朱麗麗 于 健 蘇 珂 胡 璟 何永玲
(桂林醫學院附屬醫院內分泌科,廣西 桂林 541001)
胰島素抵抗(IR)是2型糖尿病(T2DM)的病理生理基礎,也是其發病的始動因素,貫穿于T2DM的發生、發展全過程,如何改善IR成為治療糖尿病的關鍵環節之一。目前發現脂肪組織是一個活躍的內分泌器官,通過分泌大量的脂肪細胞因子參與糖、脂代謝調節的過程,主要有抵抗素、白介素-6、腫瘤壞死因子-α、瘦素等,脂肪細胞因子與IR存在密切聯系〔1〕。視黃醇結合蛋白4(RBP4)作為一種近年被證實的與肥胖誘導的IR相關的脂肪細胞因子,在T2DM發病機制尤其是IR中受到廣泛關注〔2〕。本研究擬通過觀察血清RBP4在T2DM大鼠IR的水平,進一步探討血清RBP4與IR及脂代謝的關系及相關性。
1.1 實驗動物 SPF級健康雄性SD大鼠30只,10周齡,體重200~220 g,由桂林醫學院實驗動物中心提供,實驗動物許可證號為:SCXK(桂)2007-0001,在桂林醫學院SPF級實驗動物中心飼養,每籠4~5只,室溫控制在(22±2)℃,相對濕度控制在40% ~60%,明暗周期為12 h(8 am~8 pm),均自由取食飲水。
1.2 實驗試劑及設備 注射用鏈脲佐菌素由美國Sigma公司提供;血清RBP4(大鼠)檢測試劑盒由上海藍基公司提供;胰島素(大鼠)試劑盒購自美國Beckman Coulter Inc公司;3-15型臺式低速離心機由德國Sigma公司提供;7600型全自動生化分析儀由瑞士羅氏公司提供;血糖檢測由瑞士羅氏公司卓越型快速血糖儀及血糖試紙提供。
1.3 飼料 普通飼料由桂林醫學院實驗動物中心提供;蛋黃粉、豬油、白糖均自備;高脂飼料配方:普通飼料60%、豬油17%、白糖20%、蛋黃粉3%,上述成分均勻混合,重新壓制成形。
1.4 方法
1.4.1 動物模型建立與分組 以高脂高糖飼料喂養加小劑量鏈脲佐菌素(STZ)左下腹腔注射(ip)的方法建立T2DM大鼠IR模型。將30只SD大鼠適應性飼養1 w后,隨機分為正常對照組15只、模型組15只。正常對照組給予普通飼料喂養,模型組給予高糖高脂飼料喂養,連續8 w。每日添食、換水一次,觀察大鼠的皮毛、色澤、精神狀態、食欲、尿量等一般情況,每周固定時間測量大鼠血糖、體重。8 w末,所有大鼠隔夜禁食12 h,自由飲水,正常對照組給予1次性ip 0.1 mol/L檸檬酸緩沖液30 mg/kg,模型組給予1次性 ip 1%STZ溶液30 mg/kg(STZ溶于0.1 mol/L檸檬酸檸檬酸鈉緩沖液中,pH 4.2)。正常對照組繼續普通飲食,模型組繼續高糖高脂飲食72 h后檢測隨機血糖,以連續2次隨機血糖≥16.7 mmol/L作為T2DM大鼠模型成功判定標準〔3〕,模型組共有12只大鼠造模成功,兩組大鼠飲食同前,繼續喂養4 w。
1.4.2 指標檢測
1.4.2.1 一般情況 觀察毛色、神態、精神、體重等,記錄動物死亡情況。
1.4.2.2 生化指標測定 12 w末,實驗結束時,所有大鼠禁食12 h,于次日8時斷尾采血,羅氏血糖儀檢測空腹血糖(FBG),再予10%水合氯醛(3 ml/kg)腹腔麻醉,腹主動脈采血8 ml,3 000 r/min離心 10 min,收集血清,從中取 1.5 ml血清置-20℃冰箱保存,以備RBP4的檢測。采用全自動生物化學分析儀測定血漿總膽固醇(TC)、甘油三酯(TG)和低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)的含量,采用自動化學發光免疫分析儀測定空腹胰島素(FINS)。胰島素抵抗采用穩態模式評估法:胰島素敏感指數(ISI)和胰島素抵抗指數(HOMA-IR),公式:ISI=Ln〔1/(FBG×FINS)〕,HOMA-IR=FINS×FBG/22.5。
1.4.2.3 RBP4的測定 血清RBP4用酶聯免疫吸附法測定:取出酶標板,每孔各加入標準品或待測樣品100μl,再在各孔中加入50μl酶結合物溶液,混勻,將酶標板用封口膠密封后,37℃孵育1 h,充分洗滌酶標板5次,用吸水紙徹底拍干,各孔中加入顯色劑100μl,25℃避光反應15 min,最后各孔加入終止液50μl,終止反應,30 min內在波長450 nm的酶標儀上讀取各孔的吸光度(A值)處吸光值,用標準物的濃度與A值計算出標準曲線的直線回歸方程式,將樣品的A值代入方程式,計算出各樣品RPP4的濃度。
1.5 統計學分析 用SPSS19.0軟件進行分析,正態分布數據采用x±s表示,同一時間點兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,同一組內不同時間點的比較采用重復測量方差分析,血清RBP4水平與各變量間的關系采用Pearson分析和多元逐步回歸分析。
2.1 兩組大鼠一般情況的比較 實驗開始后的8 w內兩組大鼠攝食量基本持平,大鼠的活躍程度和毛色光亮無明顯變化,8 w后,模型組大鼠較正常對照組大鼠逐漸出現精神萎靡、毛發粗糙發黃無光澤、多飲、多食、多尿、消瘦等表現。實驗期間正常對照組大鼠死亡1只,模型組大鼠3只造模不成功。
2.2 兩組大鼠體重的比較 同一時間點與正常對照組相比,除實驗開始時,前8 w的模型組大鼠體重均顯著增加,差異有統計學意義(P<0.01);造模后模型組大鼠體重較正常對照組顯著降低,差異有統計學意義(P<0.01)。正常對照組大鼠在實驗期間體重一直呈顯著的增長趨勢,模型組大鼠在前8 w體重亦呈明顯的增長趨勢,在8 w后體重較前顯著下降的趨勢,兩組大鼠喂養不同時間點體重差異有統計學意義(F=819.836,P=0.000),飼料干預和體重之間存在交互效應(F=78.727,P=0.000)。見表 1。
2.3 兩組大鼠實驗指標的比較 建模開始時兩組大鼠斷尾測FBG,正常對照組為(4.92±0.60)mmol/L,模型組為(5.19±0.86)mmol/L,兩組大鼠建模初空腹血糖比較無統計學意義(P >0.05)。實驗結束時,模型組大鼠 FBG、FINS、TG、TC、LDLC、HOMA-IR水平及RBP4水平均明顯高于正常對照組大鼠,ISI低于正常對照組大鼠(P<0.05,P<0.01)。見表2。

表2 兩組大鼠RBP4水平及實驗指標比較(x±s)
2.4 血清RBP4與其他指標的相關性 簡單相關分析顯示,模型組大鼠血清RBP4與FINS(r=0.453,P<0.05)、FBG(r=0.816,P < 0.01)、TG(r=0.733,P <0.01)、TC(r=0.699,P <0.01)、LDL-C(r=0.747,P < 0.01)、HOMA-IR(r=0.817,P <0.01)正相關,與ISI(r=-0.770,P<0.01)負相關。進一步以血清 RBP4 為因變量,以 FINS、FBG、TG、TC、LDL-C、HOMA-IR和ISI為自變量進行多元逐步回歸分析,結果顯示,HOMA-IR是血清RBP4獨立影響因素(r2=0.668,β=0.237,P<0.01)。
IR指胰島素作用的靶器官(主要是肝臟、肌肉和脂肪組織)對胰島素作用的敏感性降低,從而導致機體產生一系列病理變化,進而演變為T2DM。本研究首先為準確建立2型糖尿病胰島素抵抗大鼠模型,采用國內外公認的T2DM建模方法〔4〕。有研究表明長期高糖飲食,加重胰島分泌胰島素的代謝負荷,對于糖尿病前期或糖尿病人群均有不利的影響〔5〕。另外,未經過提煉的動物油脂可降低胰島素敏感性,誘發IR。本研究在基礎飼料的基礎上加用白糖、豬油和蛋黃粉持續喂養8 w后,模型組大鼠出現了肥胖、胰島素抵抗的特點,在此基礎上再予腹腔注射小劑量STZ后,大鼠的血糖急劇升高,提示大鼠胰島功能受到高糖高脂誘導的IR和STZ的破壞后,胰島功能受到損傷。實驗結束時,模型組大鼠出現明顯的精神萎靡、毛發粗糙、多飲、多尿、消瘦等表現,且FBG、HOMA-IR水平均明顯高于正常對照組,ISI明顯低于正常對照組,表明T2DM大鼠IR模型建立成功。
由GLUT4介導的葡萄糖跨膜轉運是脂肪和肌肉等組織利用葡萄糖的限速步驟。Yang等〔6〕學者發現,敲除了小鼠體內的Glut4基因后,在小鼠的肌肉和肝臟部位出現對胰島素的抵抗性。利用 DNA芯片技術發現,adipose-Glut4-/-型小鼠血清RBP4水平明顯升高,提示RBP4可能參與IR的發生。本研究發現,糖尿病組大鼠血清RBP4水平顯著高于正常對照組,相關分析顯示RBP4與FBG、FINS及HOMA-IR呈正相關,與ISI成負相關;多元逐步回歸分析顯示,HOMA-IR為RBP4的獨立影響因素,進一步證實了RBP4與IR的密切相關性。RBP4致IR的機制可能為:①Yang等〔6〕發現RBP4抑制肌肉組織磷脂酰肌醇3激酶的活性,抑制胰島素受體底物-1的磷酸化,使肌肉組織攝取葡萄糖減少;②RBP4誘導肝細胞表達磷酸烯醇式丙酮酸激酶不僅促進基礎狀態糖異生,同時又可降低胰島素抑制肝糖輸出的作用,從兩方面共同作用導致組織表現為IR;③此外,張黎軍等〔7〕研究發現 RBP4可能通過增強機體氧化應激參與IR。
脂質代謝紊亂為糖尿病、非酒精性脂肪肝、心血管病變等IR相關疾病發生發展的前期因素。新近研究發現RBP-4不僅參與糖代謝調節,而且與脂質代謝密切相關,尤其TG〔8〕。張博等〔9〕研究發現血清RBP4可能通過增強血管內膜氧化應激并影響血脂代謝。本研究提示RBP4可能參與了T2DM患者的脂代謝紊亂,并參與了IR相關疾病的發生發展。綜上所述,本研究成功制作T2DM大鼠IR動物模型,模型組大鼠血清RBP4水平顯著升高,相關分析顯示 RBP4與HOMA-IR正相關,且HOMAIR為RBP4的獨立影響因素,這為RBP4與IR之間存在密切關系提供新的支持。RBP4可能通過多種途徑直接或間接參與IR的發生發展,進而增加糖尿病的發病風險,這為我們治療IR相關疾病提供一個新思路,即可以通過對RBP4進行早期干預,從而阻止或延緩糖尿病、肥胖癥、非酒精性脂肪肝、代謝綜合征、心血管疾病等IR相關疾病的發生和發展。
1 Rabe K,Lehrke M,Parhofer KG,et al.Adipokines and insulin resistance〔J〕.Mol Med,2008;14(11-12):741-51.
2 Galic S,Oakhill JS,Steinberg GR.Adipose tissue as an endocrine organ〔J〕.Mol Cell Endocrinol,2010;316(2):129-39.
3 王保偉,李 穎,劉曉紅,等.高脂飼料喂養時間及鏈脲佐菌素劑量對實驗型2型糖尿病大鼠造模的影響〔J〕.衛生研究,2011;40(1):99-102.
4 Reed MJ,Meszaros K,Entes LJ,et al.A new rat model of type2 diabetes:the fat-fed,streptozotocin-treated rat〔J〕.Metabolism,2000;49(11):1390-4.
5 Schulze MB,Schulz M,Heidemann C,et al.Carbohydrate intake and incidence of type 2 diabetes in the European Prospective Investigation into Cancer and Nutrition(EPIC)-Potsdam Study〔J〕.Br J Nutr,2008;99(5):1107-16.
6 Yang Q,Graham TE,Mody N,et al.Serum retinol binding protein 4 contributes to insulin resistance in obesity and type 2 diabetes〔J〕.Nature,2005;436(7049):356-62.
7 張黎軍,黃從新,郝亞榮,等.胰島素抵抗大鼠視黃醇結合蛋白4骨骼肌磷脂酰肌醇3激酶的表達及吡格列酮的干預作用〔J〕.中華老年醫學雜志,2011;30(9):774-8.
9 Hermsdorff HH,Zulet MA,Puchau B,et al.Association of retinol-binding protein-4 with dietary selenium intake and other lifestyle features in young healthy women〔J〕.Nutrition,2009;25(4):392-9.
10 張 博,張黎軍.視黃醇結合蛋白4在糖尿病動脈粥樣硬化大鼠血清中的表達及意義〔J〕.中國老年學雜志,2010;30(4):515-7.