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PAI-1啟動子序列與熒光素酶報告基因擴增及載體連接問題分析*

2014-04-13 03:08:53張莎莎崔琳宰軍華3路玲玲
中國醫藥指南 2014年12期
關鍵詞:實驗

張莎莎崔 琳宰軍華* 李 強,3路玲玲

(1 河南中醫學院,河南 鄭州,450008;2 河南中醫學院第一附屬醫院,河南 鄭州4500003 河南省病毒性疾病中醫藥防治重點實驗室,河南 鄭州450000)

PAI-1啟動子序列與熒光素酶報告基因擴增及載體連接問題分析*

張莎莎1崔 琳2宰軍華2* 李 強2,3路玲玲1

(1 河南中醫學院,河南 鄭州,450008;2 河南中醫學院第一附屬醫院,河南 鄭州4500003 河南省病毒性疾病中醫藥防治重點實驗室,河南 鄭州450000)

目的探討纖溶酶原激活物抑制劑-1(Plasminogen activator inhibitor-1,PAI-1)啟動子熒光素酶表達質粒構建中擴增、轉化、酶切及連接的問題。方法利用PCR技術擴增1100 bp長度PAI-1啟動子片段,與PUC-19T載體連接,將PUC19T-PAI-1 1100質粒,及熒光素酶報告基因pGL3-Basic質粒轉染大腸肝菌(DH5a)后擴增,提取并純化;以BglⅡ,MluⅠ酶切,電泳并回收PAI-1 1100片段和pGL3-Basic酶切大片段,將PAI-1 1100片段插入熒光素酶報告基因pGL3-Basic中,構建含PAI-1 1100片段熒光素酶質粒。結果擴增PAI-1 1100 bp片段成功,目的片段與載體PUC19T,pGL3-Basic載體連接條件較苛刻,需要增加連接時間及效率的摸索。結論 控制擴增時DNA濃度,膠回收,感受態質量,LB平板質量,內切酶,連接時間及質量比等問題都可增加連接成功概率。

PAI-1;啟動子;熒光素酶報告基因;載體連接

基因重組技術是我們在分子生物學研究中較常使用到的基本技術,也是分子生物學實驗的基礎,它在現代中醫藥的研究中應用越來越廣泛。載體構建是將外源性DNA目的片段通過重組技術轉化入受體細胞中繁殖及表達,人工構建為需要的目的質粒,為進一步實驗做基礎[1,2]。當外源性DNA片段插入到相應載體內時,由于操作方法繁瑣,所需時間長,人為性因素較大,容易導致實驗難以繼續。本文根據自身操作,在擴增、酶切及連接問題上進行總結,現報道如下。

1 實驗材料

1.1 試劑

報告基因表達載體pGL-3Basic(PromegaE6721)、PUC19T載體(TAKARA公司D);大腸桿菌DH5α感受態菌株(TAKARA公司D9057A)、人血基因組DNA提取試劑盒(北京天根生化科技公司)、PCR擴增mix(北京康為公司CW0069)、DNA marker V、500 bp DNA marker(上海萊楓生物科技有限公司);DNA凝膠回收試劑盒(GX50)、DNA質粒小量提取試劑盒(Axygen公司AP-MN);限制性內切酶BglⅡ(Fermentas公司ER0561)和MluⅠ(Fermentas公司ER0081)、T4 DNA連接酶(Fermentas公司ER0041);瓊脂糖(美國Invitrogen公司)。

1.2 儀器

PCR儀(美國Applied Biosystems公司),電泳系統(美國Bio-Rad公司),UVIpro型凝膠成像分析系統(英國Silver Uvitec公司),Milli-Q型超純水儀(美國Milipore公司),Thermo-I368超低溫冰箱,高速低溫離心機(德國heraus公司),恒溫培養箱(DNP-9082型上海精宏實驗設備有限公司),微量離心機(Thermo 公司 MICR017)。

2 方 法

2.1 PAI-1 1100片斷的擴增

按試劑盒操作提取人全血基因組DNA,根據設計的引物PCR擴增目的基因組DNA,1.1kb上游:5‘CGACGCGTGAGCCTAACTTTCC GACTG3’;下游:5‘GAAGATCTTCTGCCCTCTGCCTGTG3’,反應體系:PCR mix25 μL,上游引物:1 μL,下游引物1 μL,模板DNA 10 μL,ddH2O 13 μL,總反應體系50 μL。反應條件:95 ℃,預變性3 min,95 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸5 min,35個循環。取5 u PCR產物進行1%瓊脂糖凝膠電泳,在紫外透射燈下觀察電泳條帶并用凝膠成像分析系統拍照[3]。

2.2 PUC19T-PAI-1 1100連接反應

獲取表達載體的信息,根據試劑盒操作進行連接反應。連接體系:PUC19T 1 μL,solutionⅠ5 μL,DNA產物:4 μL,總10 μL,16度連接3 h,見圖1、圖2。

2.3 PUC19T-PAI-1 1100及PGL-3 Basic質粒的提取

將連接的PUC19T-PAI-1 1100及pGL-3 Basic轉入大腸桿菌DH5a中。具體操作步驟如下:取3支100 μL感受態細菌于冰上融化,在其中2支分別小心加入連接產物,另一支陽性對照,輕輕混勻,冰水浴30 min,42 ℃熱休克90 s,快速冰浴5 min,使其驟冷。加入800 μL不含Amp的液體LB培養基,37 ℃搖床150 rpm培養1 h。3000 rpm離心3 min,棄上清,余200 μL液體使沉淀重懸,涂布于含Amp的固體LB平板上,待液體完全吸收后,37 ℃恒溫培養箱過夜培養。第2天挑取陽性克隆,使用質粒小提試劑盒抽提質粒,進行雙酶切,電泳鑒定后,純化PAI-1 1100片段和pGL-3 basic質粒,獲得目的質粒[4]。

2.4 pGL3 Basic-PAI-1 1100的連接

雙酶切PAI-1 1100片斷及pGL-3 Basic質粒,取5 μL瓊脂糖凝膠分析后,進行純化回收,再次電泳鑒定后,根據試劑盒操作進行連接反應。連接體系:T4DNA Ligase 2 μL,T4 buffer 1 μL,DNA產物:13 μL,pGL-3 Basic 4 μL,總20 μL,16度連接過夜。

2.5 pGL3 Basic-PAI-1 1100的轉化:按2.3步驟進行。

2.6 質粒小提試劑盒抽提質粒DNA并酶切鑒定,待第2天觀察連接轉化的固體LB平板,如果長出單個菌落,挑菌搖菌小提后酶切初步鑒定。

3 結 果

實驗證明,擴增時DNA濃度問題,感受態問題,內切酶問題及連接產物質量比等都會導致實驗室敗。

3.1 擴增條件及結果分析

擴增PAI-1 1100啟動子片段,并將之與PUC19T載體連接,提取后酶切純化,獲得目的片段。

3.2 連接產物酶切純化后電泳

見圖3、圖4。

圖1 pGL-3 Basic質粒載體表達信息

圖2 pUC19T連接載體表達信息

圖3 連接產物酶切圖

圖4 模板量過大導致的大量多聚體

3.3 連接后轉化

將酶切后的質粒與片段連接后,經反復實驗,LB平板上仍長不出菌斑(圖5),提示載體未與目的片段連接成功(圖6)。

圖5 感受態效率低下導致的連接產物空載

圖6 連接比例錯誤導致的空載

4 討 論

基因重組技術是分子生物學的核心技術,它從基因組DNA的提取,載體的選擇,目的片段的擴增,限制酶的切割,載體的連接,大腸桿菌的轉化,質粒的提取,每一步都可能產生問題,導致載體與目的片段不能正常連接,現分析如下:

4.1 ①DNA模板量過大會導致PCR產物電泳出現多聚體(圖4)在基因重組實驗中,基因組DNA的質量是后續所有實驗的基礎,所以,首先應保證提取高濃度的基因組DNA。人基因組DNA多存在于血白細胞內,因此,應從白細胞中提取高濃度的DNA。②膠回收問題,如果切膠時目的片段切不完全,或者切到雜帶,可能導致回收到的不是目的片段。切膠時,要保證回收到目的片段,而且膠不能再紫外線下暴露過長時間,融膠時間不能太短,以免融膠不完全,堵塞柱子,影響回收效率[5]。

4.2 感受態問題,由于使用效率不高的感受態,造成空載(圖5)。感受態細胞是處理后容易接受外來DNA進入的細胞,因此,應選擇高效率的感受態,才能使連接產物容易轉化入感受態內。建議在鋪板時同時取20 μL感受態鋪于Amp陰性LB平板上,觀察感受態生長狀況,確保沒有因感受態問題影響實驗進行。

4.3 LB平板的問題,主要是鋪板加入Amp時溫度的問題,加入Amp時溫度過高,就會導致Amp抗性失活,從而導致克隆菌斑無法篩選出來(圖6)。一般選擇將消毒好的培養基放入60 ℃水浴鍋中,待培養基溫度降至60 ℃時加入Amp,以保證Amp的未失活。

4.4 內切酶問題

①因公用buffer體積錯誤而導致酶切不開(圖7)限制酶的選擇非常重要,酶切位點選擇好后,就要選擇效率高的內切酶,了解酶的特征,注意雙酶切時公用buffer的體積問題,確定合適的酶切體系??捎脙晒苜|粒同時進行,一管雙酶切,另一管先單酶切,然后再用另一個酶單切,判斷酶切質量,保證酶切效率[6]。②酶切時間問題,酶切時間過長可能引起酶切太過,導致酶切產物丟失(圖8),應根據試劑盒選擇酶切溫度及時間,一般用16 ℃過夜或者37 ℃過夜,其實酶切時間3 h就足夠了。酶切完純化回收后,跑膠確定目的片段和載體回收回來,確保目的片段及載體仍在。

圖7 公用buffer錯誤導致的酶切錯誤

圖8 酶切時間過長導致的產物丟失

4.5 載體與目的片段的質量比問題

如果連接時載體量過大,或者載體去磷酸化,或者連接上其他目的片段的載體,可能導致連接的不是目的片段(圖9)。連接時一般載體和目的片段的比例是1∶(3~10),如果連接時效率不高,排除感受態問題后,就要反復試驗載體與目的片段的摩爾比,最好電泳一下由亮度判斷載體與目的片段大致體積,或者測一下分別的濃度再選擇用量。

經長期反復實驗總結,DNA的提取及模板量,膠回收,感受態質量,平板質量,到內切酶用量及時間,以及載體的連接整個過程都應時刻注意。但是,由于一定的局限性,我們對載體構建原理及應用,實驗結果分析的能力都有很大的不足,因此,我們應嚴格操作,盡量避免實驗中的各種問題才得出正確的結果(圖10)。

圖9 質量比錯誤導致的鏈接錯誤

圖10 排除各種問題后的正確結果

[1] Eckel RH,York DA,Rossner S,et al.Prevention Conference VII: Obesity,a worldwide epidemic related to heart disease and stroke: executive summary[J].Circulation,2004,110(18): 2968-2975.

[2] Giltay EJ,Elber JM.Visceral fat accumμLation is an important determinate of PAI-1 levels in young,nonbese men and woman modμLation bycross-sex hormone administration[J].Thromb Vasc Biol,2004,18(11):1716-1722.

[3] 方肇勤.分子生物學在中醫藥研究中的應用[M].上海:科學技術出版社,2008.

[4] 彭韋霞.Caveolin1基因沉默對胰島素刺激的內皮細胞表達PAI1的影響[D].衡陽:南華大學,2007.

[5] 尹曉玲.IL-12真核表達質粒構建及其瘤苗抗肺癌免疫作用研究[D].重慶:重慶醫科大學,2009.

[6] 張琴.EBV-LMP2A基因慢病毒載體質粒的構建及體外表達、鑒定[D].溫州:溫州醫學院,2010.

R346

B

1671-8194(2014)11-0062-02

河南省教育廳自然科學研究資助計劃項目(2010B360009);鄭州市科技公關計劃項目(0910SGYS33391-1)

*通訊作者:E-mail: zaijunh@163.com

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