PCR二次擴增法監測乳腺癌微轉移的價值探討

胡清林* 何澤友 徐成飛 鄢傳經 嚴 海

（成都醫學院第一附屬醫院普通外科一區，四川 成都 610500）

PCR二次擴增法監測乳腺癌微轉移的價值探討

胡清林* 何澤友 徐成飛 鄢傳經 嚴 海

（成都醫學院第一附屬醫院普通外科一區，四川 成都 610500）

目的 探索 PCR 二次擴增法對乳腺癌細胞外周血微轉移診斷的應用價值。方法 分離受檢者外周血單個核細胞，TRIZOL 液提取總RNA，作 RT-PCR；確認的 cDNA 先作普通 PCR 擴增，再作熒光定量 PCR 擴增。結果 42 例標本有 41 例確認轉錄為 cDNA，其中乳腺癌 21 例、良性乳腺腫瘤和正常對照各 10 例。經普通 PCR 后再作熒光定量 PCR，乳腺癌 HMAM 表達陽性率為 59%、良性乳腺腫瘤和正常對照均無陽性，乳腺癌組與良性乳腺腫瘤或正常對照組間 hMAM 表達有顯著差異。結論 二次 PCR 的靈敏度可成功檢出外周血 hMAM 的表達，而單次 PCR 法的靈敏度不夠；外周血 hMAM 表達指標可用于監測乳腺癌細胞微轉移。

乳腺癌；人乳房珠蛋白；RT-PCR；外周血

乳腺癌發病率呈逐年上升趨勢，盡管在早期診斷和綜合治療方面取得了長足發展，但肉眼不可見的腫瘤轉移仍嚴重影響患者的預后。人乳房珠蛋白（human mammaglobin，hMAM）作為與乳腺癌密切相關的蛋白質，在最近才被研究機構發現[1]，若是表達出外周血hMAM陽性，乳腺癌細胞的微轉移即高度提示，故此指標特異性價值較高。在臨床上，通過外周血對乳腺癌細胞微轉移和復發情況進行監測和復發較難，且能實現該監測的方法屈指可數。而外周血微轉移癌細胞其表達可以RT-PCR技術實現靈敏檢測[2]。本次研究其實驗材料為外周血，擇取特異的hMAM表達作為定位指標，檢測對象為乳腺癌患者，以期探索一條監控乳腺癌細胞外周血微轉移的優良臨床途徑。

1 材料與方法

1.1 臨床資料

本次研究納入病例樣本共計42人。其中22人為女性乳腺癌患者，年齡在28～65歲間，平均50.8歲。10人為女性良性乳腺腫瘤患者，年齡在19～63歲間，平均47.2歲。10人為健康女性，年齡在24～63歲間，平均48.9歲。按照病理診斷結果為患者分類。

1.2 試劑儀器

采用上海華美公司生產的的淋巴細胞分離液、TRIZOL總RNA提取液、RT—PCR及PCR反應試劑。采用上海生工生物技術公司生產的DNA marker。委托上海申友生物技術公司合成引物和熒光探針。PTC一200擴增儀系美國產、熒光定量PCR擴增儀系德國產、凝膠成像分析系統系美國GIBCO公司產。綜上設備進行本次實驗。

1.3 標本配置

在手術前后1日內采集5mL本次所有腫瘤樣本患者的外周血，并打入內置EDTA抗凝的一次性管中行hMAM檢測。

1.4 總RNA提取

單個核細胞的提取以淋巴細胞分離液實現，而后將核細胞置入Eppendorf管（無RNase）中，以-80℃環境貯存。若需開始檢測，應預先取出并化凍。提取總RNA需向管內加TRIZOL液（詳細步驟以使用說明書為參考）。

1.5 陽性模板獲取

116bp片段的DNA片段系本引物的擴增產物，將這些片段稀釋成不同濃度梯度，用作陽性模板。

1.6 RT-PCR驗證

RT—PCR Kit的β-actin引物（5’-GCTCGTCGTCGACAACGGCT一3’、5’一CAAACATGATCT—GGGTCATCITCTC-3’）和反應體系擴增β-actin，以確驗是否已成功提取總RNA并測定RT-PCR效率。cDNA 5μL含于25μL的總反應體系內，并以普通PCR擴增儀進行擴增處置，擴增條件：94℃ 2min預變性，94℃ 15S、55℃ 30S共40循環，72℃ 1min延伸。在2%的瓊脂糖膠中，行擴增產物電泳，明亮條帶現于353 bp處判定陽性。

1.7 以實時熒光定量PCR直接檢測RT-PCR產物

cDNA產物10μL、Taq酶1μL、PCR buffer 14μL（含一對引物和熒光探針）、合計25μL。以上物質行熒光定量擴增，擴增條件：94℃ 2min預變性，94℃ 5S、60℃ 30S共40循環，37℃ 5 min延伸。行陽、陰性比照對應陽性模板和無菌水。軟件自動分析反應后數據，擴增陽性系Ct＜37。

1.8 RT-PCR先行擴增復以實時熒光定量PCR檢測

首輪擴增在引物變更為hMAM引物、擴增循環數為25循環的前提下，余參照1.6。次輪熒光擴增處置參照1.7。以首輪產物2μL為模板，無菌水補足總體積至25μL。陰、陽性比照同前。軟件自動分析反應后數據，擴增陽性系Ct＜37。1.9 以SPSS 13.0軟件行統計學處理。

2 結 果

2.1 驗證RT-PCR結果

以1.6實驗處置流程、分子量標準參照DNA marker，若明亮條帶現于353 bp處判定陽性則判定RT-PCR成功。在共計實驗樣本42例中，1例呈β-actin陰性，陰性提示RNA已被降解，余為陽性、提示目的cDNA已獲取。

2.2 實時熒光定量PCR檢測RT-PCR產物結果

參照實驗流程1.7，進行陰性和陽性對照均符合，其中2例樣本其Ct值起跳于大于37處，但不存在Ct＜37樣本。

2.3 RT-PCR先行擴增復以實時熒光定量PCR檢測結果參照實驗流程1.8，結果見表1。

表1 42例標本hMAM 基因外周血表達的檢測結果

3 討 論

腫瘤復發在癌細胞外周血微轉移上有高概率預示。目前在臨床上極少有能測出癌細胞外周血微轉移的可行性有效方法，故實現外周血乳腺癌微轉移的監測異常艱難。熒光定量PCR系統其熒光探針具高度特異性，只結合被擴增的特異性目的片段并同時發出熒光信號，故其靈敏度及特異性價值極高。資料顯示[3]，臨床多只以常規定性巢式或熒光定量巢式行hMAM cDNA擴增。本次研究的對照方案按照臨床主流方案效仿，僅陽性對照呈陽性。雖有2例Ct值＞37時的起跳樣本，但皆不呈陽性。若是RT-PCR先行擴增、再以實時熒光定量PCR檢測，其hMAM表達在21名乳腺癌患者中，檢出59%的陽性率。這清楚地揭示了微轉移乳腺癌細胞在外周血中呈極微量，PCR技術縱然具有高靈敏度，hMAM表達的檢出仍需行二次擴增。

本次研究結果顯示，hMAM表達在乳腺癌組呈59%的陽性率，該結果與良性腫瘤組、健康對照組間差異明顯，這說明了RT-PCR在檢出外周血中乳腺癌細胞微轉移的可行性，也說明hMAM表達指標具特異性。這59%的陽性率，與其他文獻相比稍高[3]，這可能因為：①本組外周血樣本采集較早，而未經臨床處置時患者其血液內所含癌細胞數量較高，采集量自然偏高；②本次研究為普通PCR擴增與實時熒光定量PCR擴增的聯合應用，故提升了綜合檢測的靈敏度，常規檢測中本應遺漏的陽性靶向物在本方案中被成功捕捉；③mRNA若受到污染極易降解，本次研究中1例β-actin檢測陰性，有很大概率系RNA在提取過程中被降解，其余樣本均為β-actin擴增陽性，其cDNA被逆轉錄得到了確認。為此，部分結果未納入RT-PCR監控報道結果，而低陽性率有很大概率是因為RNA在前處理時被降解。

綜上所述，hMAM表達檢測采用二次PCR擴增來提高靈敏度，對乳腺癌細胞的微轉移檢測效果確切，值得在臨床上應用和推廣。

[1]Watson MA,Fleming Tp. Mammaglobin a mammary- specific member of the uterglobin gene family is over expressed in human breast cancer[J].Cancer Res,1996,56(4):860-865.

[2]劉寧,張偉,郝希山,等.熒 光定 量聚合酶 鏈 反 應 檢測乳腺 癌外周血微小轉移[J].中華普通外科雜志,2002,17(1):38.

[3]韓正祥,張敬川.hMAM mRNA和CEA mRNA RT-PCR檢測乳腺癌外周血微轉移[J].腫瘤,2004,24(3):273.

R737.9

：B

：1671-8194（2013）10-0082-02

四川省衛生廳面上項目（090119）

*通訊作者：E-mail： lyhqlin@163.com