李天曉 元剛 葉麗君 孫健 黎曙霞
胃癌是世界范圍難治性腫瘤之一。誘導腫瘤細胞凋亡是研發(fā)抗癌藥的目標之一,棉酚衍生物ApoG2是針對細胞凋亡調(diào)節(jié)因子Bcl2蛋白家族中抗凋亡蛋白結構開發(fā)出的新型棉酚衍生物,能夠拮抗Bcl2抗凋亡作用,釋放促凋亡蛋白Bax和Bak,啟動細胞凋亡程序[1]。目前ApoG2抗腫瘤能力已被廣泛證明,ApoG2不僅能影響B(tài)cl2家族的表達激活線粒體凋亡通路,也能通過誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激凋亡、細胞自噬等其他途徑引起腫瘤細胞死亡,提示ApoG2可能激活多條抑癌通路[2-4]。近來發(fā)現(xiàn)WNT信號通路在消化道系統(tǒng)腫瘤發(fā)生過程中扮演了重要角色。胃上皮組織Wnt/β-catenin通路的激活可直接引起腫瘤的形成[5]。Wnt6是WNT家族重要成員,參與調(diào)控細胞活動,包括細胞增殖、分化和遷移,在腫瘤細胞中高度表達,并且介導了胃癌細胞對化學治療的抵抗性[6-7]。WNT與Bcl2信號通路存在廣泛的相互作用[8-9]。有研究發(fā)現(xiàn)ApoG2能顯著下調(diào)WNT信號靶基因c-Myc和細胞周期蛋白cyclin D1的表達,但ApoG2對WNT蛋白家族的影響尚未見報道[10]。本研究以人胃腺癌細胞株BGC823為模型研究ApoG2誘導胃癌細胞凋亡的作用,并檢測ApoG2對Bcl2家族及Wnt6表達的影響,進一步探討ApoG2抗腫瘤機制和應用前景,現(xiàn)報告如下。
人胃癌細胞株BGC823由中山大學附屬第一醫(yī)院消化內(nèi)科實驗室饋贈,培養(yǎng)于完全培養(yǎng)基[含10%胎牛血清(Gibco,美國)、100 kU/L青霉素和100 mg/L鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基(Gibco,美國)],培養(yǎng)環(huán)境37℃,5% CO2。ApoG2由上海亞盛醫(yī)藥科技有限公司楊大俊教授饋贈,溶解于二甲亞砜(MP Biomedicals,美國)配成20 mmol/L儲存液,-20℃保存。
1.ApoG2對胃癌細胞BGC823生長抑制作用的檢測
采用噻唑藍(MTT)法。消化對數(shù)生長期的胃癌細胞BGC823,以培養(yǎng)液稀釋成終濃度為1×105/ml的單細胞懸液,每孔100μl接種于96孔培養(yǎng)板中,待細胞貼壁后棄去培養(yǎng)液,用不含血清的培養(yǎng)基梯度稀釋ApoG2母液至不同濃度(終濃度為10、5、2.5、1.25、0.625、0.3125μmol/L),加入培養(yǎng)孔中,每個濃度設3個復孔,對照組和調(diào)零組加入含0.1% 二甲亞砜培養(yǎng)基,其中調(diào)零組不接種細胞。分別培養(yǎng)24、48、72 h后,每孔加入5 g/L MTT溶液(MP Biomedicals,美國)20μl,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后小心吸棄孔內(nèi)溶液,加入二甲亞砜溶解結晶物,用酶標儀 (Thermo Multiskan GO,美國)檢測各孔在490 nm處的吸光度(OD),記錄OD值。細胞生長抑制率(%) = [1- (OD試驗組-OD調(diào)零組)/(OD對照組-OD調(diào)零組)]×100%。半數(shù)抑制濃度(IC50)指與對照組比較抑制50%細胞生長的藥物濃度。
2.藥物干預
根據(jù)MTT實驗的結果,ApoG2處理24、48、72 h均對細胞有較明顯的生長抑制作用,選取48 h作為藥物干預時間,選取給藥濃度中最接近48 h IC50值的1.25μmol/L,2倍的IC50值2.5μmol/L和4倍的IC50值5μmol/L作為藥物干預濃度。經(jīng)消化的細胞用完全培養(yǎng)基重懸稀釋接種于6孔板,細胞貼壁后分別用0.1% 二甲亞砜或1.25、2.5、5μmol/L ApoG2處理細胞48 h,進行后續(xù)實驗。
3.細胞凋亡形態(tài)的檢測
經(jīng)消化的細胞用完全培養(yǎng)基稀釋至105/ml接種于6孔板內(nèi),每孔2 ml,培養(yǎng)過夜。按前述方法給藥48 h后,棄去培養(yǎng)基,按Hoechst33258染色試劑盒(碧云天,中國)說明書固定并染色。熒光顯微鏡(ZEISS Axio Imager Z1,德國)下觀察拍照。激發(fā)波長350 nm,發(fā)射波長460 nm。
4.細胞周期分析
將2×105/ml細胞懸液接種于6孔培養(yǎng)板,每孔2 ml,培養(yǎng)過夜。按前述方法給藥48 h后,用0.25%的胰蛋白酶消化收集細胞,加入預冷70%乙醇4℃固定過夜。棄固定液后用預冷磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌1次,用配好的DNA染色液[含0.2% Triton-X-100,RNase 100μg/ml,碘化丙啶(PI)50μg/ml]重懸細胞沉淀,37℃避光染色30 min,上流式細胞儀(Beckman Coulter FC500,美國)檢測細胞周期。分析Sub-G1期(凋亡導致基因組降解,其DNA含量少于G1期)細胞比例。
5.Bcl2家族基因表達水平的檢測
常規(guī)提取細胞總RNA,采用熒光定量逆轉錄PCR檢測,逆轉錄使用PrimeScript RT reagent Kit試劑盒(Takara,日本),引物序列見表1。熒光定量PCR反應體系按照預混SYBR試劑盒(Takara,日本)說明書配制,按熒光定量PCR儀(ABI 7500,美國)說明設置反應程序。實驗所得數(shù)據(jù)按ΔΔCt法計算分析。

表1 引物序列
6.Wnt6蛋白表達水平的檢測
采用蛋白印跡法法檢測。BCA法檢測蛋白濃度后,用12% SDS-PAGE膠電泳分離蛋白,電轉至PVDF膜上,室溫封閉1 h,先后用Wnt6抗體(ab50030,Abcam)或GAPDH抗體(#2118,Cell Signaling Technology)、過氧化辣根偶聯(lián)的羊抗兔抗體(#7074,Cell Signaling Technology)孵育,于暗房內(nèi)等體積混勻增強型化學生物發(fā)光試劑盒(WBKLS0500,Millipore)工作液,滴于膜上目的蛋白條帶處,發(fā)光后曝光于X線膠片上。X線膠片在激光光密度圖像掃描儀(CanoScan LiDE 25)上掃描后用ImageJ1.44軟件計算條帶灰度值,以內(nèi)參GAPDH校正上樣量計算蛋白相對表達量。
每項實驗中,各濃度組均進行3次獨立重復實驗,采用SPSS17.0軟件分析數(shù)據(jù)。使用回歸分析擬合濃度-抑制率曲線計算IC50。計量資料以ˉx±s表示,多組比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較采用Bonferroni法。多組比較以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義,兩兩比較以P<0.01為差異有統(tǒng)計學意義。
MTT實驗結果顯示,各濃度ApoG2均能明顯抑制細胞生長,且隨著ApoG2干預濃度升高和干預時間延長,抑制作用更加明顯。給藥24、48、72 h的IC50分別為2.11、1.22、0.59μmol/L,見圖1。

圖1 不同濃度ApoG2對人胃癌細胞系BGC823的生長抑制作用
1.形態(tài)學變化
ApoG2處理細胞48 h后,經(jīng)Hoechst33258染色后可見典型凋亡細胞,細胞呈高亮藍色,核固縮或呈分葉狀,而對照組細胞呈淡藍色。隨ApoG2給藥濃度升高,細胞數(shù)目逐漸減少,高亮細胞比例逐漸升高,見圖2。

圖2 不同濃度ApoG2作用下BGC823細胞的凋亡情況(Hoechst染色,×40)
2.細胞周期變化
與對照組相比,ApoG2處理細胞48 h后Sub-G1期細胞數(shù)目明顯增多,1.25、2.5、5μmol/LApoG2處理細胞48 h后Sub-G1期細胞比例分別為(27.6±3.2)% 、(33.4±2.1)% 、(54.3±2.8)%,對照組Sub-G1期細胞比例為 (6.4±1.3)%,4組Sub-G1期細胞比例比較差異有統(tǒng)計學意義(F=192.6,P<0.001),各給藥組Sub-G1期細胞比例均比對照組明顯增高(t分別為10.631、18.935、26.875,P 均 <0.001),且ApoG2 5μmol/L組中Sub-G1期細胞比例高于ApoG2 1.25μmol/L組及2.5μmol/L組,見圖3。
BGC823細胞與0.1% 二甲亞砜、1.25、2.5、5μmol/L ApoG2分別孵育48 h后,1.25、2.5、5 μmol/L組Bcl2 mRNA表達水平分別比對照組下調(diào)至0.81、0.67、0.42倍(t=11.162,P<0.01)。2.5、5μmol/L組Bax mRNA表達水平分別比對照組上調(diào)至1.95倍(t=16.454,P<0.01)、6.24倍(t=90.76,P<0.001),Bak mRNA表達水平則分別上 調(diào) 至 2.11、6.23 倍(t分 別 為 19.226、11.323,P均<0.01);1.25μmol/L組Bax、Bak mRNA表達水平分別為對照組的0.91、0.96倍,兩組比較差異無統(tǒng)計學意義(P均>0.05),見圖4。

圖3 不同濃度ApoG2作用下BGC823細胞周期檢測結果

圖4 不同濃度ApoG2作用下BGC823細胞Bcl2家族基因表達水平的比較
BGC823細胞與0.1%二甲亞砜、1.25和2.5 μmol/LApoG2分別孵育48 h后,1.25和2.5μmol/L組Wnt6蛋白表達水平分別比對照組下調(diào)至0.76、0.71倍(t分別為19.226、11.323,P均<0.01),見圖5。提取細胞總蛋白后,5μmol/L組在最大上樣體積內(nèi)無法滿足最低上樣蛋白量,降低蛋白量則影響對Wnt6表達的檢測,故未檢測5 μmol/L組ApoG2處理后細胞Wnt6蛋白的表達量。

圖5 不同濃度ApoG2作用下BGC823細胞中Wnt6蛋白表達水平的比較
我國胃癌發(fā)生率及病死率均較高,外科手術是治療胃癌最有效的手段,然而多數(shù)胃癌發(fā)現(xiàn)時已錯過了最佳手術時期,對于不能手術、術后復發(fā)或遠處轉移的胃癌,化學治療是主要的治療手段。胃癌對傳統(tǒng)的化學治療方法存在嚴重的耐藥現(xiàn)象,因此尋找安全、有效的抗腫瘤藥物是胃癌研究領域的重要任務。Bcl2蛋白家族與腫瘤的發(fā)生發(fā)展以及腫瘤耐藥性的產(chǎn)生密切相關[11]。多種惡性腫瘤中可見Bcl2過度表達,在胃癌組織中Bcl2過度表達率高達60%~70%[12-13]。因此抑制腫瘤細胞過度表達Bcl2的抗凋亡作用可作為治療胃癌的新策略。
ApoG2是具有Bcl2蛋白家族抗凋亡蛋白泛抑制作用的新型棉酚衍生物,與母體化合物相比具有更強的抗腫瘤作用和較小的毒性作用[14]。已有研究顯示ApoG2可在體外誘導包括胃癌細胞系MKN28、MKN45和AGS凋亡[15]。胃癌動物試驗也證實了ApoG2的體內(nèi)抗腫瘤能力[3]。ApoG2可能成為治療胃癌的新型藥物之一,具有進一步研究的價值。本研究以取自中國患者胃癌組織建立的BGC823細胞株為模型,證實了ApoG2能夠以低濃度抑制BGC823細胞生長,誘導細胞凋亡。據(jù)報道,Wnt6在胃癌細胞中高度表達,且表達量與胃癌細胞對化學治療的耐藥對象呈正相關,敲除Wnt6基因可明顯提高胃癌細胞對化學治療的敏感性[2]。在經(jīng)典的WNT信號通路中,WNT信號可通過β-鏈蛋白調(diào)控核內(nèi)基因轉錄,也有研究表明在結腸癌細胞中WNT信號可激活Bcl2抗凋亡蛋白Bcl-w啟動子促進Bcl-w的表達抵抗細胞凋亡[16]。因此,研究進一步檢測了ApoG2對Wnt6及Bcl2家族的影響。結果發(fā)現(xiàn),ApoG2能夠下調(diào)Wnt6蛋白的表達,同時下調(diào)抗凋亡標志Bcl2基因的表達水平,并上調(diào)促凋亡標志Bax和Bak的表達水平。本研究結果提示,ApoG2可能通過下調(diào)Wnt6的蛋白水平影響B(tài)cl2、Bax和Bak的基因轉錄,引起細胞凋亡。由于Wnt6與胃癌耐藥性密切相關,對于Wnt6高表達的耐藥性胃癌,ApoG2有可能成為其中一種新型治療藥物。
[1]Hu ZY,Zhu XF,Zhong ZD,et al.ApoG2,a novel inhibitor of antiapoptotic Bcl-2 family proteins,induces apoptosis and suppresses tumor growth in nasopharyngeal carcinoma xenografts.Int J Cancer,2008,123:2418-2429.
[2]Xin J,Zhan Y,Liu M,et al.ApoG2 induces ER stress-dependent apoptosis in gastric cancer cells in vitro and its real-time evaluation by bioluminescence imaging in vivo.Cancer Lett,2013,336:260-269.
[3]Cheng P,Ni Z,Dai X,et al.The novel BH-3 mimetic apogossypolone induces Beclin-1-and ROS-mediated autophagy in human hepatocellular carcinoma[corrected]cells.Cell Death Dis,2013,4:e489.
[4]Sun J,Li ZM,Hu ZY,et al.ApoG2 inhibits antiapoptotic Bcl-2 family proteins and induces mitochondria-dependent apoptosis in human lymphoma U937 cells.Anticancer Drugs,2008,19:967-974.
[5]Radulescu S,Ridgway RA,Cordero J,et al.Acute WNT signalling activation perturbs differentiation within the adult stomach and rapidly leads to tumour formation.Oncogene,2013,32:2048-2057.
[6]Kirikoshi H,Sekihara H,Katoh M.WNT10A and WNT6,clustered in human chromosome 2q35 region with head-to-tail manner,are strongly coexpressed in SW480 cells.Biochem Biophys Res Commun,2001,283:798-805.
[7]Yuan G,Regel I,Lian F,et al.WNT6 is a novel target gene of caveolin-1 promoting chemoresistance to epirubicin in human gastric cancer cells.Oncogene,2013,32:375-387.
[8]Mezhybovska M,Wikstr?m K,Ohd JF,Sj?lander A.The inflammatory mediator leukotriene D4 induces betacatenin signaling and its association with antiapoptotic Bcl-2 in intestinal epithelial cells.J Biol Chem,2006,281:6776-6784.
[9]Zeilstra J,Joosten SP,Wensveen FM,et al.WNT signaling controls expression of pro-apoptotic BOK and BAX in intestinal cancer.Biochem Biophys Res Commun,2011,406:1-6.
[10]Hu ZY,Sun J,Zhu XF,et al.ApoG2 induces cell cycle arrest of nasopharyngeal carcinoma cells by suppressing the c-Myc signaling pathway.J Transl Med,2009,7:74.
[11]Adams JM,Cory S.The Bcl-2 apoptotic switch in cancer development and therapy.Oncogene,2007,26:1324-1337
[12]Anagnostopoulos GK,Stefanou D,Arkoumani E,et al.Bax and Bcl-2 protein expression in gastric precancerous lesions:immunohistochemical study.J Gastroenterol Hepatol,2005,20:1674-1678.
[13]Lee SS,Cho KJ,Hong SI,et al.Nuclear overexpression of bcl-2 oncoprotein during the progression of human stomach cancer.J Korean Med Sci,1998,13:153-158.
[14]Wei J,Kitada S,Stebbins JL,et al.Synthesis and biological evaluation of Apogossypolone derivatives as panactive inhibitors of antiapoptotic B-cell lymphoma/leukemia-2(Bcl-2)family proteins.J Med Chem,2010,53:8000-8011.
[15]Xin J,Zhan YH,Xia LM,et al.ApoG2 as the most potent gossypol derivatives inhibits cell growth and induces apoptosis on gastric cancer cells.Biomed Pharmacother,2013,67:88-95.
[16]Lapham A,Adams JE,Paterson A,et al.The Bcl-w promoter is activated by beta-catenin/TCF4 in human colorectal carcinoma cells.Gene,2009,432:112-117.