黃尚榮,楊雪娜,張 露,鄭明星,謝金盛,付才力
(福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,福建 福州 350108)
龍眼皮 原花青素提取工藝優(yōu)化及其抗氧化活性測(cè)定
黃尚榮,楊雪娜,張 露,鄭明星,謝金盛,付才力*
(福州大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,福建 福州 350108)
以龍眼果皮為原料提取原花青素。在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)曲面法研究提取時(shí)間、乙醇體積分?jǐn)?shù)、液料比和提取溫度對(duì)龍眼皮原花青素得率的影響,并對(duì)其進(jìn)行優(yōu)化。得到最佳提取工藝為提取時(shí)間25 min、液料比17:1(mL/g)、乙醇體積分?jǐn)?shù)51%、提取溫度50 ℃,此條件下的原花青素得率為1.21%。在利用Sephadex LH-20凝膠柱層析對(duì)原花青素進(jìn)行純化后,通過1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、2,2’-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)自由基清除實(shí)驗(yàn)和還原力測(cè)定,結(jié)果顯示龍眼皮原花青素具有較高的抗氧化活性。
龍眼皮;原花青素;響應(yīng)曲面法;抗氧化活性
原花青素(proanthocyanidins,PC)是自然界中僅次于木質(zhì)素的第二大類酚類物質(zhì),由黃烷醇聚合而成,因?yàn)閱误w與單位間鍵型的復(fù)雜性和單體單位的多樣性、多手性中心及取代基和聚合形態(tài)的多變性,原花青素的結(jié)構(gòu)復(fù)雜多樣,被視為重要的生物黃酮[1]。研究表明:原花青素具有抗氧化、降血脂、預(yù)防心血管疾病、抗腫瘤、抗糖尿病等多種生物活性[2-4]。目前,原花青素主要從葡萄籽、松樹皮中提取。尋找新的原花青素來源和新型結(jié)構(gòu)的原花青素已成為科研工作者的研究熱點(diǎn)。王燕芹等[5]利用響應(yīng)曲面法優(yōu)化了銀杏葉中原花青素的提取工藝;FU Caili等[6-7]從山竹皮和修蕨根中分離出的原花青素被證明具有高抗氧化活性。
龍眼(Dimocarpus longan Lour)為無患子科(Euphoraceae)植物龍眼的果實(shí),是一種優(yōu)異的鮮食和加工兼用型水果。中國(guó)為世界龍眼主產(chǎn)國(guó)之一,種植面積超過46.7萬平方公里,年產(chǎn)量超過100萬 t,居世界首位[8]。但由于缺乏有效的利用手段,占龍眼果實(shí)鮮質(zhì)量17%以上的果皮、果核被當(dāng)做廢物丟棄[9],全國(guó)每年被廢棄的龍眼果皮、果核高達(dá)2萬 t以上,不僅附加值幾乎為零,還造成環(huán)境污染[8]。
龍眼皮中富含多種生理活性物質(zhì),包括多糖、多酚、黃酮、原花青素等[10-11]。He Ning等[12]系統(tǒng)性調(diào)查了中國(guó)12 種龍眼果皮、果肉、果核中的總酚含量、單寧含量及總原花青素含量,結(jié)果表明,每100 g龍眼果皮、果核中總原花青素的最高含量分別為140 mg和112 mg,含量較豐富。Soong和Barlow在分析新加坡市場(chǎng)上的龍眼的理化成分時(shí),發(fā)現(xiàn)龍眼中含有原花青素二聚體[13]。然而,如何高效提取龍眼皮中原花青素,還缺乏研究報(bào)道,龍眼皮原花青素的抗氧化活性還有待研究。
本實(shí)驗(yàn)在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用響應(yīng)曲面法對(duì)龍眼皮原花青素的提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,分析提取時(shí)間、液料比、乙醇體積分?jǐn)?shù)和提取溫度對(duì)原花青素得率的影響,并建立數(shù)學(xué)模型;同時(shí)利用Sephadex LH-20凝膠柱對(duì)原花青素進(jìn)行純化,并分析其抗氧化活性,為新型食品天然抗氧化劑的開發(fā)利用以及龍眼皮的深加工提供理論和技術(shù)支持。
1.1 材料與試劑
龍眼于當(dāng)?shù)厥袌?chǎng)購(gòu)買,果皮經(jīng)曬干后磨粉,于-20 ℃冷藏;兒茶素標(biāo)準(zhǔn)品(純度98%)、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH) 阿拉丁試劑(上海)有限公司;2,2’-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽[2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt,ABTS] 美國(guó)Sigma公司;香草醛、抗壞血酸 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;其他試劑均為分析純。
1.2 儀器與設(shè)備
KQ-100DE型數(shù)控超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;HWS24電熱恒溫水浴鍋 上海一恒科技有限公司;THZ-82恒溫振蕩器 常州國(guó)華電器有限公司;T6紫外-可見分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限公司;N-1001真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海愛朗儀器有限公司;電子天平 美國(guó)丹佛儀器公司;CF16RXII高速冷凍離心機(jī) 日本Hitachi公司。
1.3 方法
1.3.1 龍眼皮原花青素的提取工藝
準(zhǔn)確稱取1.0 g龍眼皮原料于100 mL錐形瓶中,加入一定體積分?jǐn)?shù)乙醇,在設(shè)定的不同液料比條件下,于設(shè)定好溫度的恒溫振蕩器中提取一定時(shí)間,將提取液真空抽濾并用甲醇定容至50 mL,稀釋一定倍數(shù)后測(cè)定原花青素含量。
1.3.2 龍眼皮原花青素提取工藝優(yōu)化

表1 響應(yīng)曲面試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平編碼表Table1 Factors and levels used in response surface experimental design
在其他條件一致時(shí),分別研究提取時(shí)間(X1)、液料比(X2)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(X3)和提取溫度(X4)對(duì)提取效果的影響。在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用Box-Behnken試驗(yàn)進(jìn)行試驗(yàn)設(shè)計(jì),用Design Expert 8.0軟件進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化分析,確定最佳提取工藝。因素水平編碼表如表1所示。
1.3.3 龍眼皮原花青素的純化
在最優(yōu)工藝條件下提取龍眼皮原花青素,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去乙醇,3 000×g離心15 min,上清液加入一定體積的三氯甲烷萃取,收集水相。將水相旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮至一定體積,經(jīng)0.45 μm濾膜過濾,上樣至Sephadex LH-20凝膠柱(凝膠柱先用體積分?jǐn)?shù)50%甲醇溶液平衡),用體積分?jǐn)?shù)50%甲醇溶液洗脫至洗脫液無色,再用500 mL體積分?jǐn)?shù)70%丙酮洗脫,收集丙酮洗脫部分,將洗脫液真空濃縮、冷凍干燥,即獲得純化的原花青素,于-20 ℃冰箱中儲(chǔ)藏備用。
1.3.4 原花青素含量測(cè)定
為了減少樣品基質(zhì)對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響,保證原花青素測(cè)定數(shù)據(jù)的可靠性,在不同液料比條件下對(duì)龍眼皮原花青素進(jìn)行提取,并同時(shí)采用香草醛-鹽酸法[14]、香草醛-硫酸法[15]測(cè)定提取液中原花青素含量,考察兩種方法之間的差異并進(jìn)行測(cè)定方法的復(fù)核和確認(rèn)。以兒茶素標(biāo)準(zhǔn)品分別繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,測(cè)定提取液中龍眼皮原花青素的質(zhì)量濃度,并換算成質(zhì)量,按下式計(jì)算得率:

香草醛-硫酸法:以兒茶素為標(biāo)準(zhǔn)品,分別配制質(zhì)量濃度為15、30、45、60、75、90 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。得到回歸方程Y=0.006 3X+0.009 3,R2=0.998 3。
香草醛-鹽酸法:以兒茶素為標(biāo)準(zhǔn)品,分別配制質(zhì)量濃度為50、100、150、200、250、300 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。得到回歸方程Y=0.003X+0.044,R2=0.991 3。
1.3.5 龍眼皮原花青素的體外抗氧化活性
1.3.5.1 DPPH自由基清除能力
參考Villa?o等[16]的方法。取不同質(zhì)量濃度的樣品0.1 mL,加入3.9 mL質(zhì)量濃度為25 mg/L的DPPH甲醇溶液(現(xiàn)用現(xiàn)配),搖勻,暗處反應(yīng)30 min后在515 nm處測(cè)吸光度。以VC作為對(duì)照。計(jì)算半抑制濃度(half maximal(50%) inhibitory concentration,IC50)。
按下式計(jì)算DPPH自由基清除率:

式中:A0為空白組吸光度;A1為樣品組吸光度。
1.3.5.2 ABTS自由基清除能力
參考Re等[17]的方法,略作修改。ABTS儲(chǔ)備液(7 mmol/L)與過硫酸鉀(終物質(zhì)的量濃度2.45 mmol/L)按1:0.5比例混合,混合液于室溫下暗處反應(yīng)12~16 h產(chǎn)生ABTS自由基。ABTS自由基溶液使用前用甲醇稀釋至734 nm處的吸光度為(0.700±0.020)。
1 mL不同質(zhì)量濃度的樣品中加入4 mL ABTS自由基溶液,30 ℃條件下反應(yīng)6 min后于與734 nm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度。以VC作為對(duì)照,計(jì)算IC50。
按下式計(jì)算ABTS自由基清除率:

式中:A0為空白組吸光度;A1為樣品組吸光度。1.3.5.3 還原力
參考Yen等[18]的方法。取1 mL不同質(zhì)量濃度的樣品,依次加入2.5 mL磷酸鹽緩沖液(200 mmol/L,pH 6.6),2.5 mL 1%的K3[Fe(CN)6]溶液。在50 ℃反應(yīng)20 min后,加入1 mL 10%的三氯乙酸,4 000 r/min離心10 min。取上清液2.5 mL,加入2.5 mL蒸餾水和0.5 mL 0.1%的FeCl3溶液,在700 nm處測(cè)吸光度。吸光度越高說明還原力越強(qiáng)。以VC作為對(duì)照。IC50值定義為:吸光度達(dá)到0.5時(shí)樣品的質(zhì)量濃度。
2.1 單因素試驗(yàn)
2.1.1 液料比的選擇
在提取時(shí)間25 min,乙醇體積分?jǐn)?shù)40%,提取溫度50 ℃的條件下,液料比對(duì)原花青素得率的影響見圖1所示。

圖1 液料比對(duì)原花青素提取效果的影響Fig.1 Effect of solvent-to-solid ratio on the extraction efficiency of proanthocyanidins
原花青素的測(cè)定方法較多。從測(cè)定方法的靈敏度、準(zhǔn)確性及簡(jiǎn)便性來講,目前應(yīng)用較多的是酸化香草醛法[14-15]。周蕓等[14]在探索蓮房原花青素制備工藝時(shí),采用香草醛-鹽酸法測(cè)定蓮房原花青素含量;而孫蕓等實(shí)驗(yàn)表明,在測(cè)定葡萄籽原花青素含量時(shí),香草醛-硫酸法是優(yōu)異的測(cè)定方法[15]。為了避免所采用的原花青素測(cè)定方法不適用于龍眼皮這種樣品基質(zhì),確保原花青素檢測(cè)數(shù)據(jù)的可靠性,實(shí)驗(yàn)對(duì)不同液料比條件下的原花青素提取液,同時(shí)采用香草醛-鹽酸法[14]、香草醛-硫酸法[15]測(cè)定原花青素含量,考察它們之間的差異并進(jìn)行方法復(fù)核。由圖1可知,兩種測(cè)定方法測(cè)定原花青素含量,結(jié)果相差不大。文獻(xiàn)[19]表明,在測(cè)定醇溶液中原花青素含量的香草醛反應(yīng)體系中,以硫酸催化的反應(yīng)靈敏度高于鹽酸。因此,本實(shí)驗(yàn)采用香草醛-硫酸法測(cè)定原花青素含量。
圖1進(jìn)一步表明,隨著液料比逐漸增加,原花青素得率呈增大趨勢(shì)。但當(dāng)液料比達(dá)到15:1時(shí),提取達(dá)到飽和。再增大提取劑的量,反而促進(jìn)雜質(zhì)的溶出,不利于有效成分的提取。這可能是由于液料比增大時(shí),原花青素與提取劑在單位時(shí)間內(nèi)存在較大的質(zhì)量濃度梯度,擴(kuò)散系數(shù)大,有利于原花青素溶出。因此在設(shè)計(jì)中心組合試驗(yàn)時(shí),以10:1、15:1、20:1(mL/g)為液料比的3 個(gè)水平。
2.1.2 提取時(shí)間的選擇
在液料比10:1(mL/g),乙醇體積分?jǐn)?shù)40%,提取溫度50 ℃的條件下,提取時(shí)間對(duì)原花青素得率的影響見圖2。

圖2 提取時(shí)間對(duì)原花青素提取效果的影響Fig.2 Effect of extraction time on the extraction efficiency of proanthocyanidins
由圖2可知,隨著提取時(shí)間延長(zhǎng),原花青素得率逐漸增大。但是當(dāng)提取時(shí)間超過25 min后,原花青素得率逐漸下降。故提取時(shí)間選擇在20~30 min為宜。
2.1.3 乙醇體積分?jǐn)?shù)的選擇
在提取時(shí)間25 min,液料比15:1(mL/g),提取溫度50 ℃的條件下,乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素得率的影響見圖3。

圖3 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素提取效果的影響Fig.3 Effect of ethanol concentration on the extraction efficiency of proanthocyanidins
由圖3可知,隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,原花青素的得率逐漸增加。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)達(dá)到50%時(shí)原花青素得率達(dá)到最大,之后隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加原花青素得率呈下降趨勢(shì)。原花青素為極性化合物,適宜的乙醇溶液更容易將原花青素與其他大分子物質(zhì)所形成的鏈接鍵打斷,提高原花青素得率;乙醇體積分?jǐn)?shù)過大,會(huì)使一些醇溶型雜質(zhì)、親脂性強(qiáng)的成分溶出量增加,這些成分與原花青素競(jìng)爭(zhēng)同乙醇-水分子結(jié)合,而導(dǎo)致得率下降[20]。因此,選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)在40%~60%為宜。
2.1.4 提取溫度的選擇
在提取時(shí)間25 min,液料比15:1(mL/g),乙醇體積分?jǐn)?shù)50%的條件下,提取溫度對(duì)原花青素得率的影響見圖4所示。
由圖4可知,隨著提取溫度的升高,原花青素的得率不斷增加,到50 ℃時(shí)達(dá)到最高;繼續(xù)升高溫度,提取率反而下降。這可能是由于溫度升高加速細(xì)胞破裂,有利于原花青素溶出;但由于原花青素是熱敏性物質(zhì),高溫會(huì)加速其分解,因此提取溫度不宜過高。選擇40~60 ℃為宜。
2.2 響應(yīng)曲面試驗(yàn)
利用Design-Expert軟件對(duì)表2試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行回歸分析,得到回歸方程:

對(duì)模型進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表3。由表3可知,模型的顯著水平遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于0.05,表明模型效應(yīng)顯著;失擬項(xiàng)P=0.101 2≥0.05,表明方程對(duì)試驗(yàn)的擬合度較好。此外,X2、、、、對(duì)原花青素得率的影響顯著,表明液料比(X2)在所取水平范圍內(nèi)對(duì)原花青素得率的變動(dòng)有顯著影響。而一次項(xiàng)X1、X3、X4即提取時(shí)間、乙醇體積分?jǐn)?shù)及提取溫度對(duì)回歸方程的影響不顯著,而對(duì)應(yīng)的平方項(xiàng)影響顯著,說明三個(gè)因素所采取的試驗(yàn)水平,整體已經(jīng)較好的接近最優(yōu)解附近的曲面中心區(qū)域。因此,在優(yōu)化龍眼皮原花青素提取工藝時(shí),合理的液料比具有至關(guān)重要的作用。由F值可知,各因素對(duì)龍眼皮原花青素得率的影響依次為X2(液料比)>X3(乙醇體積分?jǐn)?shù))>X1(提取時(shí)間)>X4(提取溫度)。

表2 響應(yīng)曲面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table2 Design matrix and corresponding results of RSM experiments

表3 方差分析表Table3 Analysis of variance for the regression model
利用Design-Expert軟件中的響應(yīng)面和等高線圖對(duì)4因素間的交互作用進(jìn)行分析,結(jié)果如圖5~10所示。

圖5 提取時(shí)間和液料比的響應(yīng)面和等高線Fig.5 Response surfaces and contour plots for extraction time and ratio of liquid to material
由圖5可知,液料比不變時(shí),提取時(shí)間對(duì)原花青素得率的影響呈先增大后減小的趨勢(shì),但趨勢(shì)不明顯。而當(dāng)提取時(shí)間不變時(shí),隨著液料比增大,原花青素的得率逐漸增大,之后趨于平緩。由于等高線與兩因素坐標(biāo)的交點(diǎn)數(shù)中,數(shù)量多的即為主效應(yīng)因子[21],相比之下,液料比對(duì)原花青素得率的影響更為顯著。
由圖6可知,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)不變時(shí),提取時(shí)間對(duì)原花青素得率的影響呈現(xiàn)增加后降低的趨勢(shì)。而當(dāng)提取時(shí)間不變,隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,原花青素得率出現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì),變化較為顯著,在中心點(diǎn)附近達(dá)到最高值。乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素得率影響較為顯著。


圖6 提取時(shí)間和乙醇體積分?jǐn)?shù)的響應(yīng)面和等高線Fig.6 Response surfaces and contour plots for extraction time and ethanol concentration

圖7 提取時(shí)間和溫度的響應(yīng)面和等高線Fig.7 Response surfaces and contour plots for extraction time and temperature
由圖7可知,當(dāng)提取溫度不變時(shí),提取時(shí)間對(duì)原花青素得率的影響呈先增加后降低的趨勢(shì)。當(dāng)提取時(shí)間不變時(shí),提取溫度對(duì)原花青素得率的影響與提取時(shí)間類似。兩者對(duì)原花青素得率的影響相差不大。


圖8 液料比和乙醇體積分?jǐn)?shù)的響應(yīng)面和等高線Fig.8 Responsive surfaces and contour plots for ratio of liquid to material and ethanol concentration
從圖8可以看出,乙醇體積分?jǐn)?shù)不變時(shí),隨著液料比的增大,原花青素的得率逐漸增大。在液料比不變時(shí),隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,原花青素得率出現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì)。與乙醇體積分?jǐn)?shù)相比,液料比對(duì)原花青素得率的影響更為顯著。

圖9 液料比和溫度的響應(yīng)面和等高線Fig.9 Response surfaces and contour plots for ratio of liquid to material and ethanol concentration
由圖9可知,當(dāng)提取溫度一定時(shí),隨著液料比的增大,原花青素得率逐漸增加,后趨于平緩,液料比大致在17:1(mL/g)時(shí),原花青素提取率最高。液料比不變時(shí),隨著提取溫度的升高,原花青素得率呈先上升后下降的趨勢(shì)。與提取溫度相比,液料比為影響原花青素得率的主要因素。

圖10 乙醇體積分?jǐn)?shù)和溫度的響應(yīng)面和等高線Fig.10 Responsive surfaces and contour plots for ratio of ethanol concentration and temperature
由圖10可知,當(dāng)溫度一定時(shí),隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,原花青素得率先增加后降低,在中心點(diǎn)附近達(dá)到最大值。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)處于一定水平時(shí),隨著溫度的升高,原花青素得率也呈先增大后下降的趨勢(shì),但變化較不顯著。與溫度相比,乙醇體積分?jǐn)?shù)為影響原花青素得率的主要因素。
利用已建立的數(shù)學(xué)模型在實(shí)驗(yàn)范圍內(nèi)優(yōu)化出最優(yōu)條件為提取時(shí)間25 min、液料比17:1(mL/g)、乙醇體積分?jǐn)?shù)51%、提取溫度50 ℃,在此條件下,龍眼皮原花青素得率為1.21%。為驗(yàn)證模型的可靠性,在此條件下進(jìn)行8次平行試驗(yàn),龍眼皮原花青素的平均得率為1.23%。與理論預(yù)測(cè)值相比,其相對(duì)誤差約為1.33%,說明優(yōu)化結(jié)果可靠。
2.3 龍眼皮原花青素的抗氧化能力
2.3.1 DPPH自由基清除能力
DPPH自由基是一種相對(duì)穩(wěn)定的自由基,常用于評(píng)估抗氧化劑的抗氧化能力[22]。龍眼皮原花青素對(duì)DPPH自由基的清除能力見圖11。

圖11 龍眼皮原花青素的DPPH自由基清除能力Fig.11 DPPH radical scavenging activities of proanthocyanidins from longan pericarp and VC as positive control
由圖11可知,當(dāng)質(zhì)量濃度小于0.2 mg/mL時(shí),龍眼皮原花青素對(duì)DPPH自由基的清除能力呈一定的量效關(guān)系,清除率隨著原花青素質(zhì)量濃度的增加而逐漸增大。當(dāng)原花青素質(zhì)量濃度達(dá)到0.2 mg/mL時(shí),清除率在90%以上。與VC相比,龍眼皮原花青素呈現(xiàn)出較好的抗氧活性,兩者的IC50值分別為0.083 mg/mL和0.103 mg/mL(表4)。
2.3.2 ABTS自由基清除能力
ABTS自由基是通過過硫酸鉀氧化ABTS產(chǎn)生的一種自由基,在波長(zhǎng)734 nm處有最大吸收。在有氫供體抗氧化劑存在的條件下,ABTS自由基發(fā)生還原作用而褪色[17]。龍眼皮原花青素對(duì)ABTS自由基的清除能力見圖12。

圖12 龍眼皮原花青素的ABTS自由基清除能力Fig.12 ABTS radical scavenging activities of proanthocyanidins from longan pericarp and VC as positive control
由圖12可以看出,ABTS自由基清除率隨著原花青素和VC質(zhì)量濃度的增大而增大。當(dāng)質(zhì)量濃度小于20 μg/mL時(shí),龍眼皮原花青素比VC具有更強(qiáng)的ABTS自由基清除能力;當(dāng)質(zhì)量濃度大于20 μg/mL時(shí),ABTS自由基清除率達(dá)到90%以上。兩者的IC50值分別為6.64 μg/mL和9.28 μg/mL(表4)。
2.3.3 還原力
還原力強(qiáng)的樣品能很好的提供電子,其供應(yīng)的電子除了可使Fe3+還原成Fe2+外,也可以參與自由基反應(yīng),使自由基生成穩(wěn)定物質(zhì)。因此,物質(zhì)的還原能力與其抗氧化活性之間也有明顯的相關(guān)性,還原力的高低可以間接反應(yīng)抗氧化能力的強(qiáng)弱[23]。龍眼皮原花青素的還原力如圖13所示。

圖13 龍眼皮原花青素的還原力Fig.13 Reducing power of proanthocyanidins from longan pericarp and VC as positive control
由圖13可知,波長(zhǎng)700 nm處的吸光度隨龍眼皮原花青素質(zhì)量濃度的增加而增大,說明還原力與原花青素濃度呈良好的線性關(guān)系。在相同質(zhì)量濃度水平下,VC對(duì)照組的吸光度比原花青素的吸光度高,但相差不大。兩者的IC50值分別為0.061 mg/mL和0.054 mg/mL,說明龍眼皮原花青素具有較好的還原力(表4)。

表4 龍眼皮原花青素及VC的IC50值Table4 IC50 values of proanthocyanidins from longan pericarp and VC as positive control
通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)曲面優(yōu)化,確定龍眼皮原花青素的最優(yōu)提取工藝為提取時(shí)間25 min、液料比17:1(mL/g)、乙醇體積分?jǐn)?shù)51%、提取溫度50 ℃,此條件下的原花青素得率為1.21%。用Sephadex LH-20凝膠柱對(duì)原花青素進(jìn)行純化,并進(jìn)行體外抗氧化活性評(píng)價(jià),包括DPPH自由基清除能力、ABTS自由基清除能力及還原力。3 個(gè)體系的IC50值分別為0.083 mg/ mL,6.64 μg/mL與0.061 mg/mL,表明龍眼皮原花青素具有很好的抗氧化活性。
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Optimized Extraction and Antioxidant Activity of Proanthocyanidins from Longan Pericarp
HUANG Shang-rong, YANG Xue-na, ZHANG Lu, ZHENG Ming-xing, XIE Jin-sheng, FU Cai-li*
(College of Biological Science and Technology, Fuzhou University, Fuzhou 350108, China)
The extraction of proanthocyanidins from longan pericarp was optimized using response surface methodology. The effects of extraction time, solvent-to-solid ratio, ethanol concentration and extraction temperature on the yield of proanthocyanidins were investigated. The results showed that the optimal extraction conditions were as follows: an extraction time of 25 min, a ratio of liquid to material of 17:1 (mL/g), an ethanol concentration of 51% and a temperature of 50 ℃. Under these conditions, the yield of proanthocyanidins was 1.21%. The extract was then purified by Sephadex LH-20 column. The purified proanthocyanidins had high antioxidant activity as indicated by scavenging activities against, 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) and 2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS) radicals and reducing power.
longan pericarp; proanthocyanid ins; response surface methodology; antioxidant activity
TS201.1
A
1002-6630(2014)10-0068-08
10.7506/spkx1002-6630-201410013
2013-09-11
福建省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2012J05056);福建省教育廳科技項(xiàng)目(JA12032);福州大學(xué)校人才基金項(xiàng)目(1164)
黃尚榮(1988—),男,碩士,研究方向?yàn)槭称飞锛夹g(shù)。E-mail:516078470@qq.com
*通信作者:付才力(1978—),男,副研究員,博士,研究方向?yàn)槭称房茖W(xué)與工程。E-mail:caili_fu@hotmail.com