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水貂阿留申病毒VP2蛋白單克隆抗體的制備

2013-04-29 00:44:03姜亦飛于可響林樹(shù)乾等
山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年9期

姜亦飛 于可響 林樹(shù)乾等

摘 要:本研究利用PCR方法從水貂阿留申病毒相關(guān)病料中擴(kuò)增出VP2蛋白部分基因,并進(jìn)行原核表達(dá),成功獲得VP2重組蛋白;利用純化的VP2重組蛋白免疫BALB/c小鼠,取其脾細(xì)胞與骨髓瘤細(xì)胞融合,成功獲得3株雜交瘤細(xì)胞:1F4F7D9、3E9G3D4和4B8B3F8;分別接種小鼠,間接ELISA檢測(cè)結(jié)果表明,3組實(shí)驗(yàn)小鼠腹水的單克隆抗體效價(jià)均在106以上。

關(guān)鍵詞:水貂阿留申病毒;VP2重組蛋白;單克隆抗體

水貂阿留申病(Aleutian mink disease, AD)是一種由阿留申病毒(Aleutian mink disease parvovirus, ADV)引起的水貂自身免疫系統(tǒng)紊亂性疾病,目前在全國(guó)范圍內(nèi)廣泛流行,是當(dāng)今阻礙養(yǎng)貂業(yè)發(fā)展的主要傳染病,其主要臨床表現(xiàn)為母貂流產(chǎn)、新生子貂急性肺炎、成年水貂慢性免疫復(fù)合物介導(dǎo)的腎小球腎炎等[1]。病毒粒子中的蛋白分為結(jié)構(gòu)和非結(jié)構(gòu)蛋白兩類(lèi),其中VP2是ADV的主要免疫原性抗原,是抗原決定簇的載體,與致病性密切相關(guān),是目前研究最多的蛋白,VP2基因也已成為研究ADV毒力、致病性、抗原性和建立檢測(cè)方法的首選基因[2~5]。本研究利用重組表達(dá)的水貂阿留申病毒VP2蛋白制備出單克隆抗體,為阿留申病毒的鑒定、檢測(cè)等研究奠定了基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

水貂阿留申病毒相關(guān)病料、陽(yáng)性血清由青島農(nóng)業(yè)大學(xué)特種經(jīng)濟(jì)動(dòng)物教研室提供;骨髓瘤細(xì)胞Ag8.653、BALB/c小鼠由北京青元盛康生物醫(yī)藥科技有限公司提供。

病毒DNA提取試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;膠回收試劑盒、IPTG、Ex Taq酶、限制性?xún)?nèi)切酶、T4 DNA連接酶、DNA Marker、蛋白質(zhì)預(yù)染Marker及非預(yù)染Marker購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司;兔抗水貂IgG(HRP標(biāo)記)購(gòu)自美國(guó)Sigma-ldrich公司;DAB (3,3二氨基聯(lián)苯胺)顯色試劑盒購(gòu)自武漢博士德生物工程有限公司;其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 引物設(shè)計(jì)

根據(jù)GenBank收錄的ADV全長(zhǎng)序列(JN040434.1),選取VP2基因901~1 560 nt區(qū)域設(shè)計(jì)并合成引物。上游引物5′端引入BamHⅠ酶切位點(diǎn),下游引物5′端引入XhoⅠ酶切位點(diǎn)。引物序列為:

1.3 VP2基因擴(kuò)增

按照病毒DNA提取試劑盒說(shuō)明提取病毒DNA,加入滅菌去離子水溶解。PCR反應(yīng)體系:DNA模板2 μl,10×PCR buffer 5 μl,25 mmol/L MgCl2 2 μl,2.5 mmol/L dNTP 2 μl,20 μmol/L 上下游引物各1 μl,Ex Taq 0.5 μl,加滅菌去離子水至50 μl。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性 3 min;94℃變性20 s,55℃退火20 s,72℃延伸40 s,30個(gè)循環(huán); 72℃延伸10 min。取5 μl反應(yīng)產(chǎn)物1%瓊脂糖凝膠電泳檢驗(yàn)。

1.4 表達(dá)載體的構(gòu)建

將擴(kuò)增出的VP2基因片段回收并克隆至pMD18-T載體中,用BamHⅠ和XhoⅠ進(jìn)行雙酶切,鑒定為陽(yáng)性的克隆質(zhì)粒命名為pMD18-VP2。用BamHⅠ和XhoⅠ分別雙酶切重組克隆質(zhì)粒pMD18-VP2和pET-28a(+)載體,回收目的片段,16℃連接過(guò)夜,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,提取質(zhì)粒,用BamHⅠ和XhoⅠ進(jìn)行雙酶切,鑒定為陽(yáng)性的質(zhì)粒命名為pET28a-VP2。將陽(yáng)性質(zhì)粒pET28a-VP2轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細(xì)胞,提取質(zhì)粒,BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切鑒定為陽(yáng)性的質(zhì)粒送上海博尚生物工程有限公司測(cè)序。

1.5 重組表達(dá)質(zhì)粒誘導(dǎo)表達(dá)、純化及Western blotting分析

挑取陽(yáng)性菌于37℃培養(yǎng)待OD600值達(dá)到0.4~0.6時(shí),加入IPTG至終濃度為1 mmol/L,37℃繼續(xù)培養(yǎng)5 h。取誘導(dǎo)的菌體,用1×PBS緩沖液懸浮,利用超聲波破碎菌體,離心,分別取上清和沉淀進(jìn)行SDS-PAGE電泳,確定目的蛋白表達(dá)情況。設(shè)置pET-28a(+)空載體轉(zhuǎn)化株作為對(duì)照。

取100 ml經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達(dá)的VP2蛋白菌液,按照Ni-NTA SefinoseTM Resin Kit說(shuō)明書(shū)進(jìn)行純化,然后根據(jù)Sambrook等[6]方法進(jìn)行Western blotting分析,最后加入DAB底物液顯色并拍照。

1.6 單克隆抗體的制備

1.6.1 重組VP2蛋白的準(zhǔn)備 誘導(dǎo)表達(dá)的VP2蛋白經(jīng)Ni柱純化后,定量,備用。

1.6.2 免疫小鼠 取健康8周齡BALB/c小鼠5只,足掌注射VP2蛋白免疫,共五次,劑量均為100 μg,首免與等體積弗氏完全佐劑乳化,二免與等體積弗氏不完全佐劑乳化,三、四、五次免疫不用佐劑。首免與二免間隔20 d,二免與三免間隔10 d,第三、四、五次免疫間隔3~7 d不等。五次免疫3 d后尾靜脈采血,利用以表達(dá)的VP2蛋白作為包被抗原建立的ELISA方法測(cè)定靜脈血中的抗體效價(jià),選效價(jià)高的小鼠進(jìn)行細(xì)胞融合試驗(yàn)。

1.6.3 雜交瘤細(xì)胞株的建立 分離免疫小鼠的脾臟并勻漿制備免疫脾細(xì)胞,按常規(guī)方法將免疫脾細(xì)胞與骨髓瘤細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞融合;融合后7~10 d補(bǔ)加1%的HT培養(yǎng)液,用倒置顯微鏡觀測(cè)細(xì)胞生長(zhǎng)情況及有無(wú)雜交瘤形成,并作記錄;待集落長(zhǎng)到培養(yǎng)孔的1/4~1/3時(shí)進(jìn)行抗體檢測(cè),檢測(cè)到陽(yáng)性孔(即能在其上清液中檢測(cè)到特異性抗體)時(shí),作克隆化培養(yǎng);當(dāng)陽(yáng)性孔中的細(xì)胞集落很大時(shí),吸出,移入已加有飼養(yǎng)細(xì)胞的24孔細(xì)胞培養(yǎng)板中繼續(xù)培養(yǎng)(陽(yáng)性克隆的篩選采用以表達(dá)的VP2蛋白作為包被抗原建立的ELISA方法;陽(yáng)性孔的克隆化培養(yǎng)采用有限稀釋法)。

1.6.4 小鼠腹水型單克隆抗體的生產(chǎn) 選取8~10周齡健康純系雌性BALB/c小鼠12只,設(shè)3個(gè)雜交瘤細(xì)胞組和1個(gè)對(duì)照組,每組3只,于接種細(xì)胞前10 d注射無(wú)菌液體石蠟,每只0.5 ml;將雜交瘤細(xì)胞從培養(yǎng)瓶上吹下,培養(yǎng)物移入50 ml離心管中,室溫800×g離心5 min,棄上清;用40 ml無(wú)菌PBS重懸細(xì)胞,離心,棄上清;重懸細(xì)胞于5 ml無(wú)菌PBS,進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),并用臺(tái)盼藍(lán)拒染試驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞活力是否接近100%;加入無(wú)菌PBS調(diào)整細(xì)胞濃度為5×106個(gè)/ml,向小鼠腹腔內(nèi)注射0.5 ml細(xì)胞懸液,5 d后開(kāi)始采集腹水;腹水于室溫下1 500×g離心10 min,收集上清轉(zhuǎn)移至高速離心管,4℃下15 000×g離心10 min,收集上清,標(biāo)記好單抗名稱(chēng)和采集日期,-80℃保存。

腹水效價(jià)的測(cè)定:腹水從1∶200開(kāi)始倍比稀釋?zhuān)靡员磉_(dá)的VP2蛋白作為包被抗原建立的ELISA方法測(cè)定抗體效價(jià)。

2 結(jié)果與分析

2.1 VP2基因擴(kuò)增

提取水貂阿留申病毒DNA,以此為模板進(jìn)行PCR,PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),獲得一條大小為660 bp左右的片段(圖1),與預(yù)期大小相符。

2.4 重組菌的誘導(dǎo)表達(dá)及Western blotting分析

重組菌經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后,獲得高效表達(dá),在沉淀中出現(xiàn)30.2 ku左右的目的蛋白條帶(圖4),大小與預(yù)期結(jié)果相符。純化蛋白經(jīng)Western blotting分析(圖5),與水貂阿留申病毒陽(yáng)性血清呈特異性反應(yīng),證明表達(dá)產(chǎn)物具有良好的抗原性。

2.5 單克隆抗體的制備

細(xì)胞融合后,通過(guò)ELISA方法篩選到3株能穩(wěn)定傳代并分泌抗阿留申病毒VP2蛋白單克隆抗體的雜交瘤細(xì)胞,分別為1F4F7D9、3E9G3D4、4B8B3F8。將這3株雜交瘤細(xì)胞分別注入小鼠腹腔制備腹水,經(jīng)ELISA檢測(cè),3組實(shí)驗(yàn)小鼠腹水的單克隆抗體間接ELISA效價(jià)均在106以上。

3 討論

由于ADV分離十分困難,筆者嘗試過(guò)多次病毒分離,但一直未能分離到病毒。因此,采用直接從ADV陽(yáng)性病料擴(kuò)增VP2基因的方法,成功擴(kuò)增出VP2部分基因,并將其克隆至表達(dá)載體pET-28a(+)中進(jìn)行表達(dá),成功獲得重組VP2蛋白,經(jīng)Western-blotting證明該重組蛋白具有良好的反應(yīng)原性。

目前,阿留申病毒病作為危害世界養(yǎng)貂業(yè)的三大病毒性傳染病之一,在我國(guó)許多地區(qū)都有不同程度的流行,給我國(guó)的養(yǎng)貂業(yè)帶來(lái)了很大的損失[7],因此建立敏感、特異、低成本、高通量的血清學(xué)檢測(cè)方法,用來(lái)篩選淘汰發(fā)病水貂,建立非感染貂群顯得尤為重要。對(duì)流免疫電泳(CIEP)是世界公認(rèn)的、應(yīng)用最廣泛的AD檢測(cè)方法,但CIEP中的抗原多是臟器抗原、細(xì)胞抗原等病毒抗原,病毒的濃縮和純化成本較高,且存在散毒的風(fēng)險(xiǎn),在應(yīng)用中有一定的局限性[8]。本研究利用純化的VP2重組蛋白免疫BALB/c小鼠,篩選到3株雜交瘤細(xì)胞,并獲得3組單克隆抗體ELISA效價(jià)均在106以上的實(shí)驗(yàn)小鼠的腹水,為以單克隆抗體為基礎(chǔ)建立高效的ELISA檢測(cè)阿留申病毒的方法奠定了基礎(chǔ)。

參 考 文 獻(xiàn):

[1] 鄭 全, 王樹(shù)志, 王全凱. 水貂阿留申病研究進(jìn)展[J]. 經(jīng)濟(jì)動(dòng)物學(xué)報(bào), 2002, 6(4):49-52.

[2] 梁冬瑩, 華育平, 曾祥偉. 水貂阿留申病毒VP2基因主要抗原表位區(qū)的原核表達(dá)[J]. 東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2007, 35(6):39-41.

[3] McKenna R, Olson N H, Chipman P R, et al. Three-dimensional structure of Aleutian mink disease parvovirus: implications for disease pathogencity[J]. J. Virol., 1999, 73(8):6882-6891.

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[5] Wu W H, Bloom M E, Berry B D, et al. Expression of Aleutian mink disease parvovirus capsid proteins in abaculovirus expression system for potential diagnostic use[J]. J. Vet. Diagn. Invest., 1994, 6(1):23-29.

[6] Sambrook J, Fritsch E F, Maniatis T, 著. 金冬雁, 黎孟楓, 侯云德, 等譯. 分子克隆實(shí)驗(yàn)指南(第二版)[M]. 北京:科學(xué)出版社, 1998, 862-897.

[7] 殷 震,劉景華. 動(dòng)物病毒學(xué)(第二版)[M]. 北京:科學(xué)出版社,1997,1162-1165.

[8] 閆喜軍,籍玉林. 我國(guó)水貂阿留申病流行現(xiàn)狀、特點(diǎn)及防治技術(shù)[J]. 特種經(jīng)濟(jì)動(dòng)植物,2004, 5:44.

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