李麗萍,張杜娟,崔秀君
(濟南市婦幼保健院,濟南250001)
制霉素為抗真菌類藥,能與真菌細胞膜上的特異甾醇結合,使細胞膜破壞,通透性改變,內容物外漏而致細胞死亡,用于治療皮膚、黏膜等念珠菌感染[1]。制霉菌素油是本院自制外用制劑,由制霉素和甘油混合而成。本實驗采用紫外分光光度法測定制霉素含量,用于制霉菌素油的質量控制。
1.1 儀器 UV-2102PCS型紫外分光光度儀(上海龍尼柯儀器有限公司),AL104電子天平(瑞士梅特勒—托利多)。
1.2 藥品 制霉素標準品(批號130344-201002,5 341 U/mg,中國食品藥品檢定研究院),制霉菌素油(魯藥制 ZBH0212,8.7 g/L,批號 20120808,20120814,20120817,濟南市婦幼保健院),制霉素原料(批號110908,5 000 U/mg,浙江震元制藥有限公司),甘油(批號20120118,湖南爾康制藥股份有限公司),甲醇(分析純,批號T20061214,國藥集團化學試劑有限公司)。
2.1 制霉菌素油樣品制備 取制霉素原料8.7 g,研細,加甘油適量,充分研勻,加甘油至1 000 mL即得。
2.2 溶液配制
2.1.1 儲備液配制 精密稱取制霉素標準品12 mg,置100 mL棕色量瓶中,加甲醇溶解并定容至刻度,混勻,得120 μg/mL制霉素標準儲備液,于4℃冰箱儲存。
2.1.2 樣品溶液配制 取制霉菌素油樣品,搖勻,精密量取1 mL,置50 mL量瓶中,用甲醇洗滌吸管內壁3次,洗液并入量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻;精密量取稀釋液2 mL,置25 mL量瓶中,加甲醇稀釋至刻度,搖勻,即得制霉菌素油樣品溶液。
2.3 波長選擇 分別取制霉素標準溶液(12 μg/ mL)、制霉菌素油樣品溶液,以甲醇為基線,以甘油加甲醇稀釋為空白基質,采用紫外分光光度法,在200~400 nm波長范圍內掃描。紫外吸收圖譜(圖1)顯示,空白基質基本無吸收,制霉素標準溶液、制霉菌素油樣品溶液的紫外吸收光譜一致,有3個吸收峰,分別為290、304、318 nm,在304 nm波長處吸光度最大,故選擇304 nm為檢測波長。

圖1 不同溶液的紫外吸收圖譜注:A:甲醇(基線);B:空白基質;C:制霉素標準溶液(12 μg/mL);D:制霉菌素油樣品溶液
2.4 線性關系觀察 分別精密量取制霉素標準儲備液1.5、2.0、2.5、3.0、3.5 mL,置于25 mL量瓶中,加甲醇定容,得7.2、9.6、12.0、14.4、16.8 μg/ mL制霉素系列標準溶液。以甲醇為空白,在304 nm波長處測定吸光度值,以吸光度值對濃度(C)進行線性回歸,在濃度7.2~16.8 μg/mL范圍內,回歸方程為吸光度 =0.009 80+0.047 25C,r= 0.999 6(n=5),表明線性關系良好。
2.5 精密度 分別精密量取制霉素標準儲備液適量,用甲醇稀釋至高(14.4 μg/mL)、中(12.0 μg/ mL)、低(9.6 μg/mL)3個濃度,測定日內精密度。連續測定3 d,測得日間精密度,結果見表1。由表1數據可知,制霉素測定方法精密度良好。
2.6 重復性與中間精密度 ①重復性:精密量取同一批號的制霉菌素油6份,各1 mL,分別加甲醇稀釋定容至50 mL;取稀釋液2 mL,加甲醇稀釋至25 mL,測定吸光度,計算含量及RSD值。結果見表2。由表2數據可知,該方法重復性良好。②中間精密度:不同分析人員、不同日期分別精密量取同一批號的制霉菌素油6份,各1 mL,用甲醇稀釋(方法同重復性試驗),測定吸光度,計算含量及RSD值,結果見表3。由表3數據可知,該方法中間精密度良好。

表1 制霉素含量測定日內與日間精密度
2.7 加樣回收率 分別精密稱取制霉素標準品,加適量甘油,混勻,按處方比例分別配制高(120%)、中(100%)、低(80%)分別為6.96、8.70、10.44 mg/ mL的制霉菌素油樣品,每個濃度各3份。分別用甲醇稀釋625倍,分別得11.136、13.920、16.704 μg/ mL的制霉素標準溶液,測定吸光度,計算含量及RSD值。結果見表4。由表4數據可知,該方法回收率在98%~102%,符合測定要求。
2.8 穩定性 取制霉菌素油樣品溶液和制霉素標準溶液(12 μg/mL)各3份,分別于室溫避光放置2、4、8、12 h后,測定吸光度,并計算含量,考察制霉素

表2 制霉素含量測定重復性

表3 制霉素含量測定中間精密度

表4 制霉素含量測定加樣回收率
室溫避光放置穩定性。結果見表5。由表5數據可知,制霉菌素油樣品溶液和制霉素標準溶液室溫避光放置12 h穩定。

表5 制霉素含量測定穩定性
2.9 樣品測定 精密稱取制霉素標準儲備液適量,加甲醇稀釋,配制成12 μg/mL制霉素標準溶液。取3個批次制霉菌素油樣品各1 mL,按2.1.2方法分別配制成制霉菌素油樣品溶液,每個批次各3份。以甲醇為空白,分別測定制霉素標準溶液和樣品溶液在304 nm波長處的吸光度,用對照法計算含量,結果見表6。結果表明,制霉菌素油含量在90%~110%,符合要求。
3.1 含量測定方法的選擇 制霉素中主要包括制霉菌素A1、A3和多真菌素B[2]。根據國家藥品標準WS1-C2-0025-89,制霉素含量測定采用抗生素微生物檢定法,但該方法耗時、煩瑣、整個實驗過程中影響因素多,且采用的啤酒酵母菌的抑菌圈邊緣清晰度不高,影響測定;劉興蘭等[3]等采用比濁法,該方法較管碟法簡便,但影響因素較多;林艷等[4]采用高效液相色譜法測定制霉素的含量,用3個主峰的面積進行定量,因制霉素包含多種組分,此方法不夠準確;文獻多采用紫外分光光度法[5~10]測定制霉素的含量,該方法簡便、快速和定量準確。本實驗也采用紫外分光光度法,經驗證,該法線性關系良好,精密度、重復性、穩定性均符合要求,可用于制霉菌素油的質量控制。

表6 樣品含量測定結果(n=3)
3.2 溶劑選擇 制霉素在甲醇中微溶,在水中極微溶解,在氯仿、乙醚中不溶,所以本實驗采用甲醇作溶劑。
3.3 操作注意事項 制霉素具有引濕性,對光、空氣、酸或堿均不穩定,制霉菌素油樣品在長期放置后,顏色變深,所以本實驗在操作過程中應注意避光,并縮短操作時間。制霉菌素油黏稠度較大,在吸取樣品時,吸管內壁易殘存樣品溶液,使取樣量誤差較大,須用甲醇洗滌,以降低誤差。
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