小鼠DEAF1 多克隆抗體的制備及應用

朱小慧 盛德喬 康樂 伍仙鳳 邵文 劉曉艷

（三峽大學醫學院，宜昌 443002）

DEAF1（Deformed epidermal autoregulatory factor-1）最早是從果蠅的核抽提物中純化得到的，也是果蠅早期胚胎發育所必須的一種序列特異的DNA 結合蛋白，能特異地與變形效應元件結合。與其它的轉錄因子一樣，DEAF1 也有幾個非常重要的功能結構域——氨基端的丙氨酸富含區，SAND（Sp100、AIRE-1、NucP41/75 及DEAF-1）結構域，螺旋-環-螺旋基元，MYND（myeloid、Nervy 及Deaf-1）結構域，核定位序列（Nuclear-localization sequence，NLS）和出核序列（Nuclear-export sequence，NES）［1］。SAND 結構域是一個DNA 結合結構域；MYND 結構域則含有兩個非DNA 結合的鋅指結構，它被認為可介導蛋白質-蛋白質之間的相互作用［2］。

最近的研究發現，轉錄因子DEAF1 在小鼠胰淋巴結中調控著一系列外周組織抗原（peripheral tissue antigen，PTA）基因的表達，而且，DEAF1 的功能異常與NOD 小鼠1 型糖尿病的發生密切相關［3，4］。最新研究發現，DEAF1 在淋巴結基質細胞還可以通過調控真核翻譯起始因子Eif4g3 的表達而在翻譯水平上調控很多PTA 基因的表達［5］。PTA 基因在淋巴結中的異位表達并有效提呈是外周免疫耐受建立的重要機制之一［6］，DEAF1 可能在這個過程中發揮了重要作用。

本研究擬利用多克隆抗體制備技術來制備小鼠DEAF1 的多克隆抗體，旨在為研究小鼠淋巴結中內源性DEAF1 的表達及DEAF1 調控外周組織抗原表達的分子機制奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

帶有小鼠DEAF1 cDNA 的原核表達質粒pET-28a（+）-mDF1 和真核表達質粒p3xflag-CMV-10-mDF1 由本課題組構建；Monoclonal ANTI-FLAG M2購自Sigma 公司；His-Tag（2A8）Mouse mAb 購于上海Abmart 公司；羊抗鼠IgG（H+L）-HRP 購于北京中杉金橋生物技術公司；293T 細胞株和Caski 細胞株由三峽大學分子生物研究所保存；BalB/C 小鼠購于三峽大學實驗動物中心。

1.2 方法

1.2.1 原核蛋白的表達與純化 將小鼠DEAF1 的原核表達質粒pET-28a（+）-mDF1 轉化原核表達菌株E.coli BL21；挑取單克隆，37℃恒溫培養12-16 h；按1∶50 比例轉接上一步得到的菌懸液至50 mL LB（Kan+）培養液中；37℃，220 r/min 培養2-3 h（菌液OD=0.4-0.6）即對數期時，加入誘導劑IPTG（終濃度為1 mmol/L）；37℃，220 r/min 培養10-12 h。

4℃，5 000 r/min 離心10 min 收菌；棄上清，10 mL 1×PBS 重懸沉淀；冰浴超聲（功率400 W，超聲2 s，間隔2 s，工作60 次，循環6 次）；12 000 r/min，4℃離心20 min；上清制樣，沉淀用于尿素梯度裂解。

1 mol/L Urea 5 mL 重懸沉淀，冰置裂解30 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣，沉淀用2 mol/L Urea 5 mL 重懸，冰置裂解20 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣，沉淀用3 mol/L Urea 5 mL 重懸，冰置裂解30 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣，沉淀用4 mol/L Urea 5 mL 重懸，冰置裂解10 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣，沉淀用5 mol/L Urea 2 mL 重懸，冰置裂解5 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣后余下的-20℃保存，沉淀用6 mol/L Urea 1 mL 重懸，冰置裂解5 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣后余下的-20℃保存，沉淀用7 mol/L Urea 1 mL重懸，冰置裂解5 min；12 000 r/min，4℃離心10 min；上清制樣后余下的-20℃保存，沉淀用8 mol/L Urea 1 mL 重懸；冰置裂解2 h，裂解產物制樣后-20℃保存。

將尿素梯度裂解純度較高的蛋白進行透析，逐步去除尿素；用Millipore 公司提供的50 mL 超濾管濃縮；最后利用全波長酶標儀以BSA 建立的標準曲線做參照，測定蛋白的濃度；所得蛋白-40℃保存。純化的蛋白用SDS-PAGE 檢測和Western blot 鑒定。

1.2.2 動物免疫及多克隆抗血清的制備 以純化獲得的小鼠DEAF1 重組蛋白為抗原與完全弗氏佐劑等體積混合；冰浴超聲乳化后，皮下多點注射4-6 周齡的Balb/C 小鼠4 只，每只小鼠50 μg 抗原蛋白。4周后，進行第2 次免疫：等體積混合抗原溶液與不完全弗氏佐劑；冰浴超聲乳化后，皮下多點注射，每只小鼠25 μg 抗原蛋白。2 周后，進行第3 次免疫，操作與第2 次免疫相同。1 周后，免疫小鼠斷尾取血，通過間接ELISA 法檢測其血清的效價。之后，眼球取血效價達標的Balb/C 小鼠，以獲得多克隆抗血清。

1.2.3 鼠抗DEAF1 多克隆抗血清用于Western blot檢測真核細胞表達的DEAF1 蛋白 瞬時轉染小鼠DEAF1 的真核表達質粒p3xflag-CMV-10-mDF1 至人腎上皮細胞系293T 中；48 h 后裂解細胞收取總蛋白制樣。SDS-PAGE 電泳后轉膜，5%牛奶室溫封閉2 h；分別加入鼠抗DEAF1 多克隆抗血清（5%牛奶進行1∶5 000 稀釋），β-Actin 鼠源單抗（利用5%牛奶進行1∶3 000 稀釋）和Flag-Tag 單抗（利用5%牛奶進行1∶2 000 稀釋），4℃孵育過夜；加入TBST洗滌3 次（10 min/次）；加入羊抗鼠IgG-HRP（利用TBST 進行1∶5 000 稀釋），室溫孵育1 h；加入TBST 洗滌3 次（10 min/次）；ECL 顯影。

1.2.4 鼠抗DEAF1 多克隆抗血清用于免疫熒光 瞬時轉染p3xflag-CMV-10-DF1 至人的宮頸癌細胞株Caski 中；24 h 后 重 新 鋪24 孔 板；5% CO2培 養 箱37℃恒溫培養至細胞處于最佳狀態，用于后續試驗。

1×PBS 漂洗3 次（5 min/次）；4%多聚甲醛（500 μL/孔）固定15 min；1×PBS 漂洗3 次（5 min/次）；0.5% Triton X-100（500 μL/孔）處理20 min；1×PBS 漂洗3 次（5 min/次）；10%的山羊血清（500 μL/孔）37℃封閉20 min；吸去封閉液，加入制備的鼠抗DEAF1 多克隆抗血清（1×PBS 進行1∶500 稀釋）4℃孵育過夜（以1×PBS 作為空白對照，未經免疫的Balb/C 小鼠的血清作為陰性對照）；1×PBS漂洗3 次（5 min/次）。37℃避光加入熒光標記的二抗羊抗鼠Rhodamine（200 μL/孔）（1×PBS 進行1∶150 稀釋）孵育30 min；1×PBS 漂洗3 次（5 min/次）；熒光倒置顯微鏡觀察分析，拍片記錄結果。

1.2.5 DEAF1 多克隆抗血清用于免疫沉淀 瞬時轉染小鼠p3xFlag-CMV-10-mDF1 至人的宮頸癌細胞株Caski 中；轉染48 h 后，胰酶消化收集細胞；加入Western blot 裂解液冰浴裂解獲得總蛋白；分組后，加入一抗，4℃孵育過夜。

取80 μL protein A 瓊脂糖珠儲存液；離心后棄上清，加入Western blot 裂解液洗滌沉淀3 次；加入80 μL Western blot 裂解液重懸沉淀；將重懸后的protein A 瓊脂糖珠加到蛋白樣品中（20 μL/份），4℃孵育4 h；離心棄上清后，加入Western blot 洗滌沉淀4 次；離心棄上清，沉淀制樣；Western blot 檢測免疫沉淀的結果。

2 結果

2.1 尿素梯度裂解包涵體純化重組蛋白DEAF1

大量誘導重組蛋白DEAF1 在E.coli BL 21 中表達10 h（圖1）；收菌后超聲破碎細胞；離心后的沉淀逐級裂解；各級裂解的產物制樣后經SDS-PAGE電泳鑒定濃度和純度，結果（圖2）顯示，經尿素梯度裂解，8 mol/L Urea 裂解的產物中，重組蛋白DEAF1 的相對含量最高。

2.2 Western blot鑒定重組蛋白的表達與純化

上樣誘導前后以及尿素梯度裂解包涵體7 mol/L尿素裂解的產物，進行SDS-PAGE 電泳；轉膜后于5%牛奶中室溫封閉2 h；加入6×His 鼠源單抗（5%牛奶進行1∶5 000 稀釋）4℃孵育過夜；TBST 洗滌3次（10 min/次）；加入羊抗鼠IgG-HRP（TBST 進行1∶3 000 稀釋）室溫孵育1 h；TBST 洗滌3 次（10 min/次）；暗室內ECL 顯影，結果（圖3）顯示，誘導純化獲得的蛋白為重組的DEAF1 蛋白。

2.3 鼠抗DEAF1多克隆抗血清的測定

以純化獲得的小鼠DEAF1 重組蛋白包被96 孔酶標板（100 μL/孔）通過ELISA 法測定小鼠血清的效價。結果（圖4）顯示，經過3 次免疫，4 只小鼠血清的效價均達到了較高的水平，以2 號小鼠血清的效價為最高，故將其用于后面的試驗中。

2.4 DEAF1多克隆抗血清用于Western blot檢測真

核表達的DEAF1蛋白

依據1.2.2 所述的方法將所制備的DEAF1 多克隆抗血清用于Western blot 檢測293T 細胞中DEAF1的表達情況，結果（圖5）顯示，所制備的鼠抗DEAF1 多克隆抗血清可有效結合真核表達的DEAF1蛋白，具有較高的特異性。

圖5 Western blot 檢測制備的鼠抗DEAF1 多克隆抗血清對于真核表達的DEAF1 蛋白的特異性和敏感性

2.5 DEAF1多克隆抗血清用于免疫熒光分析

將所制備的DEAF1 多克隆抗血清用于分析DEAF1 在Caski 細胞中的定位，結果（圖6）顯示，DEAF1 蛋白主要定位于細胞核中，與文獻報道相一致，表明所制備的DEAF1 多克隆抗血清具備較高的敏感性。

圖6 制備鼠抗DEAF1 多克隆抗體用于免疫熒光法分析人宮頸癌細胞株Caski 中DEAF1 蛋白的表達（1∶500）（400×）

2.6 DEAF1多克隆抗血清用于免疫沉淀試驗

除了特異性和敏感性，親和力也是衡量抗體質量的一個重要指標。為此，本研究將所制備鼠抗DEAF1 多克隆抗血清用于免疫沉淀試驗。結果（圖7）顯示，該鼠抗DEAF1 多克隆抗血清的親和力足夠沉淀Caski 細胞中所表達的DEAF1 蛋白。

圖7 制備鼠抗DEAF1 多克隆抗血清通過免疫沉淀試驗檢測 Caski，Caski/DEAF1 中的DEAF1 蛋白

3 討論

最新研究發現，DEAF1 不僅可以直接控制幾百種基因的轉錄，而且可以通過控制真核翻譯起始因子Eif4g3 的表達間接控制多種基因的翻譯，其功能異常與T1DM 的發生密切相關［3-5］。

已有的關于DEAF1 表達變化的研究只是轉錄水平，其蛋白水平的變化還不清楚。目前商品化的抗體特異性和敏感性都不是很好，故本研究擬制備合適的DEAF1 抗體，為研究小鼠胰淋巴結中內源性DEAF1 的表達及DEAF1 調控外周組織抗原表達的分子機制打下基礎。

本研究將小鼠DEAF1 的原核表達質粒pET-28a（+）-mDF1 轉化感受態E. coli BL21 后，經IPTG 誘導可高效表達出DEAF1 重組蛋白；但重組DEAF1蛋白以包涵體形式存在，所以采用了尿素梯度裂解包涵體的方法來純化重組DEAF1 蛋白；以此重組蛋白為抗原與弗氏佐劑等體積混合后，皮下多點注射Balb/C 小鼠，最終成功制備出鼠抗DEAF1 的多克隆抗血清，經Western blot、免疫熒光、免疫沉淀分析鑒定，該鼠抗DEAF1 的多克隆抗血清具有較高的特異性、敏感度和親和力，可為進一步開展DEAF1 的蛋白水平研究奠定基礎。

另外，本研究所采用的尿素梯度裂解包涵體純化蛋白的方法是在參照文獻［8］的基礎上，依據本試驗的條件，自行摸索出來的方法。與其他蛋白純化的方法相比［9-14］，該方法不僅操作簡單耗時短而且經濟實用，所用的藥品試劑方便易取，目的蛋白的回收率也比較高。

4 結論

本研究應用分子克隆和原核表達技術獲得了原核表達的DEAF1 蛋白，利用改良的尿素梯度裂解法從包涵體中純化得到了重組DEAF1 蛋白，以此重組蛋白免疫小鼠，制備鼠抗DEAF1 多克隆抗血清。ELISA、Western blot、免疫熒光、和免疫沉淀的結果表明，該多克隆抗血清具有良好的特異性、敏感性和親和力，可用于內源性DEAF1 的表達及熒光定位分析。

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