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垂花百合花器官離體培養

2012-03-13 07:16:54王曉麗張彥妮楊青杰周蘊薇
草業科學 2012年12期

劉 芳,王曉麗,張彥妮,楊青杰,周蘊薇

(1.東北林業大學園林學院,黑龍江 哈爾濱 150040; 2.黑龍江八一農墾大學農學院,黑龍江 大慶 163319;3.呼倫貝爾市蠶業科學研究所,內蒙古 呼倫貝爾 162650)

百合(Liliumspp.)是世界著名的球根花卉,觀賞價值較高,培育高品質的新品種百合來滿足日益增長的市場需求已迫在眉睫。而野生種百合則是品種選育的重要資源,野生種百合的微繁研究對于野生資源的馴化及新品種選育和遺傳性狀的改良等都極為重要[1-2]。垂花百合(L.cernum)在我國主要分布于吉林省長白山地區,在百合屬植物中屬珍稀耐寒野生種。利用組培再生的方法能夠保證原種的優良特性和較高的繁殖系數[3]。目前,百合離體培養大部分以鱗片[4]作為外植體,也有以花絲[5]、花藥[6]、子房[7]、葉片[8]、胚等作為外植體取得成功的報道。垂花百合具有良好的觀賞性狀,同時也是具較強抗性的野生種,是百合抗性育種的重要親本。對垂花百合進行不定芽誘導及植株再生試驗,發現中部或內部鱗片基部再生頻率較高,再生植株葉片基部分化能力最強[9];對其鱗莖進行誘導,發現鱗莖誘導最適宜的培養基為N6+0.05 mg·L-1IAA+0.50 mg·L-1KT,鱗莖萌發為完整植株的最佳培養基為N6+0.01 mg·L-1IAA+0.001 mg·L-1NAA[10]。但鱗莖作為地下貯藏器官,極易攜帶病菌,表面消毒后仍會不同程度地帶菌,不利于種質長期保存和規模化生產;而花器官為幼嫩器官,污染小,同時研究花器官的離體培養也是對垂花百合生物學特性的有益補充。為此,本研究比較不同的激素配比條件下垂花百合花瓣、花托、子房愈傷組織的誘導和分化能力,篩選不同的愈傷組織誘導和分化效果最佳的培養基,以期為垂花百合的基因工程和細胞工程育種研究及百合產業發展提供有益參考。

1 材料與方法

1.1實驗材料 選擇來源于長白山地區生長健壯、無病蟲害的垂花百合未開放的花作為外植體,進行花器官離體培養。

1.2實驗方法 將垂花百合未開放的花蕾在洗衣粉水中漂洗10 min后,在流水下沖洗30 min,在超凈工作臺上用75%的無水乙醇消毒30 s,然后用2% NaClO消毒10 min,再用無菌水沖洗4~5次。用鑷子和刀將花蕾分成花瓣、花托、子房3部分,接種于添加不同濃度的6-芐基腺嘌呤(6-BA)和萘乙酸(NAA)MS培養基中。每處理30個外植體,重復3次。45 d時統計愈傷組織誘導率,65 d時統計愈傷組織分化率。

誘導率=(誘導愈傷組織外植體數/接種外植體數)×100%;

分化率=(分化成苗外植體數/誘導愈傷組織外植體數)×100%[11]。

將由花瓣誘導出的芽經增殖培養后,切成單株接入添加不同生長激素的生根培養基中,生根培養基成分為1/2 MS+AC 0.5 g·L-1附加不同濃度的吲哚丁酸(IBA)及NAA。每處理30個外植體,各處理3次重復。30 d后統計生根情況。培養條件為(25±2) ℃,光強為3 000 lx,光周期為光培養14 h,暗培養10 h。

2 結果與分析

2.1不同激素配比條件下花瓣愈傷組織誘導及分化情況 不同培養基對花瓣愈傷組織的誘導效果存在顯著差異(表1)。在MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1激素組合的培養基上,愈傷組織誘導及分化效果最好,誘導率可達57.65%,分化率可達81.12%。當NAA濃度升高,愈傷組織的誘導率及分化率相應提高,在NAA 0.1 mg·L-1水平上,花瓣未見愈傷組織形成,說明低濃度NAA不利于誘導愈傷組織。隨著6-BA濃度的升高,愈傷組織分化成苗的分化率相應升高,說明較高濃度的6-BA有利于愈傷組織進行分化。

表1 不同激素配比條件下花瓣愈傷組織誘導及分化情況Table 1 Petals,ovary,and receptacle explants callus induction and differentiation of Lilium cernum under different hormone combinations

2.2不同激素配比條件下子房愈傷組織誘導及分化情況 在MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1激素組合的培養基上,子房愈傷組織誘導及分化效果最好,誘導率可達35.22%,分化率可達61.11%(表1)。并且隨NAA濃度的升高,愈傷組織的誘導率及分化率也相應提高,高濃度NAA與低濃度NAA的培養基對子房誘導愈傷組織的效果存在顯著差異;隨著6-BA濃度升高,愈傷組織的誘導率先上升后下降。

2.3不同激素配比條件下花托愈傷組織誘導及分化情況 在MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.2 mg·L-1的激素組合的培養基上花托愈傷組織誘導及分化情況最好,誘導率可達36.67%,分化率可達44.34%。在NAA 0.2 mg·L-1與不同濃度的6-BA的培養基中,花托愈傷組織誘導效果差異明顯(表1)。當NAA濃度增加時,愈傷組織誘導率及分化率先增加后減少;隨著6-BA濃度的升高,愈傷組織的誘導率先上升后下降。由此可知,花托誘導愈傷組織時,6-BA和NAA的濃度均不宜過高也不宜過低。

2.4百合花器官愈傷組織誘導及分化的比較

2.4.1不同花器官外植體愈傷組織誘導及分化的比較 垂花百合的花器官在離體培養過程中愈傷組織的誘導及分化的時間較長,外植體誘導愈傷組織由易到難依次為花瓣>花托>子房(圖1)。

花瓣的分化率明顯高于其他部位,且分化所需時間最短。接種3 d后花瓣顏色明顯變深呈粉色(圖1A);20 d后部分花瓣切口處開始膨大,溝壑變明顯,花瓣顏色變淺,35 d后開始形成綠色愈傷組織,40 d開始形成不定芽(圖2B);55 d后每個外植體上平均分化出芽4.8個,最多達14個(圖1C)。

子房的誘導率和分化率次之,且時間較花瓣長。接種2 d后子房明顯膨大,顏色變成黃綠色(圖1D);40 d時繼續膨大,顏色變為綠色,部分子房切口處產生帶有絨毛的白色根狀物(圖1E);60 d后開始形成愈傷組織,65 d后開始形成不定芽(圖1F)。

花托的愈傷組織誘導和分化的能力介于花瓣和子房之間,所需時間較花瓣長,較子房短。接種3 d后,花托明顯膨大,表面變粗糙,顏色變為淡黃綠色(圖1G);45 d后開始形成愈傷組織,并且產生帶有絨毛的白色根狀物(圖1H);60 d后白色根狀物也形成愈傷組織并產生不定芽(圖1I)。

2.4.2不同激素組合對花器官愈傷組織誘導及分化的比較 在百合組培苗誘導過程中,適量添加NAA對愈傷組織誘導及分化有明顯的促進作用。6-BA能誘導不定芽的產生,使其大量增殖,如果6-BA濃度過高,同樣也會誘導部分外植體產生大量的不定根,從而抑制不定芽的形成,抽葉多,植株不能健壯生長和發育[12]。本研究中,花瓣、子房、花托3種外植體對低濃度的6-BA、NAA都不敏感,誘導花瓣愈傷組織及分化的培養基中6-BA、NAA濃度都很高,不同外植體誘導愈傷組織對激素配比濃度需求不同,誘導愈傷組織及分化效果也有差異。這種差異可能是由于百合品種及外植體的不同導致的。

2.5生根與移栽 將分成單株的小苗接于含有0.5 g·L-1活性炭,附加不同生長激素濃度的1/2 MS生根培養基中。結果表明,由花瓣誘導的小苗在1/2 MS+IBA 1.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1+AC 0.5 g·L-1的生根培養基中生根率最高達71.11%,平均根長達2.03 cm(表2)。隨著IBA濃度的增加,垂花百合的生根率也升高。在本研究中,活性炭的加入有利于垂花百合的生根,使根的長度增加,長勢變壯(圖1J)。將根長2~4 cm的小苗煉苗3 d,然后移栽至已滅菌的蛭石中,浸透水后放入人工氣候箱內緩苗,15 d后移到溫室。移栽后的小苗生長良好,成活率可達80%(圖1K)。方差分析表明,不同濃度激素組合的培養基對百合生根率及根長的影響均有不同程度的差異。

3 討論

在百合的組織培養研究中,許多器官、組織都可以用作外植體,其中以鱗片作外植體的頻率最高,但鱗片取材對母本傷害大,且消毒處理難度大、易污染[4,10],未授粉的花器官培養和人工授粉后的花器官培養對培育百合新品種和保持母本優良特性有重大研究意義。

本研究對垂花百合花器官(花瓣、花絲、花藥、花柱、子房、花托、花梗)進行了離體培養,其中花絲、花柱、花梗開始時膨大,形成愈傷組織,但后期大量褐化死亡,只有花絲在MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1培養基上有兩個分化不定芽,花藥在培養期間未能形成愈傷組織及分化,表明垂花百合誘導愈傷組織由易到難依次為花瓣>花托>子房,但亞洲百合‘米麗拉’花器官組織培養再生植株不同部位的分化率從高到低依次為花絲、花柱、子房、花托、花瓣、花藥[13],這可能是由供試品種的差異性導致的。

圖1 垂花百合花器官外植體愈傷組織誘導及分化Fig.1 Floral organ explant callus induction and differentiation of Lilium cernum

表2 不同激素組合對垂花百合生根的影響Table 2 Effects of different hormone combinations on rooting of Lilium cernum

植物生長調節劑在組織培養中發揮著重要的作用,在含量極低時就可以影響植物細胞的分裂、分化,以及植物體的生長、發育、形態建成等許多生理生化過程。研究表明,NAA對外植體愈傷組織誘導與分化起到一定的作用,較低濃度的NAA不利于誘導愈傷組織。這一結果與劉麗敏等[14]在百合花器官的組織培養中的結果一致,適宜濃度的NAA有利于百合花器官的初代誘導。

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