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NGFIB-β在大鼠大腦皮層神經(jīng)細(xì)胞分化中的表達(dá)研究

2013-10-09 09:58:22畢海濤喬曉溫史為博賈景娜王杰李英敏
河北醫(yī)藥 2013年2期
關(guān)鍵詞:小鼠

畢海濤 喬曉溫 史為博 賈景娜 王杰 李英敏

孤兒核受體神經(jīng)生長誘導(dǎo)基因B-β(nerve growth factor-induced gene B-β,NGFIB-β)是孤兒核受體家族中的一員[1],因缺乏與配體相互結(jié)合的能力又稱為非配體依賴性受體。NGFIB-β主要表達(dá)在中樞神經(jīng)系統(tǒng),與中腦的多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞的分化有密切關(guān)系[2]。敲除NGFIB-β基因的小鼠在生后24 h內(nèi)很快死亡,并有黑質(zhì)和腹側(cè)被蓋區(qū)多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞的缺失,表明NGFIB-β是中腦多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞分化、遷移、成熟及存活重要的調(diào)控因子[3]。Zetterstrom 等[4]通過原位雜交報道了成熟小鼠及胚胎NGFIB-βmRNA在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的表達(dá),但在中腦以外非典型多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞區(qū)域大腦皮層發(fā)育過程中NGFIB-β的蛋白表達(dá)狀態(tài)及與神經(jīng)細(xì)胞分化成熟的相關(guān)關(guān)系未見報道,本研究使用NGFIB-β小鼠單克隆抗體,采用免疫組化染色,觀察了大鼠大腦皮層發(fā)育過程中NGFIB-β蛋白表達(dá)的動態(tài)變化及與細(xì)胞分化成熟的相關(guān)關(guān)系。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 本實驗采用Wistar大鼠,由河北醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供,清潔級,動物合格證號:1003045,在河北醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心常規(guī)標(biāo)準(zhǔn)飼養(yǎng)。大鼠在乙醚吸入深麻醉狀態(tài)下,頸椎脫髓處死。成熟大鼠5只、孕12~19 d妊娠大鼠(每天5只)、生后1~15 d的幼鼠(選擇不同孕鼠出生后的個體每天5只),處死后立刻取出大腦皮層組織。

1.2 試劑 小鼠抗人抗大鼠NGFIB-β單克隆抗體購自英國abcam公司;免疫組化二步法試劑(LDP,labelled dextran polymer)購自北京中杉生物公司。

1.3 實驗方法 組織經(jīng)10%的中性甲醛溶液固定后,各級濃度的乙醇脫水,二甲苯透明,石蠟包埋。免疫組化采用LDP法,首先用L-Lysine處理玻片,連續(xù)石蠟切片(4μm),60℃烘干1 h,常規(guī)脫蠟、水化組織切片,微波抗原修復(fù)98℃,15 min(將切片置于0.01 mol/L pH值6.0的檸檬酸緩沖液中),自然冷卻至室溫;切片用蒸餾水洗3 min×1,PBS洗3 min×2;3%H2O2處理10 min以抑制內(nèi)源性過氧化物酶,PBS洗3 min×3;滴加NGFIB-β單克隆抗體(1∶150),濕盒內(nèi)4℃過夜;PBS洗3 min×3,滴加 LDP孵育 30 min,PBS洗 3 min×3;DAB顯色 5~10 min,水洗后,蘇木素復(fù)染、常規(guī)脫水、透明,中性樹膠封片。

2 結(jié)果

2.1 大鼠大腦皮層發(fā)育過程中NGFIB-β表達(dá)呈顯著動態(tài)變化首先在孕16 d觀察到正在發(fā)育中的大腦皮層有少量陽性表達(dá),陽性細(xì)胞主要位于大腦皮層的第Ⅴ、第Ⅵ層(圖1a);孕18有陽性細(xì)胞有增多趨勢(圖1b);生后1~5 d的表達(dá)達(dá)到高峰且Ⅱ~Ⅵ層均可見多量陽性細(xì)胞(圖1c,1d),生后7之后隨著細(xì)胞的成熟陽性細(xì)胞又逐漸減少,生后13陽性細(xì)胞明顯減少,主要集中在Ⅴ~Ⅵ層(圖1e);生后36(成熟)僅在Ⅴ~Ⅵ層見個別陽性細(xì)胞(圖1f)。

2.2 NGFIB-β的陽性結(jié)果判定 陽性細(xì)胞為棕黃色(細(xì)胞核內(nèi)表達(dá))。用普通光學(xué)顯微鏡在大腦皮層隨機(jī)選擇5個高倍(×400倍)視野,每個視野分別計數(shù)500個細(xì)胞,最后取平均值,0:(-)<10%:(±);>10%:(+);>25%:(++);>50%:(+++)(表1)。

圖1 大鼠大腦皮層發(fā)育過程中NGFIB-β的表達(dá)(免疫組化×400)

表1 NGFIB-β在大鼠大腦皮層發(fā)育過程中的表達(dá)

3 討論

神經(jīng)細(xì)胞不能進(jìn)行正常分化時,會導(dǎo)致神經(jīng)發(fā)育異常,引發(fā)多種疾病。原發(fā)性智障[5]、原發(fā)性癲癇[6]等疾病就是因為神經(jīng)細(xì)胞分化遷移異常而造成的。NGFIB-β是細(xì)胞內(nèi)核受體家族中的一員,Torii等[7]發(fā)現(xiàn),人類 NGFIB-β基因定位于2q22-23區(qū)帶上,長約8.3 kb,由8個外顯子和7個內(nèi)含子構(gòu)成。NGFIB-β廣泛表達(dá)于腦組織不同部位的神經(jīng)細(xì)胞中[8],敲除NG FIB-β基因的小鼠中腦多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞在E15.5出現(xiàn)了分化及分布的異常,出生后小鼠活動能力低下,生后24 h內(nèi)即告死亡,免疫組化技術(shù)表明小鼠黑質(zhì)和腹側(cè)被蓋區(qū)均無多巴胺能神經(jīng)元酪氨酸羥化酶和芳香族氨基酸脫羧酶基因表達(dá),也無多巴胺神經(jīng)遞質(zhì)產(chǎn)生,多巴胺能前體細(xì)胞不能遷移到其正常定居部位,難以與靶目標(biāo)建立有效的突觸連接,神經(jīng)細(xì)胞凋亡也明顯增加。

迄今為止的研究已證明NGFIB-β在中腦黑質(zhì)和腹側(cè)被蓋區(qū)多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞分化、遷移、成熟和生存等方面有重要作用[9,10]但中腦以外非典型多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞區(qū)域蛋白表達(dá)狀態(tài)及意義未見報道,大腦皮層屬于非典型多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞區(qū)域,本研究采用免疫組化觀察了大鼠發(fā)育過程中大腦皮層NGFIB-β蛋白表達(dá)的動態(tài)變化,實驗結(jié)果顯示在大鼠大腦皮層發(fā)育過程中NGFIB-β的表達(dá)呈現(xiàn)了一個較為短暫的顯著的動態(tài)變化,NGFIB-β首先在E 16 d大腦皮層的深部(第Ⅴ、Ⅵ層)出現(xiàn)少量表達(dá),之后隨著發(fā)育的進(jìn)行陽性表達(dá)明顯增多,生后1~5 d的表達(dá)達(dá)到高峰且Ⅱ~Ⅵ層均可見多量陽性細(xì)胞,P7之后隨著細(xì)胞的成熟陽性細(xì)胞又逐漸減少,P13時陽性表達(dá)主要集中在Ⅴ~Ⅵ層,成熟的大腦皮層僅在Ⅴ~Ⅵ層見個別陽性細(xì)胞,這種表達(dá)呈明顯的時間和空間特點,而且NGFIB-β陽性細(xì)胞顯示已分化的形態(tài),隨著細(xì)胞的分化成熟陽性表達(dá)明顯減少,而且大腦皮層組織屬于非典型多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞區(qū)域,可以肯定的說這些陽性細(xì)胞并不是多巴胺能神經(jīng)細(xì)胞,本研究提示NGFIB-β在中腦以外非典型多巴胺能區(qū)域的大腦皮層組織神經(jīng)細(xì)胞的分化遷移至成熟過程中擔(dān)當(dāng)角色。

1 Law SW,Conneely OM,DeMayo FJ,et al.Identification of a new brainspecific transcription factor,NURRl.Mol Endocrinol,1992,6:2129-2135.

2 Le WD,Xu P,Jankovic J,et al.Mutations in NR4A2 associated with familial Parkinson disease.Nat Genet,2003,33:85-89.

3 Wallen A,Zetterstrom RH,Solomin L,et al.Fate of mesencephalic AHD2-expressing dopamine progenitor cells in NURR1 mutant mice.Exp Cell Res,1999,2:737-746.

4 Zetterstrom RH,Williams R,Perlmann T,et al.Cellular expression of the immediate early transcription factors Nurr1 and NGFI-B suggests a gene regulatory role in several brain regions includeng the nigrostriatal dopamine system.Brain Res Mol Brain Res,1996,1:111-120.

5 Barth PG.Disorders of neuronal migration.J Neurol Sci,1987,14:1-16.

6 Gordon N.Epilepsy and disorders of neuronal migration.II:Epilepsy as a symptom of neuronal migration defects.Dev Med Child Neurol,1996,38:1131-1134.

7 Torii T,Kawarai T.Nakamura S,et al.Organization of the human orphan nuclear receptor Nurr1 gene.Gene,1999,230:225-232.

8 Perlmann T,Jansson L.A novel pathway for vitamin A signaling mediated by RXR heterodimerization with NGFI-Band Nurr.Genes Dev,1995,9:769-782.

9 Chung S,Sonntag KC,Andersson T.Genetic engineering of mouse embryonic stem cells by Nurr1 enhances differentiation and maturation into dopaminergic neurons.Eur J Neurosci,2002,16:1829-1838.

10 Haas SJ,Wree A.Dopaminergic differentiation of the Nurr1-expressing immortalized mesencephalic cell line CSM14.1 in vitro.Anatomy,2002,201:61-69.

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