，1993，20（20）：155-160.

[5] 陳慶山，劉春燕，呂東，等.大豆DNA提取基本原理的探討[J].東北農業大學學報，2004（2）：129-134.

[6] 葉艷萍.植物生理實驗指導[M].南寧：廣西大學，2003.

[7] 庫姆斯 J，霍爾D O，朗S P，等.生物生產力和光合作用測定技術[M].北京：科學出版社，1986.

[8] VERNON，L P. Spectrophotometric.determination of chlorophylls and pheophytina in plant extracts[J]. Anal Chem，1960，32（2）：1144-1150.

[9] 李合生.植物生理生化實驗原理和技術[M].北京：高等教育出版社，2000.

[10] 葉華智.小麥與禾谷鐮刀菌相互作用下病穗過氧化物酶和酯酶的變化[J].植物病理學報，1988，18（3）：169-174.

[11] 宋小青，趙曉瑜，劉建榮，等.玉米SOD的分離純化與部分性質研究[J].中國生化藥物志，2007，28（4）：260-263.

[12] 王邕，劉愛花，張耀華，等.外源DNA導入玉米引起后代性狀變異的研究[J].云南農業科學，2006（2）：14-16.

[13] 劉傳雪，潘國君，張淑華.應用浸胚法轉化寒地水稻的試驗研究[J].北方水稻，2009，39（2）：8-11.

1.2方法

1.2.1外源DNA的誘導

1）大豆DNA的提取方法。采用CTAB法[5]，總DNA的純度鑒定采用紫外吸收光譜，測得DNA濃度為136.50 μg/mL。測定結果表明，純化后的供體總DNA溶液純度符合誘導條件，用蒸餾水溶液配制DNA溶液。配制的DNA終濃度分別為136.50、273.00、341.25、477.700、546.00、682.50 μg/mL。

2）外源DNA的導入方法。用上述配制的同體積的不同濃度的DNA溶液分別浸泡番茄種子，并分別在4 ℃（A）、20 ℃（B）、25 ℃（C）和35 ℃（D）溫度下暗處理24 h，同時用相同體積的雙蒸水（ddH2O）浸泡番茄種子作對照，將種子在田間種植，重復3次。

1.2.2誘導后生理指標的測定方法

1）葉綠素含量測定方法。葉綠素含量的測定用乙醇浸提法[6]。首先取新鮮植物葉片，擦凈組織表面污物，去除中脈剪碎。稱取剪碎的新鮮樣品2 g，放入研缽中，加少量石英砂和碳酸鈣粉及3 mL 95%乙醇，研成均漿，再加乙醇10 mL，繼續研磨至組織變白。靜置3～5 min。然后取濾紙1張置于漏斗中，用乙醇濕潤，沿玻璃棒把提取液倒入漏斗，濾液流至100 mL 棕色容量瓶中；用少量乙醇沖洗研缽、研棒及殘渣數次，最后連同殘渣一起倒入漏斗中，用滴管吸取乙醇，將濾紙上的葉綠體色素全部洗入棕色容量瓶中。直至濾紙和殘渣中無綠色為止。最后用乙醇定容至100 mL，搖勻。取葉綠體色素提取液在波長663、645、652 nm下測定吸光度，以95%乙醇為空白對照。求得吸收率，并根據公式計算出葉綠素a和葉綠素b的含量。在葉綠素測定時要注意兩點：光照會造成葉綠素的迅速破壞，因此提取時要在黑暗中進行，動作要快[7]。注意在酸性條件下，葉綠素也會遭到破壞[8]。按照Arnon公式，分別計算植物材料中葉綠素a、b和總葉綠素的含量。葉綠素Ca=12.7 A663 -2.69 A645，葉綠素Cb=22.9 A645-4.68A663，總葉綠素C=20.21A645+8.02A663。

2）同工酶（SOD）測定方法。①同工酶的提取：采用李合生[9]的方法并略微改動。把取得的材料洗凈吸干水分，將0.5 g葉片加入1 mL 14 ℃預冷的pH 為7.8 PBS，于冰浴中研磨成勻漿，轉移到10 mL試管中，然后加緩沖液至5 mL，取2 mL與離心管中離心15 min，吸取上清液，分管裝編號后放入20 ℃冰箱中冷藏備用。

②電泳：采用聚丙烯酰胺凝膠電泳法[10]，上層濃縮膠濃度4%、pH 6.7，下層分離膠濃度為10%、pH 8.9，每板15個進樣孔，每孔上樣20 uL，以pH 8.3的Tris-甘氨酸溶液為電極緩沖液、0.005%的溴酚藍作指示劑，在溫度為4 ℃下進行電泳，電泳開始時電流要小，控制在15～20 mA，30 min后加大電流至30～50 mA，約2～3 h，待指示劑移到接近凝膠正極末端停止電泳。

③凝膠染色[11]。染色液Ⅰ：0.200 3 g NBT，加50 mL蒸餾水溶解后，定容到100 mL；染色液Ⅱ：0.001 g核黃素，0.045 9磷酸二氫鈉，1.186 g磷酸氫二鈉，0.418 mL四甲基乙二胺，加50 mL蒸餾水定容到100 mL；染色液Ⅲ：0.002 9 g乙二胺四乙酸，0.062 4 g磷酸二氫鈉，1.647 g磷酸氫二鈉，加50 mL蒸餾水溶解后，定容到100 mL；將剝出的凝膠板浸入染色液Ⅰ中，黑暗中浸泡20 min，取出凝膠至染色液Ⅱ中，黑暗中浸泡15 min，再取出轉移至染色液Ⅰ中，置于日光燈下光照20～30 min，直至藍色背景上出現清晰透明的SOD譜帶。倒掉染液并用蒸餾水洗凈，照相，繪制圖譜，并測量酶譜帶相對遷移率Rf值。

Rf=

2結果與分析

2.1大豆DNA的電泳檢測結果

提取的大豆DNA電泳結果如圖1所示。由圖1可知，大豆DNA約為20 000 bp。

2.2番茄葉片葉綠素含量的測定

由表1可知，試驗組番茄植株的葉綠素含量發生了變化，與對照組相比，葉綠素含量增加了，其中DNA濃度為136.50 g/mL經4 ℃浸泡避光處理的番茄種子葉綠素含量變化最大，比對照組高116%，其余其他條件處理的番茄種子葉綠素含量均增加。還可以看出，在DNA濃度為273.00 g/mL的條件下經20 ℃浸泡避光處理的番茄種子葉綠素a的含量比對照低6%，其余的均比對照組高，但是變化量不是很明顯；試驗組植株葉片葉綠素b的含量均比對照組高，而且變化明顯。

2.3番茄同工酶SOD分析

由圖2可知，變異株與對照株的同工酶遷移率Rf1=0.48、Rf2=0.6具有相同的譜帶；變異株的同工酶酶譜中，3-C即DNA濃度為341.25 μg/mL經過25 ℃處理的譜幅寬，顏色深，酶活性強；1-C即DNA濃度為136.50 μg/mL經過25 ℃處理的譜帶顏色淺，酶活性弱。其余的酶譜帶與對照相比差異不大。根據上述所知，后代變異植株的同工酶確實發生了變化。

3討論

浸胚法導入外源DNA已經得到證實，王邕等[12]報道了外源DNA導入玉米引起后代性狀變異，觀察D0代變異株及D1代植株的性狀，并采用聚丙烯酰胺凝膠電泳法（PAGE）對D0代植株及其供體進行了同工酶分析，從而初步證實了大豆DNA的功能片段已整合到了受體基因組內并得到了表達。劉傳雪等[13]報道了應用浸胚法轉化寒地水稻的遺傳轉化，發現后代產生了變異。國內外采用外源總DNA導入受體，不僅創造了大量有價值的種質資源，而且選育出的新品系已廣泛應用于生產。這些都為浸胚法導入外源DNA后代變異提供了依據。本試驗研究了外源DNA導入番茄后的變異性狀，通過配制不同濃度的DNA溶液，在不同的條件下進行暗處理，發現葉綠素含量和同工酶有變化。但是對于這種變異是因為外源DNA導入引起的，還是由于基因突變引起的還不能確定，有待進一步的研究。

參考文獻：

[1] 楊前進.用浸胚法將外源DNA 導入水稻的研究進展[J].安徽農業科學，2006，34 （24）：6452-6454.

[2] 許勇，周長久，王福鈞，等.外源DNA注射茄子子房后代性狀的變異[J].園藝學報，1991，18（1）：49-54.

[3] 黃駿麒，錢思穎，劉桂玲.外源海島棉DNA誘導中棉性狀的變異[J].江蘇農業科學，1982（11）：18-20.

[4] 董偉，陳玲，吳勇 .黃瓜自花授粉后外源DNA導入技術研究[J].園藝學報，1993，20（20）：155-160.

[5] 陳慶山，劉春燕，呂東，等.大豆DNA提取基本原理的探討[J].東北農業大學學報，2004（2）：129-134.

[6] 葉艷萍.植物生理實驗指導[M].南寧：廣西大學，2003.

[7] 庫姆斯 J，霍爾D O，朗S P，等.生物生產力和光合作用測定技術[M].北京：科學出版社，1986.

[8] VERNON，L P. Spectrophotometric.determination of chlorophylls and pheophytina in plant extracts[J]. Anal Chem，1960，32（2）：1144-1150.

[9] 李合生.植物生理生化實驗原理和技術[M].北京：高等教育出版社，2000.

[10] 葉華智.小麥與禾谷鐮刀菌相互作用下病穗過氧化物酶和酯酶的變化[J].植物病理學報，1988，18（3）：169-174.

[11] 宋小青，趙曉瑜，劉建榮，等.玉米SOD的分離純化與部分性質研究[J].中國生化藥物志，2007，28（4）：260-263.

[12] 王邕，劉愛花，張耀華，等.外源DNA導入玉米引起后代性狀變異的研究[J].云南農業科學，2006（2）：14-16.

[13] 劉傳雪，潘國君，張淑華.應用浸胚法轉化寒地水稻的試驗研究[J].北方水稻，2009，39（2）：8-11.

1.2方法

1.2.1外源DNA的誘導

1）大豆DNA的提取方法。采用CTAB法[5]，總DNA的純度鑒定采用紫外吸收光譜，測得DNA濃度為136.50 μg/mL。測定結果表明，純化后的供體總DNA溶液純度符合誘導條件，用蒸餾水溶液配制DNA溶液。配制的DNA終濃度分別為136.50、273.00、341.25、477.700、546.00、682.50 μg/mL。

2）外源DNA的導入方法。用上述配制的同體積的不同濃度的DNA溶液分別浸泡番茄種子，并分別在4 ℃（A）、20 ℃（B）、25 ℃（C）和35 ℃（D）溫度下暗處理24 h，同時用相同體積的雙蒸水（ddH2O）浸泡番茄種子作對照，將種子在田間種植，重復3次。

1.2.2誘導后生理指標的測定方法

1）葉綠素含量測定方法。葉綠素含量的測定用乙醇浸提法[6]。首先取新鮮植物葉片，擦凈組織表面污物，去除中脈剪碎。稱取剪碎的新鮮樣品2 g，放入研缽中，加少量石英砂和碳酸鈣粉及3 mL 95%乙醇，研成均漿，再加乙醇10 mL，繼續研磨至組織變白。靜置3～5 min。然后取濾紙1張置于漏斗中，用乙醇濕潤，沿玻璃棒把提取液倒入漏斗，濾液流至100 mL 棕色容量瓶中；用少量乙醇沖洗研缽、研棒及殘渣數次，最后連同殘渣一起倒入漏斗中，用滴管吸取乙醇，將濾紙上的葉綠體色素全部洗入棕色容量瓶中。直至濾紙和殘渣中無綠色為止。最后用乙醇定容至100 mL，搖勻。取葉綠體色素提取液在波長663、645、652 nm下測定吸光度，以95%乙醇為空白對照。求得吸收率，并根據公式計算出葉綠素a和葉綠素b的含量。在葉綠素測定時要注意兩點：光照會造成葉綠素的迅速破壞，因此提取時要在黑暗中進行，動作要快[7]。注意在酸性條件下，葉綠素也會遭到破壞[8]。按照Arnon公式，分別計算植物材料中葉綠素a、b和總葉綠素的含量。葉綠素Ca=12.7 A663 -2.69 A645，葉綠素Cb=22.9 A645-4.68A663，總葉綠素C=20.21A645+8.02A663。

2）同工酶（SOD）測定方法。①同工酶的提取：采用李合生[9]的方法并略微改動。把取得的材料洗凈吸干水分，將0.5 g葉片加入1 mL 14 ℃預冷的pH 為7.8 PBS，于冰浴中研磨成勻漿，轉移到10 mL試管中，然后加緩沖液至5 mL，取2 mL與離心管中離心15 min，吸取上清液，分管裝編號后放入20 ℃冰箱中冷藏備用。

②電泳：采用聚丙烯酰胺凝膠電泳法[10]，上層濃縮膠濃度4%、pH 6.7，下層分離膠濃度為10%、pH 8.9，每板15個進樣孔，每孔上樣20 uL，以pH 8.3的Tris-甘氨酸溶液為電極緩沖液、0.005%的溴酚藍作指示劑，在溫度為4 ℃下進行電泳，電泳開始時電流要小，控制在15～20 mA，30 min后加大電流至30～50 mA，約2～3 h，待指示劑移到接近凝膠正極末端停止電泳。

③凝膠染色[11]。染色液Ⅰ：0.200 3 g NBT，加50 mL蒸餾水溶解后，定容到100 mL；染色液Ⅱ：0.001 g核黃素，0.045 9磷酸二氫鈉，1.186 g磷酸氫二鈉，0.418 mL四甲基乙二胺，加50 mL蒸餾水定容到100 mL；染色液Ⅲ：0.002 9 g乙二胺四乙酸，0.062 4 g磷酸二氫鈉，1.647 g磷酸氫二鈉，加50 mL蒸餾水溶解后，定容到100 mL；將剝出的凝膠板浸入染色液Ⅰ中，黑暗中浸泡20 min，取出凝膠至染色液Ⅱ中，黑暗中浸泡15 min，再取出轉移至染色液Ⅰ中，置于日光燈下光照20～30 min，直至藍色背景上出現清晰透明的SOD譜帶。倒掉染液并用蒸餾水洗凈，照相，繪制圖譜，并測量酶譜帶相對遷移率Rf值。

Rf=

2結果與分析

2.1大豆DNA的電泳檢測結果

提取的大豆DNA電泳結果如圖1所示。由圖1可知，大豆DNA約為20 000 bp。

2.2番茄葉片葉綠素含量的測定

由表1可知，試驗組番茄植株的葉綠素含量發生了變化，與對照組相比，葉綠素含量增加了，其中DNA濃度為136.50 g/mL經4 ℃浸泡避光處理的番茄種子葉綠素含量變化最大，比對照組高116%，其余其他條件處理的番茄種子葉綠素含量均增加。還可以看出，在DNA濃度為273.00 g/mL的條件下經20 ℃浸泡避光處理的番茄種子葉綠素a的含量比對照低6%，其余的均比對照組高，但是變化量不是很明顯；試驗組植株葉片葉綠素b的含量均比對照組高，而且變化明顯。

2.3番茄同工酶SOD分析

由圖2可知，變異株與對照株的同工酶遷移率Rf1=0.48、Rf2=0.6具有相同的譜帶；變異株的同工酶酶譜中，3-C即DNA濃度為341.25 μg/mL經過25 ℃處理的譜幅寬，顏色深，酶活性強；1-C即DNA濃度為136.50 μg/mL經過25 ℃處理的譜帶顏色淺，酶活性弱。其余的酶譜帶與對照相比差異不大。根據上述所知，后代變異植株的同工酶確實發生了變化。

3討論

浸胚法導入外源DNA已經得到證實，王邕等[12]報道了外源DNA導入玉米引起后代性狀變異，觀察D0代變異株及D1代植株的性狀，并采用聚丙烯酰胺凝膠電泳法（PAGE）對D0代植株及其供體進行了同工酶分析，從而初步證實了大豆DNA的功能片段已整合到了受體基因組內并得到了表達。劉傳雪等[13]報道了應用浸胚法轉化寒地水稻的遺傳轉化，發現后代產生了變異。國內外采用外源總DNA導入受體，不僅創造了大量有價值的種質資源，而且選育出的新品系已廣泛應用于生產。這些都為浸胚法導入外源DNA后代變異提供了依據。本試驗研究了外源DNA導入番茄后的變異性狀，通過配制不同濃度的DNA溶液，在不同的條件下進行暗處理，發現葉綠素含量和同工酶有變化。但是對于這種變異是因為外源DNA導入引起的，還是由于基因突變引起的還不能確定，有待進一步的研究。

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