CADM1過表達對人胃癌MKN－45細胞增殖和侵襲的影響及其分子機制*

郭曉鶴， 張彩鳳△， 夏永華， 李貞娟， 周慧聰， 韓 宇

(新鄉醫學院第一附屬醫院1消化科，2皮膚科，河南 新鄉453100)

細胞黏附分子1(cell adhesion molecule 1，CADM1)，稱為肺癌腫瘤抑制物1(tumor suppressor in lung cancer 1，TSLC1)，已經在非小細胞肺癌中被鑒定，其基因定位于人類染色體11q23.2［1－2］。CADM1 基因編碼 442 個氨基酸，屬于免疫球蛋白超家族，結構上與神經細胞黏附分子具有高度的同源性，主要牽涉到鈣離子非依賴的細胞－細胞間的黏附和信號轉導［3－4］。最近，大量研究顯示，CADM1在一系列人類腫瘤組織和細胞系中呈低表達或缺失，包括食管癌［5］、宮頸癌［6］、肝癌［7］、卵巢癌［8］、乳腺癌等［9］，然而在胃癌中尚未見相關的研究報道。因此在本研究中，我們分析不同胃癌細胞系中CADM1蛋白的表達，并構建pcDNA－CADM1真核表達載體，轉染胃癌細胞并篩選和鑒定穩定細胞株，接著研究CADM1過表達對細胞增殖和細胞侵襲的影響，并初步研究其可能的分子機制，該研究旨在為以CADM1為靶點的胃癌基因治療提供理論依據。

材料和方法

1 材料

人胃癌細胞MKN－28(高分化)、SGC－7901(中分化)和MKN－45(低分化)均購自中科院上海細胞所。真核表達載體pcDNA3.1(+)載體、脂質體2000和Trizol試劑均購自Invitrogen;PCR Mix購自北京天根生化科技有限公司;T4 DNA連接酶、限制性內切酶EcoR I和Xho I以及細胞裂解液均購自寶生物工程(大連)有限公司;cDNA第1鏈合成試劑盒購自上海生工生物工程有限公司;RPMI－1640、DMEM培養液和胰蛋白酶均購自Gibco;胎牛血清購自杭州四季青公司;CCK－8試劑購自中國碧云天生物技術有限公司;抗體CADM1、p21、基質金屬蛋白酶 2(matrix metalloproteinase 2，MMP－2)、MMP－9和β－actin均購自 Santa Cruz。

2 方法

2.1 細胞培養及轉染 胃癌細胞株MKN－28和SGC－7901均培養在含10%胎牛血清的RPMI－1640培養液中，MKN－45培養在含10%胎牛血清的DMEM培養液中，細胞均置于37℃、5%CO2的孵箱中生長。

2.2 pcDNA－CADM1真核表達載體的構建 從SGC－7901細胞中采用Trizol提取總RNA，然后反轉錄成cDNA，以該cDNA為模板，CADM1上游引物 5’－CCGGAATTCATGGCGAGTGTAGTGCTGCC－3’(EcoR I)下游引物 5’－CCGCTCGAGCTAGATGAAGTACTCTTTC－3'(Xho I)，產物大小1 329 bp。PCR擴增條件為:94℃預變性10 min，然后94℃ 40 s，56℃ 1 min，72℃ 1 min，30個循環，最后72℃延伸6 min。接著將CADM1片段和載體均分別采用EcoR I和Xho I進行雙酶切，然后在T4 DNA連接酶的作用下進行連接，接著轉化、挑克隆、提質粒，酶切鑒定。

2.3 pcDNA3.1和 pcDNA－CADM1轉染 當 MKN－45細胞達到90%左右融合時，利用脂質體2000將pcDNA3.1和pcDNA－CADM1轉染MKN－45細胞，細胞分為3組:未處理組(未進行轉染的MKN－45細胞)、pcDNA3.1組(轉染空載體pcDNA3.1的MKN－45細胞)和pcDNA－CADM1組(轉染pcDNA－CADM1的MKN－45細胞)，轉染后采用600 mg/L G418進行篩選，當出現明顯的克隆后，對照細胞全部死亡時進行傳代直至獲得穩定細胞株，最后采用400 mg/L的G418維持培養。

2.4 細胞增殖分析 3組MKN－45細胞分別在96孔板上接種 1 000 cells/well，測定其培養 0、24、48、72、96 及 120 h 時的增殖情況，每個樣品接種5個復孔，在測定細胞增殖時，加入10%CCK－8試劑，于37℃培養箱中繼續孵育2 h，然后于酶標儀上測定450 nm的吸光度。

2.5 Boyden chamber體外侵襲能力的檢測 將3組MKN－45細胞分別培養至大約105個細胞時，分別懸浮在含有0.2%胎牛血清的800 μL培養液中，然后依次接種至Boyden chamber的上層，培養6 h。收集遷移到濾膜下層的細胞，用甲醇固定，并通過HE染色觀察下層細胞的數量，最后通過計算濾膜下層的細胞數來評估其轉移的細胞數量(30個視野，×200)。

2.6 Western blotting 收集 MKN －28、SGC－7901和 MKN－45細胞以及不同處理的MKN－45細胞，采用細胞裂解液提取總蛋白，接著進行SDS－PAGE電泳，然后將凝膠上的蛋白電轉移到硝酸纖維素(NC)膜上。用含5%脫脂奶粉的TBST液封閉 NC 膜 2 h，加入Ⅰ抗(CADM1、p21、MMP－2、MMP－9和β－actin，均1∶200)，4℃ 搖床孵育過夜。加入Ⅱ抗室溫孵育2 h。將NC膜置于ECL(增強化學發光試劑)中反應1～3 min，于暗室中利用X射線曝光，常規方法顯影定影，顯示特異的蛋白信號。蛋白表達的灰度值利用Image－Pro Plus 5.0軟件進行分析，蛋白相對表達為目的基因與內參基因的比值，β－actin作為內參照。

3 統計學處理

采用SPSS 13.0軟件分析，數據以均數±標準差(ˉx±s)表示，3組之間比較采用單因素方差分析(One－way ANOVA)，以P＜0.05為差異有統計學意義。

結 果

1 3種胃癌細胞株中CADM1蛋白的表達

Western blotting結果顯示，低分化的MKN－45細胞中CADM1蛋白的表達水平明顯低于中分化的SGC－7901細胞和高分化的MKN－28細胞(P＜0.05)，而中分化的SGC－7901細胞中CADM1蛋白的表達水平與高分化的MKN－28細胞之間無顯著差異(P＞0.05)，見圖1，因此在下面的實驗中采用CADM1蛋白表達水平最低的MKN－45進行研究。

Figure 1.Expression of CADM1 protein in three gastric carcinoma cell lines.ˉx±s.n=3.*P＜0.05 vs MKN－28 or SGC －7901 cells.圖1 3種胃癌細胞株中CADM1蛋白的表達

2 真核表達載體的構建及穩定表達CADM1細胞株的鑒定

采用PCR擴增CADM1基因，結果表明，CADM1全長cDNA片段被成功獲得，見圖2A。我們進一步將片段和pcDNA3.1空載體均采用EcoR I和Xho I進行雙酶切，連接，轉化，挑克隆、提取質粒并進行酶切鑒定，酶切結果表明獲得了預期的載體帶和目的條帶，表明真核表達載體pcDNACADM1成功構建，見圖2B。將所構建的真核表達載體pcDNA－CADM1和空載體pcDNA3.1轉染MKN－45細胞，獲取穩定細胞株后，采用 Western blotting進行鑒定，結果表明pcDNA－CADM1組中CADM1蛋白表達顯著高于pcDNA3.1組和未處理組(P＜0.05)，而未處理組和pcDNA3.1組之間CADM1蛋白表達無顯著差異(P＞0.05)，見圖3。

Figure 2.Construction of eukaryotic expression vector pcDNACADM1.A:PCR amplication of CADM1 gene.1:PCR product;M:GeneRuler DNA Ladder Mix.B:identification of eukaryotic expression vector pcDNACADM1.1:pcDNA －CADM1 digested with double enzymes EcoR I and Xho I;M:GeneRuler DNA Ladder Mix.圖2 pcDNA－CADM1真核表達載體的構建

Figure 3.Identification of MKN－45 cells stably overexpressing CADM1.圖3 過表達CADM1的MKN－45穩定細胞株的鑒定

3 CADM1過表達抑制MKN－45細胞的增殖

與未處理組和pcDNA3.1組相比，pcDNA－CADM1組在培養后的各時點，MKN－45細胞的增殖均明顯受到抑制，且差異有統計學意義(P＜0.05);未處理組和pcDNA3.1組在培養的各時點，MKN－45細胞的增殖無顯著差異(P＞0.05)，見圖4。

Figure 4.Effect of overexpression of CADM1 on proliferation of MKN－45 cells.ˉx±s.n=3.*P＜0.05 vs non－treatment or pcDNA3.1.圖4 CADM1過表達對MKN－45細胞增殖的影響

4 CADM1過表達對MKN－45細胞侵襲的影響

與未處理組(101.53 ±6.89)和 pcDNA3.1 組(98.77 ±7.03)相比，pcDNA－CADM1組中MKN－45細胞穿過Matrigel的細胞數(52.35±3.89)顯著減少(P＜0.05)，未處理組和pcDNA3.1組中MKN－45細胞穿過Matrigel的細胞數無顯著差異(P＞0.05)。

5 CADM1過表達對MKN－45細胞中增殖和侵襲相關蛋白表達的影響

與未處理組和pcDNA3.1組相比，pcDNA－CADM1組中p21蛋白表達顯著升高，而MMP－2和MMP－9蛋白表達顯著下調，差異均有統計學意義(P＜0.05)，而未處理組和pcDNA3.1組中上述各蛋白表達無顯著差異(P＞0.05)，見圖5。

討 論

越來越多的研究表明，CADM1在多種不同腫瘤中均作為腫瘤抑制物而發揮作用［6，9－13］。目前在許多腫瘤中發現CADM1表達的缺失或降低，并證實其牽涉到許多腫瘤的進展和轉移［2，14－16］。Takahashi等［17］研究表明，67 例原發性乳腺癌中具有異常的CADM1表達。Chen等［18］發現8個結腸癌中有7個出現CADM1的低表達，而54例原發性結腸癌中有39例出現CADM1的低表達。本研究中，我們選擇3種分化程度不同的胃癌細胞株，利用Western blotting檢測3種細胞中CADM1蛋白的表達，結果表明，3種胃癌細胞中均明顯出現CADM1蛋白表達，隨著分化程度降低，CADM1蛋白表達水平也顯著下調，即低分化的MKN－45細胞中CADM1蛋白的相對表達水平顯著低于中分化的SGC－7901細胞和高分化的MKN－28細胞，提示CADM1的表達與胃癌細胞的發生發展密切相關。

Figure 5.Expression of p21，MMP－2 and MMP－9 proteins in MKN－45 cells with different treatments.ˉx±s.n=3.*P ＜0.05 vs non －treatment or pcDNA3.1.圖5 p21、MMP－2和MMP－9在不同處理的MKN－45細胞中的表達

為了進一步研究CADM1在胃癌細胞中的功能，我們構建CADM1的真核表達載體 pcDNA－CADM1，將其轉染到CADM1表達水平最低的MKN－45細胞株中，篩選穩定表達CADM1的胃癌細胞株，進一步采用Western blotting鑒定，結果顯示，篩選到的穩定表達CADM1的MKN－45細胞中其CADM1蛋白表達水平顯著高于未處理組和pcDNA3.1組(P＜0.05)，提示pcDNA－CADM1真核表達載體的引入能明顯上調MKN－45細胞中CADM1蛋白表達水平，這也為后續進一步研究CADM1的功能提供理想的研究平臺。

研究顯示，CADM1是細胞增殖和細胞侵襲的關鍵調控因子［19－20］。Mao等［21］研究發現 CADM1 過表達可抑制A549 細胞增殖和誘導細胞凋亡，并抑制A549皮下接種的腫瘤至70% ～80%的程度。此外，Lung等［11］的研究表明CADM1在有轉移性淋巴結的鼻咽癌中表達下調或缺失的頻率為83%，顯著高于原發性鼻咽癌的12%(P＜0.05)，提示CADM1與侵襲轉移密切相關。是否上調胃癌MKN－45細胞中CADM1蛋白的表達能改變胃癌細胞增殖和侵襲能力?因此，在本研究中，我們采用CCK－8研究3組MKN－45細胞中細胞增殖的變化，結果顯示與未處理組和pcDNA3.1組相比，pcDNACADM1組在培養后的各時點，MKN－45細胞的增殖均明顯受到抑制(P＜0.05)。此外，我們還利用Boyden小室體外遷移實驗檢測3組胃癌細胞的遷移能力，結果發現pcDNACADM1組中MKN－45細胞遷移到matrigel的細胞數明顯低于未處理組和pcDNA3.1組(P＜0.05)，上述研究結果提示CADM1的過表達能明顯抑制胃癌MKN－45細胞的增殖和降低其遷移能力，但其分子機制有待進一步探討。

研究表明，p21與腫瘤細胞的增殖密切相關，其在腫瘤細胞中能明顯傳遞抗增殖信號［22］。而2種主要的金屬基質蛋白酶MMP－2和MMP－9與許多腫瘤的惡性程度有關，主要由于其獨特的降解IV型膠原能力，這也是基底膜的主要構成成份［23］，提示其表達水平的高低與腫瘤的侵襲和轉移能力密切相關。因此，為了初步了解CADM1介導胃癌細胞增殖抑制和侵襲能力降低的可能分子機制，我們采用Western blotting分析了3組MKN－45胃癌細胞中p21、MMP－2和MMP－9蛋白的表達，發現pcDNA－CADM1組中p21蛋白表達水平顯著上調，而MMP－2和MMP－9蛋白表達水平顯著下調(P＜0.05)，表明CADM1介導胃癌細胞增殖抑制和侵襲能力降低可能與p21蛋白表達水平的升高以及MMP－2和MMP－9蛋白表達水平的降低密切相關。

總之，本研究結果顯示，CADM1的過表達能明顯抑制胃癌細胞的增殖和侵襲能力，其變化可能與p21、MMP－2和MMP－9蛋白表達的變化密切相關。進一步研究CADM1在胃癌中的功能有望為以CADM1為靶點的胃癌基因治療提供理論依據。

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