β1-40致傷的神經干細胞的存活率及 Caspase-3的活性變化

田嘉瑩,盛寶英,齊志國

(佳木斯大學附屬第一醫院神經內科,黑龍江 佳木斯 154003)

阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)是中樞神經系統退行性疾病以老年人進行性癡呆加重為其主要特征,特點為逐漸出現腦認知功能障礙、記憶能力減退、行為異常、社交困難,神經心理癥及精神行為異常等的表現[1～2]。AD發病機制極其復雜,主要病理特征是老年斑和神經纖維纏結的沉積,伴腦皮質層神經元減少[3],老年斑的主要成分是β-淀粉樣多肽(A β),其聚集被認為是 AD致病的核心因素。本實驗以 A βl-40與神經干細胞共孵育,MT T法檢測神經干細胞的存活率、比色法檢測 Caspase-3的活性變化,探討 A βl-40對神經干細胞致傷的作用,進一步探討 AD的發病機制。

1 材料和方法

1.1 實驗動物、儀器及主要試劑

雄性 Wistar大鼠(＜24h),由佳木斯大學動物中心提供。實驗共分兩組,A β1-40處理組:在傳代培養的神經干細胞加入 A β1-405 μm,②對照組:不加 A β1-405 μm余同 A β1-40處理組。分別孵育0h,12h,24h和48h。酶標計數儀 ELX800(Bio-TEK公司 );二氧化碳培養箱 (美國 Nurare公司 );DMEM/F12(Gibco);四甲基偶氮唑藍 (M TT)、多聚賴氨酸(美國Sigma);A β1-40(Biosouxee公司 );Caspase分析試劑盒 (美國Promega公司);二氧化碳培養箱 (美國 Nurare公司);Nestin(北京博奧森生物技術有限公司)。

1.2 方法

1.2.1 大鼠海馬區神經干細胞的分離、傳代培養及鑒定[4～7]

取出新生 Wistar大鼠(＜24h),無菌操作下打開顱腔,分離鉗取海馬區組織,用 Hank,s液漂洗 3次 ,并且移至預先加入適量 DM EM/F12培養液的容器中,將海馬組織塊剪成1mm3左右的小塊,輕輕吹打制成單細胞懸液,調整細胞濃度,接種于培養基中,放入培養箱,隔 2～3d換半量培養液一次,每7天傳代一次。將培養 2-3代的神經球滴在涂布0.1%多聚賴氨酸的無菌蓋玻片上,37℃,5%CO2培養箱孵育2h后,用0.01MPBS洗滌,冷風吹干后,行 Nestin細胞免疫化學檢測鑒定神經干細胞。

1.2.2 MT T還原法檢測神經干細胞的存活率

兩組傳代培養的神經干細胞經不同處理后,培養不同的時間在37℃培養箱內,終止培養前4h每孔加入四甲基偶氮唑藍 (M TT)溶液 (5mg/mL)20μL至終濃度為 1mg/mL,置37℃培養箱繼續培養4h,采用翻板法將96孔板內的培養基棄去,終止培養,小心吸去孔內培養液。然后在每孔中加入溶解液二甲基亞砜 (DM SO)150μL,低速振蕩 10min使結晶產物充分溶解。在酶標儀上以波長570nm檢測每孔的 OD值。所檢測 OD值的大小可反映神經干細胞代謝活性的強弱。每組設3個孔,實驗重復3次 ,神經干細胞存活率的計算:細胞存活率=試驗組光吸收值 /對照組光吸收值×100%。

1.2.3 比色法檢測神經干細胞 Caspase-3的活性變化

將不同處理組細胞,用冰冷的 PBS在細胞表面洗兩次,然后用細胞刮收集到 EPPendoff管內,4℃下450×g離心10min后收集細胞,然后放于冰上。用冰冷的 PBS洗一次,然后將其懸浮在100uL細胞裂解緩沖液(試劑盒提供 )中。以凍融循環(液氮-常溫)的方式裂解細胞,然后在冰上孵育15min,4℃下 15,000× g離心 20min,然后收集上清液。用Bradford方法檢測蛋白的濃度。按試劑盒依次在96孔板內依次 加樣。加 2 μL DEVD-pN A底物 (10mm)到96孔板內。用parafilm封口膜將板子封嚴,37℃孵育4h。在405nm測量吸光度。計算 Caspase-3特異性活性。

1.3 統計學分析

采用 SPSS 17.0軟件,計量資料用均數±標準差 (±s)表示,采用 t檢驗,多組間均數比較通過方差齊性檢驗后用方差分析,各組間兩兩比較用 q檢驗,P ＜0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 A β1-40不同培養時間各組神經干細胞存活率的變化

應用 M TT法對神經干細胞存活率進行觀察,結果表明: A β1-40呈時間依賴性地降低神經干細胞的存活率。加入A β1-40后0h,12h,24h和48h,隨著時間的延長,神經干細胞存活率逐漸降低,(P ＜0.05)。見表1。

表1 不同培養時間各組神經干細胞存活率的變化(%,±s)

表1 不同培養時間各組神經干細胞存活率的變化(%,±s)

注:a不同時間 Aβ1-40處理組與對照組相比,P ＜ 0.05;b24hAβ1-40處理組與 12hAβ1-40處理組相比,P ＜ 0.05;c48hAβ1-40處理組與24hA β 1-40處理組相比 ,P ＜ 0.05。

組別 0h(%) 12h(%) 24h(%) 48h(%)A β1-40處理組 98.67± 3.77 89.7± 3.2 69.3± 2.7a,b 62.7± 7.3a,c對照組 99.85± 3.33 99.95± 4.26 99.05± 5.10 99.79± 5.26

2.2 A β1-40孵育不同時間后神經干細胞 Caspase-3的活性變化

A β1-40處理組分別孵育 0h,12h,24h和48h后,致傷的神經干細胞 Caspase-3活性逐漸增加,在 24h達到高峰(P＜0.05),而空白組孵育0h,12h,24h和48h后神經干細胞 Caspase-3特異性活性未發生明顯改變。A β1-40處理組與空白對照組相比較有顯著性 (P＜0.05)見表 2。

表2 A β1-40不同孵育時間各組神經干細胞 Caspase-3的活性變化 (pmol/h˙μg,±s)

表2 A β1-40不同孵育時間各組神經干細胞 Caspase-3的活性變化 (pmol/h˙μg,±s)

注:a不同時間 Aβ1-40處理組與對照組相比,P ＜ 0.05;b24hAβ1-40處理組與 12hAβ1-40處理組相比,P ＜ 0.05;c48hAβ1-40處理組與24hA β 1-40處理組相比 ,P ＜ 0.05。

組別 0h 12h 24h 48h A β1-40處理組 5.79± 0.48 8.34± 1.85a 12.46± 0.47a,b 9.73± 0.34a,c對照組 5.34± 0.42 5.45± 0.63 5.12± 0.58 5.68± 0.66

3 討論

阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)是神經系統退行性變性疾病之一。AD的病理特征為β-淀粉樣肽聚集成的淀粉樣斑塊、腦神經細胞內異常磷酸化的 tau蛋白異常沉積構成的神經纖維病變,并伴有腦皮層神經細胞減少的血管淀粉樣變性。淀粉樣蛋白聚集與 A β的前體蛋白過量表達或基因突變密切相關。APP具有β樣折疊構型,A β1-42約占10%左右,A β1-40約占 90%。本實驗研究證實,A β1-40使神經干細胞的存活率隨著時間的推移明顯的下降。A β1-40孵育的神經干細胞0h,12h,24h和48h后 ,與空白對照組比較 ,致傷后神經干細胞的 Caspase-3的活性是逐漸增加的,24h達到高峰,而48h后有所下降,但仍高于空白對照組。表明神經干細胞在接受 A β1-40毒性致傷后 ,Caspase-3的活性隨時間增加而遞增,但并不是始終保持高水平激活狀態,而是高峰后逐漸保持低水平,保持低活性狀態發揮其促凋亡作用。表明A β1-40對神經干細胞有致傷作用可能通過凋亡途徑導致細胞死亡的。由于 A β1-40對神經干細胞的毒性造成了神經干細胞不能及時補充 AD患者大腦缺失的神經元可能是 AD發病的原因之一[8]。提示研究 A β1-40致傷的神經干細胞死亡的機制可能為 AD的治療提供潛在的分子靶點。

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[5]徐忠燁,朱曉峰.新生大鼠海馬神經干細胞的分離培養及鑒定[J].黑龍江醫藥科學,2005,25(5):2-4

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