張金鳳,侯振中
(東北農業大學動物醫學學院,黑龍江 哈爾濱150030)
反芻動物的干擾素Tau(IFNT)最初是作為一種抗黃體溶解因子被發現的[1]。后經基因及氨基酸序列分析被歸類為Ⅰ類干擾素[2]。研究表明,在胚胎著床前期,反芻動物的胚胎分泌IFNT作用于子宮內膜并抑制黃體溶解素-前列腺素F2α(PGF2α)的釋放,進而維持黃體的功能。此外,IFNT可以同其他的干擾素一樣誘導多種干擾素刺激基因(IFN-stimulated genes,ISGs)在子宮內膜表達[3],這些基因與孕酮誘導的基因共同作用于子宮內膜,調節與子宮容受性相關的一系列生理過程,如胚胎與子宮腔表面的接著、胚胎的生長發育、母體免疫系統調節、子宮間質細胞分化、子宮內膜血管發育、營養物質向子宮腔的運輸及母胎間的分子交換等,對反芻動物妊娠的成功建立起著決定性的作用[4]。但IFNT基因表達的分子調控機制一直未被完整的建立起來。
1.1 試驗材料
1.1.1 試驗動物樣品 本試驗中所用的動物樣品為日本黑毛和牛和荷斯坦母牛,由東京大學實驗動物中心提供。涉及的所有動物操作都經過東京大學和Zen-noh公司胚胎移植中心的實驗動物委員會認可。同期發情、超數排卵及胚胎移植方法見文獻[5]。首先對日本黑毛和牛進行超數排卵及人工授精,收集妊娠第7天的胚胎(Day0=發情當天)。將收集到的胚胎通過非外科手段移植至處于發情期第7天的荷斯坦母牛的子宮角內。將處于生長期的妊娠第17、20、22天胚胎通過非外科的子宮沖洗方式獲得。子宮沖洗后胚胎,1 000r/min離心5min,速凍保存,并送實驗室待檢。
1.1.2 細胞樣品 人絨毛膜癌JEG3細胞(HTB36,American Type Culture Collection,ATCC,Rockville,MD),用于本試驗中的質粒轉染及熒光素酶分析。培養液組成:DMEM(Invitrogen,Carlsbad,California);10%v/v胎牛血清(JRH Bi-osciences,Lenexa,KS);抗生素/抗霉菌素溶液(Invitrogen公司)。培養條件:37℃,5%CO2細胞培養箱(SANYO公司,型號:MCO-19AIC)。
1.1.3 用于PCR的引物 本試驗中用到的引物參照GenBank上各全序列確定引物,由Life Technologies Japan Ltd合成,具體引物見表1。

表1 用于PCR的引物
1.1.4 本試驗中用于熒光素酶分析的質粒 見表2。

表2 用于熒光素酶活性分析的質粒
1.2 試驗方法
1.2.1 PCR分析 將制備好的RNA反轉錄模板-cDNA 3μL用ExTaq聚合酶試劑盒按照說明書進行PCR分析。反應體系:0.5UExTaq聚合酶,1xExTaqBuffer,0.2μmol/L 上 下 游 引 物,0.2 mmol/L dNTP(脫氧核糖核苷三磷酸),cDNA 3 μL,最后用分子生物學級超純用水調整反應體積為20μL。反應條件:(1)95℃反應2min;(2)95℃30 s;(3)57℃30s;(4)72℃30s;(5)72℃10min;(6)4℃ ∞。其中(2)~(4)步重復30循環。PCR產物用1.5%瓊脂糖凝膠進行電泳,溴化乙錠顯色,在紫外光照射儀下觀察并記錄結果。
1.2.2 質粒構建 本試驗中以pGL 3為質粒載體,IFNT基因5′端上游區域切除或點突變以制備各種長度的IFNT熒光素酶報告基因。牛IFNT熒光素酶報告基因構建及轉染方法見文獻[6],具體的熒光素酶報告質粒如圖1所示。

圖1 IFNT熒光素酶報告基因構成
1.2.3 熒光素酶分析 使用熒光素酶檢測試劑盒(Promega),用熒光免疫分析儀(Perkin Elmer,型號:1420),按照廠家說明書進行操作。
1.3 統計學分析 所有的定量數據以均數±標準差(±SD)表示,使用SPSS 16.0統計軟件進行顯著性分析,P<0.05為差異顯著;并通過Excel 2007進行作圖分析。
2.1 牛著床前期胚胎中TEAD家族基因表達情況如圖2所示。

圖2 牛著床前胚胎中IFNT基因及TEAD家族基因的表達情況
本試驗中,取牛著床前胚胎(妊娠第20天),通過PCR方法檢測TEAD家族基因表達情況。由圖2可以看出,牛著床前胚胎中,TEAD家族各成員都有表達,但是TEAD2的表達量極少。
2.2 牛各器官中TEAD家族基因表達 本試驗中,取牛各器官組織,通過PCR方法檢測TEAD家族基因表達情況。表達結果如圖3所示。
由圖3可以看出,TEAD2在各器官表達量極少,甚至不在肝臟和皮膚組織中表達;其余TEAD家族各成員在各種器官(如心臟、肝臟、脾臟、腎臟、肌肉、皮膚、乳腺、胎盤)中都有表達,但是TEAD1的表達量相對較少。
2.3 牛胚胎及各器官中YAP1基因的表達 牛胚胎及各器官中YAP1基因表達情況如圖4所示。

圖3 牛各器官中TEAD家族各成員的表達情況
本試驗中,取牛著床前胚胎(妊娠第20天)及各器官組織,通過PCR方法檢測YAP19基因表達情況。由圖4可以看出,YAP1基因可表達于牛著床前胚胎及各器官中。
2.4 熒光素酶分析法檢測TEAD家族和YAP1對IFNT基因表達的調節
2.4.1TEAD1和YAP1對IFNT基因表達的調節如圖5所示。
將TEAD1和YAP1質粒與IFNT5′端切除報告基因共轉染入JEG3細胞中,用熒光素酶分析法分析TEAD1和YAP1對IFNT基因的表達調控及其可能的作用位點。
由試驗結果可以看出,在IFNT基因5′端上游區域逐漸切除的情況下,YAP1對IFNT基因的表達都有顯著的上調作用;TEAD1對IFNT基因表達的影響不顯著,但在將IFNT基因5′端上游區域切除到150bp時,TEAD1可使IFNT基因表達顯著升高;TEAD1和YAP1共同作用時,協同效果不顯著。

2.4.2IFNT基因點突變時TEAD1和YAP1對IFNT基因表達的調節。
在IFNT基因點突變的情況下,TEAD1和YAP1對IFNT基因表達的調節如圖6所示。
本試驗中,使用5′端上游區域為631bp的IFNT報告基因,同時,該報告基因進行了不同的點突變:AP1結合位點(-593bp)點突變;CDX2結合位點點突變(-300bp和-293bp);可能的TEAD結合位點點突變(-470bp)。
由試驗結果可以看出,在-631bp-IFNT報告基因中,YAP1對IFNT基因的表達都有顯著的上調作用,并且這種上調作用不受AP1、CDX2及可能的TEAD結合位點點突變的影響;當TEAD1和YAP1共同作用時,協同效果不顯著。

圖6 IFNT基因點突變時,TEAD1和YAP1對IFNTc1基因表達的調節
IFNT基因主要由反芻動物著床前胚胎滋養層細胞表達,目前已發現可結合于IFNT基因5′端啟動子區域,使IFNT表達上調的轉錄因子有ETS2[7],AP1[8],CDX2[6,9],GATA2/3[10],此外,有研究表明,在哺乳動物發育期間,大多數的胚胎和胚外組織至少表達一種TEAD蛋白[11]。TEAD家族蛋白與轉錄共激活因子YAP(Yes associated protein)結合,參與到Hippo信號通路中,調控細胞接觸性抑制,控制器官體積和癌癥發生[12]。
本研究探討了TEAD1和YAP1對牛IFNT基因的表達調控作用。研究發現,TEAD1對IFNT基因的表達影響不顯著;YAP1對IFNT基因表達具有顯著的上調作用,并且這種上調不受到IFNT基因5′端上游區域切除或已知轉錄因子結合位點點突變的影響,據此推測YAP1對IFNT基因的上調作用很可能不是通過其啟動子區域實現,而是間接實現的。具體研究機制還有待進一步的研究。
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