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不同花生品種對卡那霉素的敏感性研究

2014-07-18 13:46:10張甲佳等
山東農(nóng)業(yè)科學 2014年4期

張甲佳等

摘 要:

以花生胚小葉為外植體,觀察花生胚小葉在添加不同濃度卡那霉素的分化培養(yǎng)基上的生長狀況,研究不同花生品種對卡那霉素的敏感性,以確定各品種的卡那霉素臨界濃度。結果表明,在供試品種中,D16對卡那霉素最敏感,其臨界濃度為100 mg/L;花育22對卡那霉素的耐受性最高,其臨界濃度為200 mg/L;J11及魯花11的卡那霉素臨界濃度均為150 mg/L。

關鍵詞:花生;胚小葉;卡那霉素;敏感性;臨界值

中圖分類號:S565.203.53 文獻標識號:A 文章編號:1001-4942(2014)04-0036-03

生 (Arachis hypogaea L.)是世界四大油料作物之一,在我國經(jīng)濟發(fā)展中占有重要地位,是我國重要的經(jīng)濟和油料作物[1]。近幾年隨著花生離體培養(yǎng)的快速發(fā)展,花生遺傳轉化也飛速發(fā)展著,農(nóng)桿菌介導是花生遺傳轉化最常用的方法[2~4]。在轉基因植株的初步檢測中,抗生素篩選是最為常用的方法[5~10],其中卡那霉素最為常用[4,6~16]。卡那霉素(Kanamycin,簡稱Km)能強烈抑制細胞生長,能夠使多種植物綠色器官黃化;低濃度卡那霉素能夠抑制植物細胞分化,高濃度卡那霉素則能夠導致植物死亡[1,5,6,12,13]。在轉基因植物篩選中,常用抗性基因作為標記基因[7,11,17],NPTⅡ、HPT、CAT、SPT、Gent等是使用最多的抗生素抗性酶基因[18]。NPTⅡ(新霉素磷酸轉移酶)基因是目前植物遺傳轉化中常用的標記基因,含有該基因的植物能夠對卡那霉素產(chǎn)生抗性,從而存活下來[11,17,21]。

不同花生品種對卡那霉素的敏感程度不同,單世華等[1]對泉花10號和金花1012的帶胚單子葉進行研究,得到的卡那霉素臨界濃度為200 mg/L;莊振宏等[19]研究得到泉花10號花生小葉的臨界卡那霉素濃度為150 mg/L;胡曉君等[20]的試驗結果則表明,花生離體葉片的卡那霉素篩選濃度為400 mg/L,不同苗齡葉片對卡那霉素的敏感性不同。本試驗研究了4個不同花生品種胚小葉對卡那霉素的敏感性,以期得到各品種的卡那霉素臨界濃度,為其遺傳轉化奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

花生品種J11、花育22號、D16、魯花11號,均由山東省花生研究所提供。

1.2 試劑

卡那霉素,購于上海生工;MS基本培養(yǎng)基(添加適量NAA、6-BA)、分化培養(yǎng)基、75%乙醇、0.1%升汞,所用藥品或試劑均為國產(chǎn)分析純。

1.3 主要儀器設備

高溫高壓蒸汽滅菌鍋,江南儀器廠;人工氣候箱,寧波江南儀器廠;微量移液器,Enpendorf,德國;AA-680型原子吸收分光光度計,日本島津;J-20XP高速冷凍離心機,美國BECKMAN公司;PB303-N電子精密天平,梅特勒-托利多公司;79HW-1恒溫磁力攪拌器,江蘇省金壇市榮華儀器廠;PHS-3 pH計,上海精密儀器有限公司;超純水系統(tǒng),Millipore,美國。

1.4 試驗方法

1.4.1 種子消毒 選取成熟飽滿、活力高的花生種子,用自來水沖洗2~3次;在超凈工作臺上用75%乙醇消毒3次,1 min/次;然后用0.1%升汞浸泡10 min;再用無菌水漂洗3~4次,1 min/次,然后于無菌水中浸泡2~4 h。

1.4.2 外植體獲得 在超凈工作臺上剝?nèi)ハ咎幚砗蟮姆N子種皮,接種于MS基本培養(yǎng)基上,培養(yǎng)4~6 d后,切取花生胚小葉作為外植體。

1.4.3 敏感性試驗 設卡那霉素濃度梯度:0、50、100、150、200 mg/L,在培養(yǎng)基高溫高壓滅菌并冷至65℃左右時加入。切取生長狀況良好的胚小葉,接種于添加不同濃度卡那霉素的分化培養(yǎng)基上,培養(yǎng)3周后統(tǒng)計各品種外植體的白化率和出愈率。

白化率(%)=白化外植體數(shù)/接種總外植體數(shù)×100

出愈率(%)=產(chǎn)生愈傷組織外植體數(shù)/接種總外植體數(shù)×100

2 結果與分析

2.1 卡那霉素對不同品種花生出愈率的影響

由圖1可以看出,Km濃度越高,出愈率越低;0、50 mg/L時,4個品種均能夠產(chǎn)生愈傷組織;100 mg/L時,D16的出愈率為零,說明與其他3個品種相比,D16對Km最為敏感;當Km濃度達到150 mg/L時,只有花育22號還有愈傷組織產(chǎn)生,出愈率為10%,說明4個品種中,花育22號對Km最不敏感;但當Km濃度達到200 mg/L時,4個品種均不產(chǎn)生愈傷組織。

圖1 各品種在不同Km濃度下的出愈率

2.2 卡那霉素對不同品種花生白化率的影響

由圖2可以看出,在未添加Km的培養(yǎng)基上,各品種均無白化植株出現(xiàn);Km濃度為50 mg/L時,花育22號仍無明顯的白化株出現(xiàn),而其他3個品種的白化率均超過了10%,D16的白化率最高,為33.33%;當Km濃度超過100 mg/L后,4個品種均有不同程度的白化。Km濃度越高,白化率越高,4個品種的白化率由高到低依次為D16>J11>魯花11號>花育22號。

圖2 各品種在Km不同濃度下的白化率

2.3 D16與花育22號在Km不同濃度下的生長狀況比較

上述分析顯示,4個品種中D16對Km最敏感,而花育22號對Km的耐受性最高。由兩者培養(yǎng)3周后的生長狀況(圖3、圖4)可以看出,兩品種間差異明顯,在添加50 mg/L Km的培養(yǎng)基上,花育22號產(chǎn)生愈傷組織的外植體數(shù)明顯多于D16,而D16的白化率也明顯高于花育22號。

圖3 D16在Km不同濃度下的生長狀況

圖4 花育22號在Km不同濃度下的生長狀況

3 討論與結論endprint

王萍等[5]研究表明,卡那霉素明顯抑制大豆胚尖不定芽的形成,隨濃度的增加而減少。劉方等[6]研究表明高濃度的卡那霉素抑制棉花體細胞胚的形成,而低濃度的作用較弱。任艷等[22]研究表明,抗生素濃度與抑菌效果呈正比,但與組培苗生長狀況呈反比,因此選擇適宜的抗生素濃度是必不可少的。不同基因型植物對卡那霉素的內(nèi)源抗性有差異[7]。本試驗結果顯示,花育22號對Km的敏感性最弱,胚小葉在添加200 mg/L Km的培養(yǎng)基上出現(xiàn)明顯變化;D16對Km敏感性最強,在添加50 mg/L Km 的培養(yǎng)基上即出現(xiàn)明顯變化。

D16在Km 100 mg/L時不產(chǎn)生愈傷組織,喪失分化能力,且白化率達到45%,因此,確定其Km臨界濃度為100 mg/L;依此確定J11、魯花11號、花育22號的Km臨界值分別為150、150、200 mg/L。但本試驗得出的Km臨界濃度僅為理論值,實際的使用濃度還有待進一步試驗確定。

參 考 文 獻:

[1]

單世華,李春娟,劉思衡,等. 以農(nóng)桿菌為介導花生遺傳轉化研究[J]. 中國油料作物學報,2003,25(1):9-13.

[2] 許澤永. 花生轉化和再生研究進展[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術學報,2001,9(2):107-111.

[3] 周桂元,梁炫強,李一聰,等. 國內(nèi)外花生遺傳轉化研究的現(xiàn)狀[J]. 作物雜志,1999(1):1-3.

[4] 梁麗琨,由翠榮,林榮雙,等. 花生基因工程[J]. 生物學通報,2005,40(10):3-5.

[5] 王萍,張淑珍,李文濱,等. 大豆不同品種基因型胚尖不定芽的誘導及對抗生素的敏感性[J]. 作物雜志,2010(2):50-53.

[6] 劉方,張寶紅,姚長兵,等. 卡那霉素對棉花胚性愈傷組織生長發(fā)育的影響[J]. 棉花學報,1999,11(2):70-72.

[7] 張靜妮,馬暉玲,曹志忠. 紫花苜蓿不同品種對卡那霉素敏感性分析[J]. 草原與草坪,2005(5):30-33.

[8] 盧龍斗,李愛花,彭仁海,等. 茶菊再生體系及其卡那霉素篩選體系的建立[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學,2009,37(21):9872-9875.

[9] 徐鵬飛,張淑珍,吳俊江,等. 利用卡那霉素對花粉管通道法轉基因大豆的篩選研究[J]. 大豆科學,2006(3):275-278.

[10]彭金庫,徐青青,周莉凡,等. 卡那霉素和潮霉素對蘆竹不定芽誘導與生長的影響[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學,2011,39(15):8858-8860.

[11]李玲. 楊樹對卡那霉素(Kanamycin)敏感性的測定[J]. 林業(yè)科學,1992,28(1):95-96.

[12]劉玉匯,張俊蓮,王蒂,等. 不同煙草品種對卡那霉素抗性及耐鹽性的差異[J].中國農(nóng)學通報,2008,24(3):180-185.

[13]尹智慧,宋麗莉,司亮,等. 大巖桐葉片再生體系的建立及卡那霉素敏感性研究[J]. 北方園藝,2013(10):100-102.

[14]張寅玲,劉艷軍,張偉玉,等. 番茄基因轉化中抗生素篩選壓力的確定辦法[J]. 西南園藝,2005,33(5):4-6.

[15]周春麗,郭衛(wèi)東,張燕燕. 佛手組織培養(yǎng)和Km敏感性試驗[J]. 西北林學院學報,2005,20(4):76-79.

[16]魏愛民,張文珠,杜勝利,等. 黃瓜花粉管通道法抗蟲基因導入及卡那霉素抗性篩選[J]. 華北農(nóng)學報,2008,23(6):54-57.

[17]de Vries J, Wackernagel W.Detection of nptⅡ(Kanamycin resistance) genes in genomes of transgenic plants by marker-rescue transformation[J].Mol. Gen. Genet., 1998, 257(6): 606-613.

[18]侯愛菊,朱延明,張晶,等. 轉基因植物中篩選標記基因的利用及消除[J]. 遺傳,2003,25(4):466-470.

[19]莊振宏,朱錦懋,陳由強,等. 花生再生和轉化體系的初步研究[J]. 福建師范大學學報(自然科學版),2001,17(4):88-113.

[20]胡曉君,劉風珍,萬勇善,等. 花生組織培養(yǎng)及苗期nptⅡ標記基因篩選劑適宜濃度的研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學版),2007,38(1):28-34.

[21]Nap J P,Bijvoet J,Stiekema W J. 轉基因植物中的卡那霉素抗性[J]. 司家鋼譯. 生物技術通報,1998(1):29-31.

[22]任艷,王輝,石延茂,等. 抗生素在花生組織培養(yǎng)中的抑菌效應研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學,2011(10):74-75.endprint

王萍等[5]研究表明,卡那霉素明顯抑制大豆胚尖不定芽的形成,隨濃度的增加而減少。劉方等[6]研究表明高濃度的卡那霉素抑制棉花體細胞胚的形成,而低濃度的作用較弱。任艷等[22]研究表明,抗生素濃度與抑菌效果呈正比,但與組培苗生長狀況呈反比,因此選擇適宜的抗生素濃度是必不可少的。不同基因型植物對卡那霉素的內(nèi)源抗性有差異[7]。本試驗結果顯示,花育22號對Km的敏感性最弱,胚小葉在添加200 mg/L Km的培養(yǎng)基上出現(xiàn)明顯變化;D16對Km敏感性最強,在添加50 mg/L Km 的培養(yǎng)基上即出現(xiàn)明顯變化。

D16在Km 100 mg/L時不產(chǎn)生愈傷組織,喪失分化能力,且白化率達到45%,因此,確定其Km臨界濃度為100 mg/L;依此確定J11、魯花11號、花育22號的Km臨界值分別為150、150、200 mg/L。但本試驗得出的Km臨界濃度僅為理論值,實際的使用濃度還有待進一步試驗確定。

參 考 文 獻:

[1]

單世華,李春娟,劉思衡,等. 以農(nóng)桿菌為介導花生遺傳轉化研究[J]. 中國油料作物學報,2003,25(1):9-13.

[2] 許澤永. 花生轉化和再生研究進展[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術學報,2001,9(2):107-111.

[3] 周桂元,梁炫強,李一聰,等. 國內(nèi)外花生遺傳轉化研究的現(xiàn)狀[J]. 作物雜志,1999(1):1-3.

[4] 梁麗琨,由翠榮,林榮雙,等. 花生基因工程[J]. 生物學通報,2005,40(10):3-5.

[5] 王萍,張淑珍,李文濱,等. 大豆不同品種基因型胚尖不定芽的誘導及對抗生素的敏感性[J]. 作物雜志,2010(2):50-53.

[6] 劉方,張寶紅,姚長兵,等. 卡那霉素對棉花胚性愈傷組織生長發(fā)育的影響[J]. 棉花學報,1999,11(2):70-72.

[7] 張靜妮,馬暉玲,曹志忠. 紫花苜蓿不同品種對卡那霉素敏感性分析[J]. 草原與草坪,2005(5):30-33.

[8] 盧龍斗,李愛花,彭仁海,等. 茶菊再生體系及其卡那霉素篩選體系的建立[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學,2009,37(21):9872-9875.

[9] 徐鵬飛,張淑珍,吳俊江,等. 利用卡那霉素對花粉管通道法轉基因大豆的篩選研究[J]. 大豆科學,2006(3):275-278.

[10]彭金庫,徐青青,周莉凡,等. 卡那霉素和潮霉素對蘆竹不定芽誘導與生長的影響[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學,2011,39(15):8858-8860.

[11]李玲. 楊樹對卡那霉素(Kanamycin)敏感性的測定[J]. 林業(yè)科學,1992,28(1):95-96.

[12]劉玉匯,張俊蓮,王蒂,等. 不同煙草品種對卡那霉素抗性及耐鹽性的差異[J].中國農(nóng)學通報,2008,24(3):180-185.

[13]尹智慧,宋麗莉,司亮,等. 大巖桐葉片再生體系的建立及卡那霉素敏感性研究[J]. 北方園藝,2013(10):100-102.

[14]張寅玲,劉艷軍,張偉玉,等. 番茄基因轉化中抗生素篩選壓力的確定辦法[J]. 西南園藝,2005,33(5):4-6.

[15]周春麗,郭衛(wèi)東,張燕燕. 佛手組織培養(yǎng)和Km敏感性試驗[J]. 西北林學院學報,2005,20(4):76-79.

[16]魏愛民,張文珠,杜勝利,等. 黃瓜花粉管通道法抗蟲基因導入及卡那霉素抗性篩選[J]. 華北農(nóng)學報,2008,23(6):54-57.

[17]de Vries J, Wackernagel W.Detection of nptⅡ(Kanamycin resistance) genes in genomes of transgenic plants by marker-rescue transformation[J].Mol. Gen. Genet., 1998, 257(6): 606-613.

[18]侯愛菊,朱延明,張晶,等. 轉基因植物中篩選標記基因的利用及消除[J]. 遺傳,2003,25(4):466-470.

[19]莊振宏,朱錦懋,陳由強,等. 花生再生和轉化體系的初步研究[J]. 福建師范大學學報(自然科學版),2001,17(4):88-113.

[20]胡曉君,劉風珍,萬勇善,等. 花生組織培養(yǎng)及苗期nptⅡ標記基因篩選劑適宜濃度的研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學版),2007,38(1):28-34.

[21]Nap J P,Bijvoet J,Stiekema W J. 轉基因植物中的卡那霉素抗性[J]. 司家鋼譯. 生物技術通報,1998(1):29-31.

[22]任艷,王輝,石延茂,等. 抗生素在花生組織培養(yǎng)中的抑菌效應研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學,2011(10):74-75.endprint

王萍等[5]研究表明,卡那霉素明顯抑制大豆胚尖不定芽的形成,隨濃度的增加而減少。劉方等[6]研究表明高濃度的卡那霉素抑制棉花體細胞胚的形成,而低濃度的作用較弱。任艷等[22]研究表明,抗生素濃度與抑菌效果呈正比,但與組培苗生長狀況呈反比,因此選擇適宜的抗生素濃度是必不可少的。不同基因型植物對卡那霉素的內(nèi)源抗性有差異[7]。本試驗結果顯示,花育22號對Km的敏感性最弱,胚小葉在添加200 mg/L Km的培養(yǎng)基上出現(xiàn)明顯變化;D16對Km敏感性最強,在添加50 mg/L Km 的培養(yǎng)基上即出現(xiàn)明顯變化。

D16在Km 100 mg/L時不產(chǎn)生愈傷組織,喪失分化能力,且白化率達到45%,因此,確定其Km臨界濃度為100 mg/L;依此確定J11、魯花11號、花育22號的Km臨界值分別為150、150、200 mg/L。但本試驗得出的Km臨界濃度僅為理論值,實際的使用濃度還有待進一步試驗確定。

參 考 文 獻:

[1]

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[2] 許澤永. 花生轉化和再生研究進展[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術學報,2001,9(2):107-111.

[3] 周桂元,梁炫強,李一聰,等. 國內(nèi)外花生遺傳轉化研究的現(xiàn)狀[J]. 作物雜志,1999(1):1-3.

[4] 梁麗琨,由翠榮,林榮雙,等. 花生基因工程[J]. 生物學通報,2005,40(10):3-5.

[5] 王萍,張淑珍,李文濱,等. 大豆不同品種基因型胚尖不定芽的誘導及對抗生素的敏感性[J]. 作物雜志,2010(2):50-53.

[6] 劉方,張寶紅,姚長兵,等. 卡那霉素對棉花胚性愈傷組織生長發(fā)育的影響[J]. 棉花學報,1999,11(2):70-72.

[7] 張靜妮,馬暉玲,曹志忠. 紫花苜蓿不同品種對卡那霉素敏感性分析[J]. 草原與草坪,2005(5):30-33.

[8] 盧龍斗,李愛花,彭仁海,等. 茶菊再生體系及其卡那霉素篩選體系的建立[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學,2009,37(21):9872-9875.

[9] 徐鵬飛,張淑珍,吳俊江,等. 利用卡那霉素對花粉管通道法轉基因大豆的篩選研究[J]. 大豆科學,2006(3):275-278.

[10]彭金庫,徐青青,周莉凡,等. 卡那霉素和潮霉素對蘆竹不定芽誘導與生長的影響[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學,2011,39(15):8858-8860.

[11]李玲. 楊樹對卡那霉素(Kanamycin)敏感性的測定[J]. 林業(yè)科學,1992,28(1):95-96.

[12]劉玉匯,張俊蓮,王蒂,等. 不同煙草品種對卡那霉素抗性及耐鹽性的差異[J].中國農(nóng)學通報,2008,24(3):180-185.

[13]尹智慧,宋麗莉,司亮,等. 大巖桐葉片再生體系的建立及卡那霉素敏感性研究[J]. 北方園藝,2013(10):100-102.

[14]張寅玲,劉艷軍,張偉玉,等. 番茄基因轉化中抗生素篩選壓力的確定辦法[J]. 西南園藝,2005,33(5):4-6.

[15]周春麗,郭衛(wèi)東,張燕燕. 佛手組織培養(yǎng)和Km敏感性試驗[J]. 西北林學院學報,2005,20(4):76-79.

[16]魏愛民,張文珠,杜勝利,等. 黃瓜花粉管通道法抗蟲基因導入及卡那霉素抗性篩選[J]. 華北農(nóng)學報,2008,23(6):54-57.

[17]de Vries J, Wackernagel W.Detection of nptⅡ(Kanamycin resistance) genes in genomes of transgenic plants by marker-rescue transformation[J].Mol. Gen. Genet., 1998, 257(6): 606-613.

[18]侯愛菊,朱延明,張晶,等. 轉基因植物中篩選標記基因的利用及消除[J]. 遺傳,2003,25(4):466-470.

[19]莊振宏,朱錦懋,陳由強,等. 花生再生和轉化體系的初步研究[J]. 福建師范大學學報(自然科學版),2001,17(4):88-113.

[20]胡曉君,劉風珍,萬勇善,等. 花生組織培養(yǎng)及苗期nptⅡ標記基因篩選劑適宜濃度的研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學版),2007,38(1):28-34.

[21]Nap J P,Bijvoet J,Stiekema W J. 轉基因植物中的卡那霉素抗性[J]. 司家鋼譯. 生物技術通報,1998(1):29-31.

[22]任艷,王輝,石延茂,等. 抗生素在花生組織培養(yǎng)中的抑菌效應研究[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學,2011(10):74-75.endprint

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