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Vip3A殺蟲蛋白隨機重組文庫的構(gòu)建與分析

2013-01-16 08:52:28張寧劉榮梅束長龍張杰李海濤高繼國
生物技術通報 2013年3期

張寧 劉榮梅 束長龍 張杰 李海濤 高繼國

(1. 東北農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,哈爾濱 150030;2. 中國農(nóng)業(yè)科學院植物保護研究所植物病蟲害生物學國家重點實驗室,北京 100193)

蘇云金芽胞桿菌(Bacillus thuringiensis,Bt)為革蘭氏陽性菌,Bt在芽胞的形成過程中能夠產(chǎn)生殺蟲晶體蛋白(Insecticidal Crystal Proteins,ICPs),這種伴胞晶體蛋白對鱗翅目、鞘翅目、雙翅目、膜翅目等多種重要的害蟲都有特異性的毒殺作用。1996年,Estruch等[1]在Bt發(fā)酵上清液中發(fā)現(xiàn)了營養(yǎng)期殺蟲蛋白(Vegetative Insecticidal Proteins,VIPs)。VIPs與Bt在芽胞形成的過程中產(chǎn)生的殺蟲晶體蛋白的同源性極低。VIPs分為Vip1、Vip2、Vip3和Vip4,其中尤其Vip3A 蛋白對鱗翅目夜蛾科害蟲(如小地老虎、草地貪夜蛾、甜菜夜蛾和棉鈴蟲等)具有廣譜高效的殺蟲活性[2]。其中Vip3Aa蛋白間的氨基酸序列同源性都在95%以上,但其序列間個別氨基酸的差異也會導致對害蟲毒力和殺蟲譜的變化[3]。本試驗采用的Vip3Aa39和Vip3Aa11蛋白氨基酸序列間僅存在39個位點的不同,但Vip3Aa39和Vip3Aa11對小地老虎、小菜蛾、棉鈴蟲的殺蟲活性差別較大,根據(jù)本實驗室生物活性測定,Vip3Aa39對小地老虎的50%致死濃度(LC50)為5.43 μg/mL,而Vip3Aa11的LC5073.62 μg/mL;Vip3Aa39對小菜蛾的LC50為140.64 μg/mL,而Vip3Aa11對小菜蛾的殺蟲活性極低;Vip3Aa11對棉鈴蟲LC50為35.18 μg/mL,而 Vip3Aa39 的LC50僅 為 286.99 μg/mL[6]。 所 以定位和分析Vip3A蛋白的功能特異性區(qū)域,對研究Vip3Aa蛋白的殺蟲活性及殺蟲譜具有重要意義。

現(xiàn)在,人們越來越關注對已有蛋白質(zhì)的基因改造,發(fā)明了多種蛋白質(zhì)突變體基因庫構(gòu)建方法[4],其中就包括同源及非同源的多種重組方法。本研究選用了本實驗室克隆的對小菜蛾等農(nóng)業(yè)害蟲生物活性不同的vip3Aa39[6]和vip3Aa11[7]基因為目的基因,將兩個基因片段進行同源隨機重組,得到一系列同源重組產(chǎn)物。將不同的重組產(chǎn)物利用Gateway[5]技術克隆到供體載體(Donor vector),構(gòu)建一個Vip3A的隨機重組文庫。旨在獲得高毒力、具有殺蟲特異性的Vip3A蛋白的同時,也為進一步研究Vip3A類蛋白高毒力及殺蟲特異性相關功能區(qū)域奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株和質(zhì)粒 轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒pEB-Vip3Aa39的Rosetta(DE3)菌株和轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒pET28a-Vip3Aa-11的BL21菌株為中國農(nóng)業(yè)科學院植物保護研究所生物技術組實驗室所有。pDONR221菌株購于Invitrogen公司。Escherichia coliJM109為實驗室保存菌。

1.1.2 主要試劑和工具酶 Gateway BP Clonase Ⅱ E-nzyme Mix購自Invitrogen公司;2×TaqPCR Master-Mix、DNA Ladder Marker購自博邁德生物公司;PrimerSTAR Max DNA Polymerase 購自大連寶生物公司;質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒、PCR純化試劑盒購自AxyPrep生物技術有限公司。PCR引物合成和測序委托上海生工生物工程有限公司。DNA marker:100 bp ladder plus 購自博邁德生物公司。其余試劑均為國產(chǎn)分析純以上或進口超級純產(chǎn)品。

1.1.3 培養(yǎng)基 液體LB:胰蛋白胨1%,酵母提取物0.5%,氯化鈉1%。固體LB:在液體培養(yǎng)基中加1.5%瓊脂。

1.2 方法

1.2.1 質(zhì)粒DNA的提取 利用質(zhì)粒DNA小量提取試劑盒提取大腸桿菌中的質(zhì)粒pEB-Vip3Aa39、pET28a-Vip3Aa11和pDONR221。

1.2.2 重組目的基因的引物設計 根據(jù)已得到的vip3Aa39、vip3Aa11序列和attB1、attB2位點序列,設計引物。由于attB位點序列過長,設計兩步PCR。各引物名稱及序列如下:VIP3AA39-5:GTACAAAAAAGCAGGCTATGAATAAT;VIP3AA39-3:TTACTTAATTGAGACATCGTTAAACTTTACAAGA;VIP3AA-11-5:ATGAACAAGAATAATACTAAATTAAGCACAAGA;VIP3AA11-3:GTACAAGAAAGCTGGGTCTTAATAGAGACATCGT;attB1:GGGGACAAGTTTGTACAAAAAAGCAGGCT;attB2:GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGT(下劃線為attB1、attB2的部分序列)。

1.2.3 重組質(zhì)粒的構(gòu)建 分別以pEB-Vip3Aa39,pET28a-Vip3Aa11質(zhì)粒為模板,利用已設計引物 VIP3A-A39-5、VIP3AA39-3 和 VIP3AA11-5、VIP3AA11-3進行第一步PCR,分別在vip3Aa39基因的5'端加上attB1位點的部分序列,在vip3Aa11基因的3'端加上attB2位點的部分序列,且引物之間的長度為整個基因的完整序列;再分別以第一步PCR產(chǎn)物為模板,利用引物attB1、VIP3AA39-3和VIP3AA11-5、attB2,進行第二步PCR,分別使vip3Aa39基因的5'端加上attB1全位點序列,使vip3Aa11基因的3'端加上attB2全位點序列。

提取載體pDONR221質(zhì)粒,將第二步PCR反應產(chǎn)物attB1-Vip3Aa39和Vip3Aa11-attB2分別用PCR純化試劑盒進行純化,最后用 Gateway BP重組試劑盒中的Gateway BP ClonaseⅡenzyme mix 2 μL 進行25℃[8]過夜重組反應,獲得重組質(zhì)粒。重組反應示意圖見圖1。

1.2.4 Vip3A隨機重組文庫的構(gòu)建 重組質(zhì)粒加入2 μL蛋白酶K,37℃溫浴10 min,轉(zhuǎn)化大腸桿菌JM109,挑取所有克隆。

1.2.5 陽性克隆的鑒定 將重組質(zhì)粒進行PCR初步鑒定,測序由中國農(nóng)業(yè)科學院重大科學工程開放實驗室完成。根據(jù)測序結(jié)果,確定陽性克隆子。

2 結(jié)果

2.1 vip3Aa的PCR反應

圖1 Gateway技術同源重組示意圖

以質(zhì)粒pEB-Vip3Aa39和pET28a-Vip3Aa11為模板,應用引物VIP3AA39-5、VIP3AA39-3和VIP3AA11-5、VIP3AA11-3擴增到帶有部分attB1位點的vip3Aa39的目的產(chǎn)物和帶有部分attB2位點的vip3Aa11的目的產(chǎn)物,結(jié)果見圖2中1、2、3、4泳道。將PCR產(chǎn)物用PCR純化試劑盒純化后,結(jié)果見圖2中6、7泳道。

圖2 vip3Aa39和vip3Aa11的第一步PCR擴增及純化檢測

以第一次PCR反應產(chǎn)物為模板,進行第二次PCR,結(jié)果(圖3)顯示,應用設計引物attB1和VIP3AA39-3成功得到帶有attB1全位點的vip3Aa39目的產(chǎn)物(圖3中1、2泳道),命名為attB1-vip3Aa39;應用設計引物VIP3AA11-5和attB2成功得到帶有attB2全位點的vip3Aa11目的產(chǎn)物(圖3中3、4泳道),命名為vip3Aa11-attB2。

圖3 vip3Aa39和vip3Aa11的第二步PCR擴增檢測

應用NanoDrop ND-1000核酸蛋白定量檢測儀,對純化后的PCR產(chǎn)物及提取的pDONR221質(zhì)粒進行定量:attB1-vip3Aa39濃度為189.6 ng/L,vip3Aa11-attB2濃度為193.2 ng/L,pDONR221濃度為76 ng/L,結(jié)果顯示,濃度能夠達到Gateway BP重組試劑盒的要求。

2.2 重組質(zhì)粒的構(gòu)建和重組文庫的確定

將初步鑒定的42個重組質(zhì)粒進行測序。將測序結(jié)果用NCBI網(wǎng)站上的BLAST、Informax 2003 Vector NTI Suite 9、DNAMAN等軟件分析,獲得22個氨基酸序列不同的重組突變體,從而確定重組文庫。

對Vip3Aa39、Vip3Aa11和22個突變體氨基酸序列差別位點進行統(tǒng)計,結(jié)果(圖4)顯示,有的突變體與Vip3Aa39的序列N端區(qū)別很大,有的與Vip3Aa11序列的C端差別很多,但都與Vip3Aa39和Vip3Aa11的氨基酸序列不同,并且這些突變體在Vip3Aa39和Vip3Aa11的39個氨基酸差異位點上都有體現(xiàn)。說明重組位點覆蓋了兩個材料基因的全部差異位點,并且重組位點的數(shù)目有一個由逐漸遞增到遞減的趨勢,為之后研究材料基因的功能特異位點奠定了很好的基礎。同時將22個突變體氨基酸序列到NCBI網(wǎng)站進行蛋白序列比對,得到的每個突變體都是新序列。

將得到的22個突變體氨基酸序列和vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列應用Vector NTI軟件進行聚類分析,可看出各個突變體與vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列的遠近關系,結(jié)果(圖5)顯示,距離vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列較遠的突變體,其氨基酸序列與vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列的差別較大,例如M1、M20、M21和M22,共4個突變較大的突變體,占總突變體的18%;反之,突變體的氨基酸序列與vip3Aa39和vip3Aa11的氨基酸序列的差別較小,例如M2和M12等。

圖4 氨基酸突變位點統(tǒng)計分析

圖5 Vip3A突變體氨基酸序列聚類圖

3 討論

目前國際上的同源重組方法主要包括DNA shuffling[9]、StEP[10]、RACHITT[11]、RETT[12]、NExT[13]、Golden Gate Shuffling[14]。這 6 種方法中,有的存在酶的消化條件難于控制,有的存在片段延伸時間難于控制等問題,步驟繁瑣,都制約了重組的成功率。本研究采用Gateway技術及同源重組酶,步驟簡單,只需一步重組反應,且反應條件易于控制,在25℃條件下就可進行重組,成功率高。利用Gateway技術,擺脫了傳統(tǒng)載體構(gòu)建中酶切連接的局限性。Gateway入門載體兩端的接頭不同,能夠很好地解決目的基因連入的方向問題,未成功重組的載體由于仍然具有致死基因ccdB,而使普通大腸桿菌無法生長從而減少了假陽性的菌株,為后期的篩選工作節(jié)省了時間。

現(xiàn)在,人們主要應用Gateway技術的BP、LP反應來構(gòu)建表達載體,例如2011年,徐品三等[15]應用Gateway技術快速構(gòu)建百合雙價抗病毒RNAi表達載體;闕文忠等[16]利用Gateway技術快速地構(gòu)建同時表達NK4蛋白和綠色熒光的重組腺病毒;李明等[17]采用Gateway克隆技術構(gòu)建了小麥TaWRKY46-1基因可誘導型超量表達載體;本研究利用同源重組酶對兩個2.3 kb的全長基因進行同源隨機重組,然后再通過由Invitrogen公司開發(fā)的Gateway[5]技術將不同的同源重組片段克隆到其供體載體上,構(gòu)建突變體文庫。利用此方法進行的同源隨機重組,重組位點能夠覆蓋全部材料基因,重組材料及條件易于控制,操作簡單;同時利用Gateway技術的BP重組反應將重組片段克隆到供體載體上,省去了普通克隆時的酶切連接鑒定的繁瑣步驟,可直接將片段克隆到載體上,極大地提高克隆效率。

本研究運用Gateway重組酶通過對Vip3A類兩個基因的隨機重組獲得了22個突變體,經(jīng)氨基酸序列比對,差異較大的序列,說明突變位點較多,這可能會改變原有目的基因的功能;差異較小的序列,為今后定向研究材料基因的功能區(qū)域提供了研究對象。基于這些突變體在氨基酸序列上呈現(xiàn)的差異,我們將對這些突變體基因在大腸桿菌中進行重組表達,然后對每個突變體重組蛋白進行提取,并將其對鱗翅目昆蟲如甜菜夜蛾、小菜蛾、小地老虎等進行生物活性測定,以期找到殺蟲特異性強,殺蟲譜廣的殺蟲蛋白。為研究Vip3A蛋白的特異性相關區(qū)域或氨基酸定位奠定基礎,具有重要的理論意義和實用價值。

4 結(jié)論

應用Gateway技術中的BP反應對殺蟲譜存在特異性的vip3Aa39和vip3Aa11基因進行同源重組突變,構(gòu)建重組文庫。獲得42個基因型不同的重組質(zhì)粒,其中有22個蛋白序列不同的突變體。

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