高效液相色譜法測定14種人參皂苷的研究

陳書華+樸文香+白龍律+遲美麗+金恩華+馬正赫+武倫鵬

摘要：為準確可靠的定量分析14種人參皂苷，本文通過對高效液相色譜條件進行優化，確定了測定人參皂苷的HPLC條件，結果表明，最佳分析條件流動相為乙氰和水；C18柱；檢測波長：203納米；流速：1.0 毫升/分。該分析方法可以達到很好的分離效果，通過精密度、穩定性和回收率的計算，證明該方法具有良好的準確性和穩定性，是一種簡單、高效的多種人參皂苷分析方法。

關鍵詞：人參皂苷；高效液相色譜；檢測方法

中圖分類號： R49 文獻標識碼：A 文章編號： 1674-0432（2014）-12-22-2

1 材料與方法

1.1 藥品及試劑

人參皂苷標準品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD，三七皂苷標準品R1均購自成都曼思特生物科技有限公司；乙氰、甲醇為色譜純均購自美國TEDIA公司。

1.2 實驗儀器

Agilent 1100型高效液相色譜儀購自美國安捷倫公司。

1.3 實驗方法

1.3.1 色譜條件 色譜柱：BDS HYPERSIL C18柱（250 毫米×4.6毫米，5微米）；柱溫：25℃；檢測波長：203納米；流動相：水（A）和乙氰（B）；流速：1.0 毫升/分；梯度洗脫條件見表2.1。上述條件下標準混合溶液的分離效果見圖1.1。

表1.1 高效液相色譜流動相梯度洗脫條件

圖1.1 13種人參皂苷和1種三七皂苷混合標準溶液的HPLC圖

（1, R1; 2, Rg1; 3, Re; 4, Rh1; 5, Rb1; 6, Rc; 7, F1; 8, Rb2;

9, Rd; 10, F2; 11, Rg3; 12, C-K; 13, Rh2; 14, PPD.）

1.3.2 溶液的配制 分別稱取人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1標準品（精確至0.1毫克），溶解于甲醇，得到14種皂苷的混合標準溶液。

1.3.3 標準曲線的繪制 取不同濃度的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，按上述色譜條件測定峰面積，以峰面積為縱坐標，各單體皂苷濃度為橫坐標，繪制標準曲線。

1.3.4 精密度實驗 精密吸取稀釋后的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，重復進樣5次，測定含量，記錄皂苷峰面積，計算平均值。

1.3.5 穩定性實驗 精密吸取稀釋后的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，分別于0、2、4、8、10小時進樣，測定含量，記錄皂苷峰面積，計算平均值。

1.3.6 加樣回收率實驗 精密稱取已知含量的人參根總皂苷，分別精密加入人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1標準品，按照樣品溶液制備方法制備，在相同色譜條件下，測定含量并計算回收率。

2 結果與討論

2.1 標準曲線、線性范圍、檢出限（LOD）與定量限（LOQ）

以13種人參皂苷和1種三七皂苷的色譜峰面積對濃度作線性回歸，由表1.2可看出，呈良好的線性關系，線性相關系數r2值均大于0.998。以峰強度與噪聲比（S/N）為3確定最低檢出限（LOD），該方法測定14種皂苷的檢出限為0.0015~0.006 毫克/毫升；以S/N為10確定最低定量限（LOQ），本方法的定量限為0.005~0.02毫克/毫升。

表1.2 回歸分析、檢出限和定量限

2.2 精密度

精密吸取稀釋后的14種皂苷混標溶液，重復進樣5次，以峰面積計算，14種皂苷峰面積的相對標準偏差（RSD）均小于2%，結果見表1.3。

2.3 穩定性

精密吸取吸取稀釋后的14種皂苷混標溶液，每隔2小時測定1次，以峰面積計算，14種皂苷峰面積的RSD均小于4%，結果見表1.4。

表1.3 精密度實驗結果表1.4 穩定性實驗結果2.4 加樣回收率實驗 14種皂苷的回收率為85.0%~118.8%，結果見表1.5。表1.5 加樣回收率實驗結果 注：回收率（%）=（實際測得含量-樣品含量）/加入標準品含量×100% ND：Not detected.3 結語 本文通過對高效液相色譜條件進行優化，確定了測定人參皂苷及其轉化產物的HPLC條件為：色譜柱：BDS HYPERSIL C18柱（250毫米×4.6毫米，5微米）；柱溫：25℃；檢測波長：203納米；流動相：水（A）和乙氰（B），梯度洗脫；流速：1.0毫升/分。通過精密度、穩定性和回收率的計算，證明該方法具有良好的準確性和穩定性，是一種簡單、高效的多種人參皂苷分析方法。參考文獻 [1] Kim HS, Lee JH, Goo YS, Nah SY. Effect of ginsenosides on Ca2+ channels and membrane capacitance in rat adrenal chromaffin cells[J]. Brain Res Bull, 1998, 46(3): 245-251. [2] 張崇禧,鄭友蘭,張春紅,羅維瑩,鮑建材,劉剛.不同方法提取人參總皂苷工藝的優化研究[J].人參研究,2003,4：5-8. [3] Akao T, Kida H, Kanaoka M, Hattori M, Kobashi K. Intestinal bacterial hydrolysis is required for the appearance of compound K in rat plasma after oral administration of ginsenoside Rb1 from Panax ginseng [J]. J Pbarm Pharmacol, 1998, 50(10): 1155-1160. [4] 馬吉勝,周秋麗,費曉方,孫曄,王本祥.真菌對人參皂苷Rb1及人參二醇系皂苷的代謝作用[J].藥學學報,2001,36(8)：603-605. [5] Suda K, Murakami K, Murata J, Hasegawa H, Saiki I. An intestinal bacterial metabolite (M1) of ginseng protopanaxadiol saponins inhibits tumor-induced neovascularization [J]. Journal of Traditional Medicines,2000,17(4): 144-150. [6] 董淑華,陳波,馬忠澤,侯秀云,陳英杰.人參皂苷的體內代謝反應研究[J].人參研究,2003,15(1)：2-6. [7] 閻天午,宋承吉,杜秀娟.人參首烏精中人參皂甙含量測定[J].中成藥,1993,15(11)：14-16. [8] 王林,趙春杰,王書華.比色法測定君春樂膠囊中人參皂甙的含量[J].中國藥學雜志,1995,30(6)：364-367. [9] 劉高峰,張麗梅.薄層掃描法測定肝適寧膠囊人參皂甙Rg1的含量[J].中國中藥雜志,1996,21(9)：542. [10] Cui J,et al.Analysis of ginsenosides by chromatography and mass spectrometry,release of 20s-protopanadiol and 20s-protopanaxatriol for quantitation.Anal Biochem,1993,210(2):411. [11] Petersen T G,et al. Utilizing column selectivity in developing a high-performance liquid chromatographic method for ginsenoside assay.J Chromatogr,1990,504:139. [12] Wu C C,et al. Determination of ginsenosides in ginseng crude extracts by high-performance liquid chromatography.J Chromatogr,A 1994,685(2):243. [13] 馬鵬,林濤,黃靜.古方生脈散制劑中人參皂甙的反相高效液相色譜分離和含量測定[J].華西藥學雜志,1995,10(1)：21. 作者簡介：陳書華，本科學歷，延邊朝鮮族自治州產品質量檢驗所中心實驗室，副主任，高級工程師，研究方向：天然活性物質生物轉化；樸文香，碩士學歷，延邊大學，講師，研究方向：化學工程與工藝；白龍律，碩士學歷，延邊州產品質量檢驗所，工程師，研究方向：參茸等產品質量檢測；遲美麗，本科學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，副主任，研究方向：天然活性物質生物轉化；金恩華，本科學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，工程師，研究方向：參茸等產品質量檢測；馬正赫，大專學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，助理工程師，研究方向：天然活性物質生物轉化。 通訊作者：武倫鵬，博士，國家參茸產品質量監督檢驗中心，主任，研究方向：天然活性物質生物轉化。 網絡出版時間：2014-6-12 13:25:58 網絡出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/22.1186.S.20140612.1325.003.html

摘要：為準確可靠的定量分析14種人參皂苷，本文通過對高效液相色譜條件進行優化，確定了測定人參皂苷的HPLC條件，結果表明，最佳分析條件流動相為乙氰和水；C18柱；檢測波長：203納米；流速：1.0 毫升/分。該分析方法可以達到很好的分離效果，通過精密度、穩定性和回收率的計算，證明該方法具有良好的準確性和穩定性，是一種簡單、高效的多種人參皂苷分析方法。

關鍵詞：人參皂苷；高效液相色譜；檢測方法

中圖分類號： R49 文獻標識碼：A 文章編號： 1674-0432（2014）-12-22-2

1 材料與方法

1.1 藥品及試劑

人參皂苷標準品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD，三七皂苷標準品R1均購自成都曼思特生物科技有限公司；乙氰、甲醇為色譜純均購自美國TEDIA公司。

1.2 實驗儀器

Agilent 1100型高效液相色譜儀購自美國安捷倫公司。

1.3 實驗方法

1.3.1 色譜條件 色譜柱：BDS HYPERSIL C18柱（250 毫米×4.6毫米，5微米）；柱溫：25℃；檢測波長：203納米；流動相：水（A）和乙氰（B）；流速：1.0 毫升/分；梯度洗脫條件見表2.1。上述條件下標準混合溶液的分離效果見圖1.1。

表1.1 高效液相色譜流動相梯度洗脫條件

圖1.1 13種人參皂苷和1種三七皂苷混合標準溶液的HPLC圖

（1, R1; 2, Rg1; 3, Re; 4, Rh1; 5, Rb1; 6, Rc; 7, F1; 8, Rb2;

9, Rd; 10, F2; 11, Rg3; 12, C-K; 13, Rh2; 14, PPD.）

1.3.2 溶液的配制 分別稱取人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1標準品（精確至0.1毫克），溶解于甲醇，得到14種皂苷的混合標準溶液。

1.3.3 標準曲線的繪制 取不同濃度的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，按上述色譜條件測定峰面積，以峰面積為縱坐標，各單體皂苷濃度為橫坐標，繪制標準曲線。

1.3.4 精密度實驗 精密吸取稀釋后的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，重復進樣5次，測定含量，記錄皂苷峰面積，計算平均值。

1.3.5 穩定性實驗 精密吸取稀釋后的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，分別于0、2、4、8、10小時進樣，測定含量，記錄皂苷峰面積，計算平均值。

1.3.6 加樣回收率實驗 精密稱取已知含量的人參根總皂苷，分別精密加入人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1標準品，按照樣品溶液制備方法制備，在相同色譜條件下，測定含量并計算回收率。

2 結果與討論

2.1 標準曲線、線性范圍、檢出限（LOD）與定量限（LOQ）

以13種人參皂苷和1種三七皂苷的色譜峰面積對濃度作線性回歸，由表1.2可看出，呈良好的線性關系，線性相關系數r2值均大于0.998。以峰強度與噪聲比（S/N）為3確定最低檢出限（LOD），該方法測定14種皂苷的檢出限為0.0015~0.006 毫克/毫升；以S/N為10確定最低定量限（LOQ），本方法的定量限為0.005~0.02毫克/毫升。

表1.2 回歸分析、檢出限和定量限

2.2 精密度

精密吸取稀釋后的14種皂苷混標溶液，重復進樣5次，以峰面積計算，14種皂苷峰面積的相對標準偏差（RSD）均小于2%，結果見表1.3。

2.3 穩定性

精密吸取吸取稀釋后的14種皂苷混標溶液，每隔2小時測定1次，以峰面積計算，14種皂苷峰面積的RSD均小于4%，結果見表1.4。

表1.3 精密度實驗結果表1.4 穩定性實驗結果2.4 加樣回收率實驗 14種皂苷的回收率為85.0%~118.8%，結果見表1.5。表1.5 加樣回收率實驗結果 注：回收率（%）=（實際測得含量-樣品含量）/加入標準品含量×100% ND：Not detected.3 結語 本文通過對高效液相色譜條件進行優化，確定了測定人參皂苷及其轉化產物的HPLC條件為：色譜柱：BDS HYPERSIL C18柱（250毫米×4.6毫米，5微米）；柱溫：25℃；檢測波長：203納米；流動相：水（A）和乙氰（B），梯度洗脫；流速：1.0毫升/分。通過精密度、穩定性和回收率的計算，證明該方法具有良好的準確性和穩定性，是一種簡單、高效的多種人參皂苷分析方法。參考文獻 [1] Kim HS, Lee JH, Goo YS, Nah SY. Effect of ginsenosides on Ca2+ channels and membrane capacitance in rat adrenal chromaffin cells[J]. Brain Res Bull, 1998, 46(3): 245-251. [2] 張崇禧,鄭友蘭,張春紅,羅維瑩,鮑建材,劉剛.不同方法提取人參總皂苷工藝的優化研究[J].人參研究,2003,4：5-8. [3] Akao T, Kida H, Kanaoka M, Hattori M, Kobashi K. Intestinal bacterial hydrolysis is required for the appearance of compound K in rat plasma after oral administration of ginsenoside Rb1 from Panax ginseng [J]. J Pbarm Pharmacol, 1998, 50(10): 1155-1160. [4] 馬吉勝,周秋麗,費曉方,孫曄,王本祥.真菌對人參皂苷Rb1及人參二醇系皂苷的代謝作用[J].藥學學報,2001,36(8)：603-605. [5] Suda K, Murakami K, Murata J, Hasegawa H, Saiki I. An intestinal bacterial metabolite (M1) of ginseng protopanaxadiol saponins inhibits tumor-induced neovascularization [J]. Journal of Traditional Medicines,2000,17(4): 144-150. [6] 董淑華,陳波,馬忠澤,侯秀云,陳英杰.人參皂苷的體內代謝反應研究[J].人參研究,2003,15(1)：2-6. [7] 閻天午,宋承吉,杜秀娟.人參首烏精中人參皂甙含量測定[J].中成藥,1993,15(11)：14-16. [8] 王林,趙春杰,王書華.比色法測定君春樂膠囊中人參皂甙的含量[J].中國藥學雜志,1995,30(6)：364-367. [9] 劉高峰,張麗梅.薄層掃描法測定肝適寧膠囊人參皂甙Rg1的含量[J].中國中藥雜志,1996,21(9)：542. [10] Cui J,et al.Analysis of ginsenosides by chromatography and mass spectrometry,release of 20s-protopanadiol and 20s-protopanaxatriol for quantitation.Anal Biochem,1993,210(2):411. [11] Petersen T G,et al. Utilizing column selectivity in developing a high-performance liquid chromatographic method for ginsenoside assay.J Chromatogr,1990,504:139. [12] Wu C C,et al. Determination of ginsenosides in ginseng crude extracts by high-performance liquid chromatography.J Chromatogr,A 1994,685(2):243. [13] 馬鵬,林濤,黃靜.古方生脈散制劑中人參皂甙的反相高效液相色譜分離和含量測定[J].華西藥學雜志,1995,10(1)：21. 作者簡介：陳書華，本科學歷，延邊朝鮮族自治州產品質量檢驗所中心實驗室，副主任，高級工程師，研究方向：天然活性物質生物轉化；樸文香，碩士學歷，延邊大學，講師，研究方向：化學工程與工藝；白龍律，碩士學歷，延邊州產品質量檢驗所，工程師，研究方向：參茸等產品質量檢測；遲美麗，本科學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，副主任，研究方向：天然活性物質生物轉化；金恩華，本科學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，工程師，研究方向：參茸等產品質量檢測；馬正赫，大專學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，助理工程師，研究方向：天然活性物質生物轉化。 通訊作者：武倫鵬，博士，國家參茸產品質量監督檢驗中心，主任，研究方向：天然活性物質生物轉化。 網絡出版時間：2014-6-12 13:25:58 網絡出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/22.1186.S.20140612.1325.003.html

摘要：為準確可靠的定量分析14種人參皂苷，本文通過對高效液相色譜條件進行優化，確定了測定人參皂苷的HPLC條件，結果表明，最佳分析條件流動相為乙氰和水；C18柱；檢測波長：203納米；流速：1.0 毫升/分。該分析方法可以達到很好的分離效果，通過精密度、穩定性和回收率的計算，證明該方法具有良好的準確性和穩定性，是一種簡單、高效的多種人參皂苷分析方法。

關鍵詞：人參皂苷；高效液相色譜；檢測方法

中圖分類號： R49 文獻標識碼：A 文章編號： 1674-0432（2014）-12-22-2

1 材料與方法

1.1 藥品及試劑

人參皂苷標準品Rb1、Rb2、Rc、Rd、Re、Rg1、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD，三七皂苷標準品R1均購自成都曼思特生物科技有限公司；乙氰、甲醇為色譜純均購自美國TEDIA公司。

1.2 實驗儀器

Agilent 1100型高效液相色譜儀購自美國安捷倫公司。

1.3 實驗方法

1.3.1 色譜條件 色譜柱：BDS HYPERSIL C18柱（250 毫米×4.6毫米，5微米）；柱溫：25℃；檢測波長：203納米；流動相：水（A）和乙氰（B）；流速：1.0 毫升/分；梯度洗脫條件見表2.1。上述條件下標準混合溶液的分離效果見圖1.1。

表1.1 高效液相色譜流動相梯度洗脫條件

圖1.1 13種人參皂苷和1種三七皂苷混合標準溶液的HPLC圖

（1, R1; 2, Rg1; 3, Re; 4, Rh1; 5, Rb1; 6, Rc; 7, F1; 8, Rb2;

9, Rd; 10, F2; 11, Rg3; 12, C-K; 13, Rh2; 14, PPD.）

1.3.2 溶液的配制 分別稱取人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1標準品（精確至0.1毫克），溶解于甲醇，得到14種皂苷的混合標準溶液。

1.3.3 標準曲線的繪制 取不同濃度的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，按上述色譜條件測定峰面積，以峰面積為縱坐標，各單體皂苷濃度為橫坐標，繪制標準曲線。

1.3.4 精密度實驗 精密吸取稀釋后的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，重復進樣5次，測定含量，記錄皂苷峰面積，計算平均值。

1.3.5 穩定性實驗 精密吸取稀釋后的人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1混標溶液，分別于0、2、4、8、10小時進樣，測定含量，記錄皂苷峰面積，計算平均值。

1.3.6 加樣回收率實驗 精密稱取已知含量的人參根總皂苷，分別精密加入人參皂苷Rb1、Rb2、Rc、Rd、Rg1、Re、F1、F2、Rg3、Rh1、Rh2、C-K、PPD和三七皂苷R1標準品，按照樣品溶液制備方法制備，在相同色譜條件下，測定含量并計算回收率。

2 結果與討論

2.1 標準曲線、線性范圍、檢出限（LOD）與定量限（LOQ）

以13種人參皂苷和1種三七皂苷的色譜峰面積對濃度作線性回歸，由表1.2可看出，呈良好的線性關系，線性相關系數r2值均大于0.998。以峰強度與噪聲比（S/N）為3確定最低檢出限（LOD），該方法測定14種皂苷的檢出限為0.0015~0.006 毫克/毫升；以S/N為10確定最低定量限（LOQ），本方法的定量限為0.005~0.02毫克/毫升。

表1.2 回歸分析、檢出限和定量限

2.2 精密度

精密吸取稀釋后的14種皂苷混標溶液，重復進樣5次，以峰面積計算，14種皂苷峰面積的相對標準偏差（RSD）均小于2%，結果見表1.3。

2.3 穩定性

精密吸取吸取稀釋后的14種皂苷混標溶液，每隔2小時測定1次，以峰面積計算，14種皂苷峰面積的RSD均小于4%，結果見表1.4。

表1.3 精密度實驗結果表1.4 穩定性實驗結果2.4 加樣回收率實驗 14種皂苷的回收率為85.0%~118.8%，結果見表1.5。表1.5 加樣回收率實驗結果 注：回收率（%）=（實際測得含量-樣品含量）/加入標準品含量×100% ND：Not detected.3 結語 本文通過對高效液相色譜條件進行優化，確定了測定人參皂苷及其轉化產物的HPLC條件為：色譜柱：BDS HYPERSIL C18柱（250毫米×4.6毫米，5微米）；柱溫：25℃；檢測波長：203納米；流動相：水（A）和乙氰（B），梯度洗脫；流速：1.0毫升/分。通過精密度、穩定性和回收率的計算，證明該方法具有良好的準確性和穩定性，是一種簡單、高效的多種人參皂苷分析方法。參考文獻 [1] Kim HS, Lee JH, Goo YS, Nah SY. Effect of ginsenosides on Ca2+ channels and membrane capacitance in rat adrenal chromaffin cells[J]. Brain Res Bull, 1998, 46(3): 245-251. [2] 張崇禧,鄭友蘭,張春紅,羅維瑩,鮑建材,劉剛.不同方法提取人參總皂苷工藝的優化研究[J].人參研究,2003,4：5-8. [3] Akao T, Kida H, Kanaoka M, Hattori M, Kobashi K. Intestinal bacterial hydrolysis is required for the appearance of compound K in rat plasma after oral administration of ginsenoside Rb1 from Panax ginseng [J]. J Pbarm Pharmacol, 1998, 50(10): 1155-1160. [4] 馬吉勝,周秋麗,費曉方,孫曄,王本祥.真菌對人參皂苷Rb1及人參二醇系皂苷的代謝作用[J].藥學學報,2001,36(8)：603-605. [5] Suda K, Murakami K, Murata J, Hasegawa H, Saiki I. An intestinal bacterial metabolite (M1) of ginseng protopanaxadiol saponins inhibits tumor-induced neovascularization [J]. Journal of Traditional Medicines,2000,17(4): 144-150. [6] 董淑華,陳波,馬忠澤,侯秀云,陳英杰.人參皂苷的體內代謝反應研究[J].人參研究,2003,15(1)：2-6. [7] 閻天午,宋承吉,杜秀娟.人參首烏精中人參皂甙含量測定[J].中成藥,1993,15(11)：14-16. [8] 王林,趙春杰,王書華.比色法測定君春樂膠囊中人參皂甙的含量[J].中國藥學雜志,1995,30(6)：364-367. [9] 劉高峰,張麗梅.薄層掃描法測定肝適寧膠囊人參皂甙Rg1的含量[J].中國中藥雜志,1996,21(9)：542. [10] Cui J,et al.Analysis of ginsenosides by chromatography and mass spectrometry,release of 20s-protopanadiol and 20s-protopanaxatriol for quantitation.Anal Biochem,1993,210(2):411. [11] Petersen T G,et al. Utilizing column selectivity in developing a high-performance liquid chromatographic method for ginsenoside assay.J Chromatogr,1990,504:139. [12] Wu C C,et al. Determination of ginsenosides in ginseng crude extracts by high-performance liquid chromatography.J Chromatogr,A 1994,685(2):243. [13] 馬鵬,林濤,黃靜.古方生脈散制劑中人參皂甙的反相高效液相色譜分離和含量測定[J].華西藥學雜志,1995,10(1)：21. 作者簡介：陳書華，本科學歷，延邊朝鮮族自治州產品質量檢驗所中心實驗室，副主任，高級工程師，研究方向：天然活性物質生物轉化；樸文香，碩士學歷，延邊大學，講師，研究方向：化學工程與工藝；白龍律，碩士學歷，延邊州產品質量檢驗所，工程師，研究方向：參茸等產品質量檢測；遲美麗，本科學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，副主任，研究方向：天然活性物質生物轉化；金恩華，本科學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，工程師，研究方向：參茸等產品質量檢測；馬正赫，大專學歷，國家參茸產品質量監督檢驗中心，助理工程師，研究方向：天然活性物質生物轉化。 通訊作者：武倫鵬，博士，國家參茸產品質量監督檢驗中心，主任，研究方向：天然活性物質生物轉化。 網絡出版時間：2014-6-12 13:25:58 網絡出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/22.1186.S.20140612.1325.003.html