李 娜,冶亞平,朱會芳,韓芳毅,千新來
(新鄉醫學院病理學教研室,河南新鄉 453003)
乳頭瘤病毒(human papillomaviruses,HPVs)是一組小分子雙鏈DNA病毒,研究證實高危型人乳頭瘤病毒(high risk-HPVs,hr-HPVs)特別是HPV16型與宮頸癌的發生、發展存在著密切關系,其與肺癌和乳腺癌等惡性腫瘤的發生與演進的關系也受到廣泛關注[1-2]。本研究以人低轉移乳腺癌細胞MCF-7為研究對象,通過脂質體將HPV16 E6、E7和同時表達E6/E7的重組質粒轉入MCF-7細胞,探討HPV16 E6、E7和E6/E7同時穩定表達對HPV16陰性的乳腺癌細胞侵襲能力的影響及其機制。
1.1材料 (1)質粒與細胞株:pcDNA3.1-E6、pcDNA3.1-E7和pcDNA3.1-E6/E7真核表達質粒由本實驗室構建并保存。人低轉移乳腺癌細胞系MCF-7購于中科院上海細胞庫。(2)主要試劑:SuperScriptTMFirst-Strand Synthesis System for RT-PCR 試劑盒、lipofectamineTM2000均為Invitrogen公司產品。羊抗HPV16 E6多克隆抗體(IgG)、鼠抗HPV16 E7單克隆抗體(IgG)為美國Santa Cruz公司產品。引物由上海生物工程公司合成。
1.2方法
1.2.1細胞培養與基因轉染 細胞在含有10%胎牛血清(FBS)、100 U/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素的完全培養基中37 ℃、5%CO2條件下培養,待細胞長至70%融合時,按lipofectamineTM2000說明書進行轉染,轉染9 h后,更換新鮮完全培養基,培養48 h,設置MCF-7-vect轉染組、MCF-7親本細胞組、轉基因組(MCF-7-E6細胞組,MCF-7-E7細胞組,MCF-7-E6/E7細胞組)。用G418(800 μg/mL)篩選陽性克隆。每種轉染細胞分別挑取4個單克隆培養擴增,獲得穩定轉染細胞。
1.2.2Western blot檢測蛋白表達 按照試劑盒說明書提取細胞質、細胞核蛋白,蛋白上清經十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)(5%濃縮膠,12%分離膠)后轉移至硝酸纖維素膜,TBST封閉,一抗室溫搖育,TBST洗滌;二抗于室溫搖育,TBST洗滌,膜與化學發光底物孵育3~5 min,經X線片曝光、顯影、定影。顯色結果用軟件Bandscan5.0進行灰度分析,并計算蛋白的相對表達水平。

表1 不同細胞克隆中HPV16 E6、E7蛋白的表達
1.2.3Transwell侵襲實驗和遷移實驗 加含10%FBS的完全培養基于24孔板(600 μL/孔),小心取出小室放入24孔板中,膜上鋪人工基底膜Matrigal膠,靜置5 min。取單細胞懸液400 μL接種入小室,常規培養18 h。取出小室,結晶紫染色。通過倒置顯微鏡下計數6個視野穿膜細胞數,每組設3個平行樣本,共重復3次計算平均值。遷移實驗小室內不鋪設基質膠,余同侵襲實驗。
1.2.4RT-PCR法檢測基質金屬蛋白酶-2(matrixmetallo proteinases-2,MMP-2) mRNA的表達 MMP-2上游引物序列:5′-TTC AAG GAC CGG TTC ATT TGG CGG ACT GTG-3′,下游引物序列:5′-TTC CAA ACT TCA CGC TCT TCA GAC TTT GGT T-3′,目的片段長度為493 bp。PCR反應條件:94 ℃×2 min、94 ℃×1 min、58 ℃×1 min和72 ℃延伸1 min,共30個循環;72 ℃延伸10 min。取5 μL用1.5%瓊脂糖凝膠電泳,在凝膠成像儀上成像及測定分析,實驗重復3次計算平均值。

2.1不同細胞克隆中HPV16 E6和E7蛋白的表達 MCF-7-vect和MCF-7親本細胞中HPV16 E6和E7蛋白表達均為陰性。MCF-7-E6的 1號克隆、MCF-7-E7的4號克隆和MCF-7-E6/E7的4號克隆分別穩定高表達HPV16 E6、E7和同時穩定高表達E6/E7,見表1。
2.2HPV16 E6和E7穩定高表達對MCF-7細胞侵襲能力的影響 與MCF-7親本、MCF-7-vect和MCF-7-E7細胞比較,MCF-7-E6和MCF-7-E6/E7細胞穿膜細胞數顯著增加(P<0.05),見表2,圖1。

表2 Transwell遷移和侵襲實驗結果
2.3HPV16 E6和E7穩定高表達對MCF-7細胞MMP-2 mRNA表達的影響 RT-PCR結果顯示:在MCF-7-vect和MCF-7親本細胞中MMP-2 mRNA表達陰性,而在3種重組細胞中均有表達。半定量分析結果顯示,MMP-2 mRNA的相對表達量在MCF-7-E6、MCF-7-E7和MCF-7-E6/E7細胞組中分別為0.760±3.784、0.742±7.022和0.838±2.770,組間比較差異無統計學意義(P>0.05),見圖2。

A:MCF-7親本細胞;B:MCF-7-vect細胞;C:MCF-7-E6細胞;D:MCF-7-E7細胞;E:MCF-7-E6/E7細胞

M:1 000 bp 標記物;1:MCF-7-E6細胞;2:MCF-7-E7 細胞;3:MCF-7-E6/E7 細胞;4:MCF-7-vect細胞;5:MCF-7 親本細胞
乳腺癌是女性最常見的惡性腫瘤之一,據資料統計,發病率占全部惡性腫瘤的7%~10%。盡管目前對腫瘤的手術、化療和放療三位一體的綜合治療已取得了很大的進步,但仍約有50%的乳腺癌患者在治療后5年內出現復發轉移而導致治療失敗[1]。因此,闡明乳腺癌侵襲轉移的機制以及尋找相應的干預措施,已成為提高患者5年生存率所面臨的最大挑戰。
有研究顯示大約50%的乳腺癌患者伴有hr-HPVs的感染[2]。hr-HPVs感染在肺癌、食管癌、乳腺癌等惡性腫瘤發生和演進中的作用也日益受到重視[3-6]。hr-HPVs特別是HPV16型與宮頸癌的發生、發展存在著密切的病因學關系[7-9],其與頭頸部惡性腫瘤、肺癌和乳腺癌等惡性腫瘤的發生與演進的關系也受到廣泛關注。將HPV16 E6和E7基因轉染入無轉移能力的鼠源性永生化細胞后,可賦予該細胞侵襲轉移的能力。這些結果均提示hr-HPVs與腫瘤的侵襲轉移可能存在著密切的關系。但是關于HPV16 E6和E7在促腫瘤細胞侵襲和轉移過程中的作用及其機制等問題仍不清楚。
人乳腺癌細胞系MCF-7是目前公認的具有低轉移特性的細胞系,并且已證實該細胞系HPV16陰性。因此,本研究以該細胞系為研究對象,建立了穩定高表達HPV16 E6、E7和同時表達E6/E7的乳腺癌細胞株,并通過Transwell實驗進一步探討了HPV16 E6、E7和E6/E7對乳腺癌細胞侵襲能力的影響。通過RT-PCR方法探討HPV16 E6和E7對轉移相關基因MMP-2表達的影響。結果顯示:與MCF-7親本細胞和MCF-7-vect細胞比較,MCF-7-E6、MCF-7-E7和MCF-7-E6/E7細胞穿過基膜的細胞數目明顯增多,并且MMP-2 mRNA表達明顯增加。表明HPV16 E6和E7可能通過誘導MMP-2的表達而促進了MCF-7細胞的侵襲能力。有研究亦證實了HPV16 E6/E7可增強細胞的侵襲和轉移能力[1,10]。
另外,MCF-7-E6細胞、MCF-7-E7細胞和MCF-7-E6/E7細胞中,以MCF-7-E6細胞和MCF-7-E6/E7侵襲能力增強最為顯著,表明HPV16 E6可能在促進腫瘤細胞侵襲和轉移過程中發揮著更為重要的作用。其機制除促進MMP-2的表達之外還可能為:HPV16等hr-HPVs的E6蛋白可通過其C-端PDZ基序與調控細胞連接形成和細胞黏附等相關的PDZ蛋白相互作用,并誘導它們降解,從而引起腫瘤細胞間黏附性降低、失去接觸性抑制并有利于癌細胞侵襲和轉移[11-15]。
綜上所述,本研究初步證實了HPV16 E6和E7穩定高表達可以誘導MMP-2的表達,并促進MCF-7細胞的侵襲能力。從而為設計新的、以HPV16 E6和E7為靶點的治療乳腺癌等HPVs相關腫瘤侵襲和轉移的方案提供重要的科學依據。
[1]Karin H,Jessica M,Frank F,et al.HPV16 E7 oncogene expression in normal human epithelial cells causes molecular changes indicative of an epithelial to mesenchymal transition[J].Virology,2009,391(1):57-63.
[2]Spangle JM,Karl M.The human papillomavirus type 16 E6 oncoprotein activates mTORC1 signaling and increases protein synthesis[J].J Virol,2010,84(18):9398-9407.
[3]Yuri A,Koch WM,Xiao WH,et al.Oral HPV infection before and after treatment for HPV16-positive and negative head and neck squamous cell carcinoma[J].Clin Cancer Res,2008,14(21):7143-7150.
[4]William L,Schlecht NF,Margaret BG.The role of the human papillomavirus in the pathogenesis of schneiderian inverted papillomas:an analytic overview of the evidence[J].Head Neck Pathol,2008,2(2):49-59.
[5]鄭秀惠,李力,郭建新.HPV16 E6E7與C3d3融合基因真核表達質粒的構建及表達[J].重慶醫學,2010,39(1):40-42.
[6]Zhou Y,Pan Y,Zhang S,Increased phosphorylation of p70 S6 kinase is associated with HPV16 infection in cervical cancer and esophageal cancer[J].Br J Cancer,2007,97(2):218-222.
[7]Dreier K,Scheiden R,Lener B,et al.Subcellular localization of the human papillomavirus 16 E7 oncoprotein in CaSki cells and its detection in cervical adenocarcinoma and adenocarcinoma in situ[J].Virology,2011,409(1):54-68.
[8]徐曉英,湯春輝,薛曉玲.高危型HPV、p16、COX-2在宮頸癌中的表達及臨床意義[J].重慶醫學,2011,40(12):1199-1204.
[9]Maёlle S,Sylvain MB,Frédéric M,et al.Analysis of human papillomavirus type 16(HPV16) DNA load and physical state for identification of HPV16-infected women with high-grade lesions or cervical carcinoma[J].J Clin Microbio,2008,46(11):3678-3685.
[10]Akil N,Yasmeen A,Kassab A,et al.High-risk human papillomavirus infections in breast cancer in Syrian women and their association with Id-1 expression:a tissue microarray study[J].Br J Cancer,2008,99(3):404-407.
[11]Storrs CH,Silverstein SJ.PATJ,a tight junction-associated PDZ protein is a novel degradation target of high-risk HPV E6 and the alternatively spliced isoform 18 E6[J].J Virol,2007,81(8):4080-4090.
[12]An,JB,Mo DQ,Liu HR,et al.Inactivation of the CYLD Deubiquitinase by HPV E6 Mediates Hypoxia-Induced NF-κB Activation[J].Cancer Cell,2008,14(5):394-407.
[13]Howie HL,Katzenellenbogen RA,Galloway DA.Papillomavirus E6 proteins[J].Virology,2009,384(2):324-334.
[14]Tungteakkhun SS,Duerksen-Hughes P.Cellular binding partners of the human papillomavirus E6 protein[J].Arch Virol,2008,153(3):397-408.
[15]Jason B,Laimins LA.Persistence of human papillomavirus infections:keys to malignant progression[J].Trends Microbiol,2011,19(1):33-39.