脊椎動物的骨骼形成是一個復雜的過程。從間充質細胞的富集、體節的形成、軟骨內成骨或膜內成骨到骨骼的鈣化,軟骨細胞、成骨細胞和破骨細胞之間總是存在功能的平衡。軟骨內成骨作為骨骼形成的一種主要方式,受多種因素的影響,Notch通路在該過程中起到了極其重要的作用。
1 軟骨內成骨
脊椎動物的骨骼發育主要有兩種形式:一種是以顱面部骨及鎖骨為代表的膜內成骨,還有以中軸骨、四肢骨及顱底骨為代表的軟骨內成骨[1]。軟骨內成骨發生在胚胎早期,始于間充質細胞的富集,繼而形成兩種不同的細胞亞群:一個群體形成骨骼生長板,即胚胎發育的一次骨化中心,主要決定了骨的形狀;另外一群體則形成骨骺端關節軟骨,又被稱為二次骨化中心,進一步限定了骨的形狀和大小[2]。通常,骨的形狀不同,骨化的方式也有所不同,如:四肢的長骨為二次骨化形式,而椎骨則為一次骨化形成。顱底軟骨的形成及骨化類似于四肢骨,以生長板形式進行。
在間充質細胞富集區,中心區域的細胞終止增殖,進入分化,經過前肥大細胞、肥大細胞、終末肥大細胞最終分化為肥大成熟的軟骨細胞,分泌礦化的細胞外基質即形成軟骨,為下一步的骨化提供模板。軟骨由一層成纖維細胞樣細胞包裹,后者被稱為軟骨膜。當間充質細胞分化到肥大細胞階段,軟骨膜內的細胞開始分化為成骨細胞,同時軟骨膜開始轉變為血管豐富的骨膜,血管進入軟骨基質中,成骨和破骨細胞通過血管分布到軟骨基質,開始破壞軟骨基質同時分泌骨基質,形成松質骨,存留在骨膜中的成骨細胞則分泌高度鈣化的基質形成皮質骨[1]。
2 Notch信號通路
胚胎軟骨發育受復雜多變的信號通路綜合調節,從現有知識體系來看,主要包括Ihh、BMP、FGF、Wnt、Notch等信號通路[1]。其中,Notch通路通過調節胚胎期干細胞的增殖、分化與凋亡過程,參與調控哺乳動物胚胎體節發生[3]、胚胎神經系統及消化系統的發育[4],并在腫瘤的發生過程中扮演了重要的角色,現在已成為腫瘤治療研究的新靶點[5]。近年來,研究者們開始關注該通路在骨發育過程中的作用。Notch基因最初在果蠅體內發現[6],隨后眾多的研究證明其廣泛存在且高度保守。在哺乳動物,Notch受體包括Notch1-4四種,配體主要有Delta-like1、3、4和Jagged1、2共五種。作為一種跨膜蛋白受體,Notch配體首先在內質網中轉錄翻譯形成初級蛋白并被運輸到高爾基體,其中的蛋白轉化酶(protein convertases)在Notch1初級蛋白S1位點進行剪切,隨后糖基化轉移酶(glycosyltransferases)對其進行不同的糖基化修飾,從而影響配體和受體結合后的不同反應[6]。Notch與相鄰細胞上的配體結合后,膜旁負性調節區域(juxtamembrane negative control region,NRR)展開,α-secretase識別該區域并在S2位點剪切掉Notch的胞外段,隨后γ-secretase在胞內段S3位點的剪切最終產生胞內片段NICD。NICD直接進入細胞核內,與CSL(DNA結合蛋白,不同種屬中名稱不同)結合,然后募集Maml(NICD的共同激活因子)、結合組蛋白乙酰化酶和核染色質改建復合物等形成復合體,解除CSL對目標基因的轉錄抑制作用,并最終產生生物學效應[7]。
3 Notch信號通路對軟骨內成骨的影響
3.1體內試驗:胚胎12.5天(E12.5)的小鼠前肢芽區開始出現成軟骨祖細胞的聚集,此時整個干細胞聚集區都呈現Notch1陽性信號,而到16.5天(E16.5),軟骨分化成熟時,Notch1陽性細胞只分布于軟骨的邊緣區域[8]。這提示其可能參與調控軟骨內成骨全過程。進一步的模型動物研究表明:Notch過表達(Gain of function)的小鼠總體表現出圓頭短吻、胸廓小、軀干及尾部短的特點,阿辛藍-茜素紅染色顯示整體軟骨發育不全,通過軟骨內成骨方式形成的骨普遍體積較小且長度不足,肢端幾乎沒有骨化中心存在,且這種轉基因小鼠均為胚胎期致死[9-10]。也有研究者通過過表達配體激活內源性Notch通路,進一步觀察軟骨內成骨過程的變化。研究發現,在雞胚上肢區域用逆轉錄病毒過表達Del-1后,早期上肢的發育形態并無改變,而在胚胎7天以后,大小上的差異逐漸明顯起來,肢端出現畸形。值得注意的是,Notch通路的配體在脊椎動物有五種,其中一種配體的升高并不能全面解釋經典Notch通路在軟骨發育中的作用[11]。因為不同配體的表達具有階段性,故以不同配體過表達方式進行研究有利于揭示Notch通路在骨發育不同階段的影響。這一方面的研究值得進一步深入。同時,因為Notch通路在胚胎的各個系統發育,尤其是神經系統發育中有重要的作用,因此,全身敲除Notch導致胚胎早期致死,無法進行后續研究,而條件性基因敲除策略或許可以避免這一缺點,為后續的骨發育研究創造條件。
3.2體外實驗:間充質干細胞、胚胎肢芽微聚體等原代細胞有向軟骨細胞分化的潛能,常被用于軟骨分化機制的研究。ATDC5細胞系(小鼠畸胎瘤成纖維細胞系)在胰島素的誘導下發生軟骨向分化[12]。ATDC5細胞在誘導早期即開始表達Notch1和相應的配體Del1[8],這種表達的時間模式與原代細胞的培養結果相似,也類似于體內試驗中動物早期干細胞富集區Notch1的表達模式[8]。運用該體外模型,有利于探索Notch信號通路對軟骨向分化調控的機制。首先,Notch通路的激活有利于細胞的增殖:在配體Del的激活Notch信號通路的情況下,小鼠間神經嵴細胞克隆的直徑明顯增大,細胞數目顯著增加[13]。其次,在促進細胞增殖的同時,Notch也可調控體外培養細胞的軟骨向分化能力。與高表達Del1的D10細胞共培養時,ATDC5細胞軟骨結節及細胞外基質形成明顯減少[8];相反,通過DAPT(γ蛋白酶阻斷劑)阻斷Notch通路后,肢芽微聚體及間充質干細胞中NICD量明顯下降,軟骨向分化能力增強,表現為軟骨結節的表達增多[14-15];實驗從正反兩方面說明,Notch信號通路的激活能維持細胞系的增殖潛能,抑制軟骨向分化。值得注意的是ATDC5細胞系軟骨源性的細胞系,并非多能干細胞。
同樣,利用JAG1過表達的質粒使hMSC的Notch通路持續激活,則細胞會維持在聚合體狀態,不再繼續分化為成熟的圓形肥大細胞[2]。有趣的是,在小鼠神經嵴細胞成軟骨誘導初始即刻添加Delta-Fc,軟骨結節更豐富,24h后再添加相同劑量Delta-Fc,成軟骨情況不會改善[13]。兩種相反的實驗結果表明了Notch通路作用時間及細胞所處分化階段的重要性。最新的研究對Notch表達時期的重要性進行了探索,Rachel等利用人間充質干細胞3D聚體培養進行成軟骨向誘導,發現Notch通路配體Jag-1及目標基因Hey-1的表達從誘導開始便急劇上升,并在第2天到達最高值,之后迅速下降,在表達下降后,才開始出現軟骨分化標志物Col-II的上升。利用DAPT早期阻斷Notch通路可有效降低軟骨形成,同時若誘導后期Jag-1過表達持續激活Notch通路,則軟骨的形成受到抑制。Notch通路的早期激活開啟了干細胞的軟骨向分化,但在分化后期持續表達卻能抑制進一步分化進行,從而維持前體細胞狀態[16]。目前,對Notch通路調節細胞凋亡作用的研究主要集中在腫瘤發生發展領域,Notch通路能夠抑制腫瘤細胞的凋亡,現已成為腫瘤治療的新靶點[17]。而 Notch通路對ATDC5凋亡影響的初步研究表明其對凋亡沒有明顯影響[8]。
綜上所述,體內外實驗研究表明,Notch能夠促進細胞的增殖,啟動早期分化,維持前體細胞的干性,抑制細胞的進一步分化成熟,與軟骨內成骨過程密切相關。
4 Notch通路與其他通路的相互作用
作為一條高度保守的重要通路,Notch通路調節各個系統的生長發育,只依靠自身有限的受體配體作用,不足以解釋其控制發育過程的復雜性,因此通路之間的相互調節共同作用也是十分重要的。在軟骨發育中,主要的調節通路包括Sox9、BMP、FGF等可能與Notch通路有交互作用。有研究表明,Jag1通過激活Notch通路抑制Sox9的表達,另一方面,Notch也直接抑制Sox9的目的基因,兩條途徑共同作用抑制hMSC的軟骨向分化[16]。另外,研究發現FGF2能促進小鼠MSC成軟骨向分化,阻斷Notch通路后,其促進成軟骨向分化能力減弱,表現為Col-II表達減少,而利用SU5402阻斷FGF通路后,Del-Fc激活Notch通路可部分解除對Col-II的表達抑制,這說明FGF2的部分功能可以通過Notch通路行使[13]。再者,DAPT處理細胞抑制Notch通路后,BMP4表達未受影響,但相應的下游蛋白Id1表達卻有了相當的升高,這可能是由于BMP4位于Notch上游并通過其抑制成軟骨向分化過程[14]。很多證據表明Notch在影響軟骨分化的過程中與其他通路有著密切的聯系和相互作用,這是一個復雜而精細的調控網絡,具體的機制還有待進一步探討。
5 結論
軟骨內成骨過程中,Notch通路作用的細胞及分子生物學機制是非常復雜的,不同時期配體的調控、與其他通路的相互作用等在Notch行使功能時扮演了重要角色。越來越多的研究表明,Notch通路在控制干細胞的增殖和軟骨向分化、維持細胞的干細胞活性、保持基質的平衡方面起了重要的作用,而其中的具體機制仍有待探索。深入研究Notch通路對軟骨內成骨的影響有利于人們進一步理解生命發展過程,為各種先天性骨、軟骨發育不全等骨畸形的預防性診斷及治療開辟途徑。
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編輯/李陽利