劉 淼,張 月,何敏紅,周 玲,鄭 航
(南方醫科大學附屬南方醫院,廣州510515)
研究發現,高脂飲食女性發生乳腺癌的風險增加,食物中多不飽和脂肪酸如花生四烯酸(AA)攝入過多可增加乳腺癌發生的風險[1~4]。AA主要經過環氧化酶(COX)與脂氧合酶(LOX)途徑進行代謝;乳腺癌患者LOX代謝產物的表達增加[5,6]。雷帕霉素靶蛋白(mTOR)是調節細胞生長與代謝的中心信號分子,其過度激活可導致細胞增殖異常。乳腺癌患者存在mTOR信號通路的過度活化[7,8]。2012年12月~2013年6月,我們將LOX代謝產物5-羥二十烷四烯酸(HETE)、12-HETE及mTORC1抑制劑雷帕霉素(Rap)作用于體外培養的乳腺癌MCF-7細胞,探討mTORC1在5、12-HETE促進乳腺癌發生發展過程中的作用。現報告如下。
1.1 材料 乳腺癌MCF-7細胞株由本實驗室保存。DMEM培養基、胰酶及胎牛血清均購自GIBCO公司,5-HETE及12-HETE購自Cayman Chemical公司,Rap購自美國惠氏公司,β-actin、S6、山羊抗兔、兔抗山羊二抗購自Santa Cruz公司,P-S6(Ser235/236)抗體購自Cell Signaling Inc公司。
1.2 實驗方法
1.2.1 細胞培養及干預 乳腺癌MCF-7細胞培養于含10%胎牛血清、1×105U/L青霉素及鏈霉素的DMEM培養液中,置于37℃、5%CO2孵箱內培養,根據細胞生長速度適時更換培養液,用0.25%胰蛋白酶、0.02%EDTA消化分散細胞,進行傳代或接種于6、24、96孔板培養。取生長狀態良好的細胞分為四組,對照組加入0.1%DMSO,HETE組加入5-HETE 及12-HETE 15 μmol/L,Rap 組加入 Rap 100 μmol/L,HETE+Rap 組加入 Rap 100 μmol/L 及 5-HETE+12-HETE 15 μmol/L。每一濃度設6個復孔,并設陰性對照,以空白孔調零。
1.2.2 檢測指標
1.2.2.1 細胞增殖率 采用CCK-8法檢測各組細胞增殖率。各組細胞培養72 h后,每孔加入CCK-8溶液10 μL,放在培養箱內繼續作用4 h。采用酶標儀測定各組450 nm處測定光密度值,取6孔平均值表示MCF-7細胞增殖率。
1.2.2.2 mTORC1 通路蛋白表達 采用免疫印跡法檢測mTORC1通路下游蛋白P-S6(S235/236)的表達水平。各組細胞棄去培養板內培養基,加入細胞裂解液于冰上裂解,刮離細胞移入EP管內100℃煮沸10 min。將制備的蛋白樣品進行8% ~12%的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳1.5~2 h,Bio-Rad微型電轉移系統轉移至硝酸纖維素膜上(恒壓100 V,約90 min)。5%脫脂奶粉/TBST于平緩搖床上室溫封閉1 h,加入檢測蛋白的抗體(P-S6、S6及 β-actin),于平緩搖床上室溫孵育4℃孵育過夜。TBST振蕩洗膜3次,加入相應二抗,室溫孵育1 h。洗膜3次加入化學發光試劑顯色1 min左右,于暗盒內與X線膠片貼在一起進行曝光,X線膠片經顯影、定影后掃描保存,檢測P-S6、β-actin蛋白灰度值。
1.2.2.3 細胞遷移距離 各組細胞接種至6孔板,常規培養至細胞密度長至100%開始進行劃痕試驗。加入2 μg/mL絲裂霉素、0.5%血清培養基中孵育24 h,然后使用200 μL移液槍頭自上而下劃一條痕。各組細胞加藥之后立即在顯微鏡下拍照并記錄劃痕的間距,分別于18、36 h后在顯微鏡下與前同樣方法拍照并記錄劃痕距離。
1.3 統計學方法 采用SPSS13.0統計軟件。數據以±s表示,方差齊時多組間比較采用方差分析,然后采用LSD法進行兩兩比較。方差不齊時采用Welch法行多組間比較,然后采用Dunnet's T3法進行兩兩比較。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 細胞增殖率 對照組、HETE組、Rap組、HETE+Rap組細胞增殖率分別為 0.85 ±0.01、1.20 ±0.13、0.53 ± 0.08、0.54 ± 0.01,HETE 組細胞增殖率高于對照組,HETE+Rap組低于HETE組(P均<0.05)。
2.2 mTORC1通路蛋白表達 對照組、HETE組、Rap組、HETE+Rap組 P-S6蛋白灰度值分別為83.51 ±5.06、127.4 ±9.34、47.07 ±3.58、56.24 ±4.49,HETE組P-S6蛋白水平高于對照組,HETE+Rap組低于HETE組(P均<0.01)。見圖1。

圖1 各組P-S6蛋白表達水平
2.3 細胞遷移距離 HETE組MCF-7細胞18、36 h后遷移距離大于對照組(P<0.01)。HETE+Rap組細胞遷移距離小于HETE組(P<0.05),與對照組相仿。見表1。
AA是人體的一種必需脂肪酸,屬于n-6系列的多不飽和脂肪酸。AA廣泛參與自身免疫、過敏、哮喘、炎癥等多種生理過程,與腫瘤的形成與發展也密切相關。AA可被轉化為不同種類的類花生酸物質,可經 LOX途徑代謝為5-HETE、8-HETE、12-HETE、15-HETE等,可通過具有生物活性的代謝產物影響細胞信號轉導、細胞代謝,并與包括腫瘤在內的多種疾病發生有關,如激活P44/22有絲分裂原活化蛋白激酶和PI3K/Akt激酶途徑,可促進胰腺癌細胞內DNA合成。研究發現,乳腺癌患者乳腺癌組織中AA代謝產物5-LOX與12-LOX均有高表達,提示AA能增加患乳腺癌的風險,并與乳腺癌的進展程度和預后密切相關[9~11]。本研究發現,HETE 組MCF-7細胞增殖率高于對照組,提示5、12-HETE能夠促進乳腺癌細胞的增殖,在乳腺癌發生中起重要作用。
表1 各組MCF-7細胞遷移距離(μm,±s)

表1 各組MCF-7細胞遷移距離(μm,±s)
注:與對照組比較,*P <0.05;與 HETE 組比較,#P <0.05
組別 遷移距離18 h 36 h HETE 組 632.96 ±24.81 748.08 ±22.82#Rap 組 512.31 ±16.88 633.25 ±30.20#HETE+Rap 組 520.74 ±32.31 630.46 ±24.85#對照組506.83 ±24.66 617.37 ±15.79
mTOR是一種高度保守的絲氨酸/蘇氨酸激酶,在細胞內通過與其它分子形成復合物而行使生物學功能,目前認為主要形成mTORC1和mTORC2兩種復合物。它整合了營養、生長因子、能量代謝和應激等多個信號通路,控制細胞生長、增殖、存活與代謝,與細胞能量代謝、脂類合成、增殖、凋亡相關[12]。mTORC1下游的直接底物為S6K1及4E-BP1,核糖體蛋白S6作為S6K1的底物磷酸化后促進核糖體的發生,從而促進蛋白質合成及細胞增殖,可作為mTORC1活性檢測的重要指標。Rap是mTOR特異抑制劑,用于治療癌癥、抗移植排斥等[11]。本研究發現,5、12-HETE使 MCF-7細胞 mTORC1下游 S6的磷酸化水平升高,且這種磷酸化作用可被mTORC1抑制劑 Rap抑制;同時 Rap可抑制5、12-HETE對 MCF-7細胞的促增殖作用,提示5、12-HETE對MCF-7細胞的促增殖作用中存在mTORC1通路激活,說明mTORC1通路參與5、12-HETE促進乳腺癌發生的過程。
本研究發現,HETE組MCF-7細胞遷移距離大于對照組,HETE+Rap組細胞遷移距離小于HETE組,提示5、12-HETE可促進乳腺癌細胞的遷移,這種遷移作用可被mTORC1抑制劑Rap抑制,說明mTORC1參與了5、12-HETE促進乳腺癌遷移的過程。
綜上所述,mTORC1在5、12-HETE促進乳腺癌發生發展過程中發揮關鍵作用,這為乳腺癌發病機理提供新內容,為發展5、12-HETE及mTORC1抑制劑、單獨或聯合其他藥物治療乳腺癌的新策略提供了理論依據。
[1]Aggarwal BB,Vijayalekshmi RV,Sung B.Targeting inflammatory pathways for prevention and therapy of cancer:short-term friend,long-term foe[J].Clin Cancer Res,2009,15(2):425-430.
[2]Lee MM,Lin SS.Dietary fat and breast cancer[J].Annu Rev Nutr,2000,20(4):221-248.
[3]Capone SL,Bagga D,Glaspy JA.Relationship between omega-3 and omega-6 fatty acid ratios and breast cancer[J].Nutrition,1997,13(9):822-824.
[4]Holmes MD,Hunter DJ,Colditz GA,et al.Association of dietary intake of fat and fatty acids with risk of breast cancer[J].JAMA,1999,281(10):914-920.
[5]Singh-Ranger G,Salhab M,Mokbel K.The role of cyclooxygenase-2 in breast cancer:review[J].Breast Cancer Res Treat,2008,109(2):189-198.
[6]Jiang WG,Douglas-Jones AG,Mansel RE.Aberrant expression of 5-lipoxygenase-activating protein(5-LOXAP)has prognostic and survival significance in patients with breast cancer[J].Prostagl Leukot Essent Fatty Acids,2006,74(2):125-134.
[7]Jiang WG,Douglas-Jones AG,Mansel RE.Reduction of isoforms of 15-lipoxygenase(15-LOX)-1 and 15-LOX-2 in human breast cancer[J].Prostagl Leukot Essent Fatty Acids.2006,74(4),235-445.
[8]Guertin DA,Sabatini DM.Defining the role of mTOR in cancer[J].Cancer Cell,2007,12(1):9-22.
[9]Pidgeon GP,Lysaght J,Krishnamoorthy S,et al.Lipoxygenase metabolism:roles in tumor progression and survival[J].Cancer Metastasis Rev,2007,26(3-4):503-524.
[10]You J,Mi D,Zhou X,et al.A positive feedback between activated extracellularly regulated kinase and cyclooxygenase/lipoxygenase maintains proliferation and migration of breast cancer cells[J].Endocrinology,2009,150(4):1607-1617.
[11]Li DM,Feng YM.Signaling mechanism of cell adhesion molecules in breast cancer metastasis:potential therapeutic targets[J].Breast Cancer Res Treat,2011,128(1):7-21.
[12]Mathieu L,David M.Sabatini G.mTOR signaling at a glance[J].J Cell Sci,2009,122(20):3589-3594.