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六味地黃湯相關(guān)苷類單體對小鼠脾淋巴細胞增殖作用的研究

2011-08-11 07:50:14劉繼平蘭洲傅強羅建光馬世平孔令義
中醫(yī)藥信息 2011年5期
關(guān)鍵詞:小鼠

劉繼平,蘭洲,傅強,羅建光,馬世平,孔令義

(1.中國藥科大學(xué),江蘇 南京 210009;2.陜西中醫(yī)學(xué)院,陜西 咸陽 712046)

細胞增殖反應(yīng)是常用的免疫反應(yīng)評價指標(biāo),機體內(nèi)或體外培養(yǎng)的淋巴細胞在受到有絲分裂原等刺激后,可致細胞活化、細胞因子合成、細胞因子受體表達、細胞分化及細胞增殖等細胞行為的變化。由于檢測手段具有可靠性、良好的重復(fù)性及簡便性等特點,故通過測定細胞增殖反應(yīng)來判斷免疫細胞的功能一直得到廣泛的應(yīng)用。免疫調(diào)節(jié)是六味地黃湯重要作用之一,以往研究均是對全方在免疫調(diào)節(jié)方面的研究,有關(guān)其免疫調(diào)節(jié)有效組分研究的報道很少。苷類成分是六味地黃湯方中重要活性成分,本實驗采用脾淋巴細胞增殖反應(yīng),初步評價六味地黃湯中5種代表性苷類成分的免疫活性。

1 材料

1.1 動物

ICR小鼠,體質(zhì)量(20±2)g,清潔級,南通大學(xué)實驗動物中心,合格證號:SCXK(蘇)2008-0010。飼養(yǎng)環(huán)境:中國藥科大學(xué)中藥藥理實驗室,動物分籠飼養(yǎng),保持12h晝夜節(jié)律,室溫(22±1)℃,自由飲水?dāng)z食。

1.2 藥物和試劑

芍藥苷、馬錢苷、莫諾苷、桃葉珊瑚苷、薯蕷皂苷元標(biāo)準(zhǔn)品(中國藥品生物制品檢定所,均用DMSO配成10-2mol/L,微孔濾膜過濾,再用培養(yǎng)基配成 10-5、10-6、10-7mol/L);RPMI- 1640 培養(yǎng)基、小牛血清(JIBCO),MTT、LPS、ConA(Sigma),DMSO(國藥集團化學(xué)試劑公司)。

1.3 主要儀器

NOVAPHTHTM酶標(biāo)儀 (美國Bio-Rad公司);CO2培養(yǎng)箱(Thermo);XD-202倒置顯微鏡(江南);超凈工作臺(Boxun);BS110S電子分析天平(Sartorius);離心機(湘儀);貝克曼高速離心機。

2 方法[1]

2.1 脾淋巴細胞的制備

ICR小鼠脫臼處死,置75%酒精滅菌,取出脾臟置培養(yǎng)皿里,加3ml PBS沖洗,剔除脂肪和結(jié)締組織,棄去PBS,另加入5mL PBS,剪碎脾臟,吸取PBS液,經(jīng)尼龍布(100目)濾網(wǎng)過濾至10mL離心管中,4℃,1 000rpm離心10min,使細胞沉淀,棄去上清液,加入3mL紅細胞裂解液,3min后,離心,棄去上清液,加PBS洗滌2次后,加入RPMI-1640培養(yǎng)液(10%小牛血清)5mL,懸浮脾細胞,作細胞計數(shù)及測定細胞的存活率,并調(diào)整細胞濃度為1×106個/mL。將收獲的淋巴細胞用臺盼藍染色,檢測細胞存活率≥95%,即可用于實驗。以上操作過程,細胞均在0~4℃放置。

2.2 脾淋巴細胞增殖試驗

實驗組有靜息期細胞對照組、各濃度藥物直接刺激組、絲裂原刀豆蛋白(ConA)刺激T細胞組、絲裂原脂多糖(LPS)刺激B細胞組。

實驗時每孔均加入2×106個/mL淋巴細胞100μL。然后實驗組加入不同濃度六味地黃湯苷類單體,對照組加入相同體積的RPMI-1640完全培養(yǎng)液。絲裂原刺激分別加入終濃度為5μg/mL的ConA或10μg/mL的LPS。每個樣本均設(shè)6個復(fù)孔。37℃、5%CO2、飽和濕度下培養(yǎng)44h后加入MTT 20μL使其終濃度為0.5mg/mL,繼續(xù)培養(yǎng)4h。取出,1 500rpm離心10min,棄上清 100μL,再加入 DMSO 100μL 輕微振蕩10min,酶標(biāo)儀490nm波長測每孔OD值。實驗重復(fù)3次。

2.3 統(tǒng)計學(xué)處理

3 結(jié)果

3.1 不同濃度芍藥苷對淋巴細胞增殖作用的影響

10-5M芍藥苷能顯著促進淋巴細胞增殖,對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有明顯的協(xié)同作用,10-7~10-6M芍藥苷對ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞增殖有明顯協(xié)同作用,與對照組比較有顯著性差異(P<0.01,P<0.05)。結(jié)果見表1。

表1 芍藥苷對小鼠T、B淋巴細胞增殖的影響(n=6)

3.2 不同濃度薯蕷皂苷元對淋巴細胞增殖作用的影響

10-6~10-5M薯蕷皂苷元能促進淋巴細胞增殖,對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有協(xié)同作用,10-7M薯蕷皂苷元對ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞增殖有協(xié)同作用,但與對照組比較均無顯著性差異。結(jié)果見表2。

表2 薯蕷皂苷元對小鼠T、B淋巴細胞增殖的影響(n=6)

3.3 不同濃度馬錢苷對淋巴細胞增殖作用的影響

10-7~10-5M馬錢苷能顯著促進淋巴細胞增殖,10-7M馬錢苷對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有顯著協(xié)同作用,隨劑量增加,增殖作用反而降低。結(jié)果見表3。

表3 馬錢苷對小鼠T、B淋巴細胞增殖的影響(n=6)

3.4 不同濃度莫諾苷對淋巴細胞增殖作用的影響

10-7~10-5M莫諾苷能顯著促進淋巴細胞增殖,對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有明顯的協(xié)同作用,對ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞增殖有明顯協(xié)同作用,與對照組比較有顯著性差異(P<0.01)。結(jié)果見表4。

表4 莫諾苷對小鼠T、B淋巴細胞增殖的影響(n=6)

3.5 不同濃度桃葉珊瑚苷對淋巴細胞增殖作用的影響

10-7~10-5M桃葉珊瑚苷基本無促進淋巴細胞增殖作用,10-5M桃葉珊瑚苷對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有明顯的協(xié)同作用,10-7~10-5M桃葉珊瑚苷對ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞增殖有明顯協(xié)同作用,與對照組比較有顯著性差異(P<0.01,P<0.05)。結(jié)果見表5。

表5 桃葉珊瑚苷對小鼠T、B淋巴細胞增殖的影響(n=6)

4 討論

淋巴細胞是機體的重要免疫細胞,淋巴細胞轉(zhuǎn)化實驗是檢測淋巴細胞增殖活性的一種有效的方法,常用于評價藥物對機體免疫功能的影響。ConA可以誘導(dǎo)T淋巴細胞表達IL-2受體,使T淋巴細胞活化。LPS是B細胞的多克隆激活劑,直接刺激B細胞發(fā)生有絲分裂。

六味地黃湯的免疫調(diào)節(jié)是其重要作用之一,脾臟淋巴細胞轉(zhuǎn)化增殖增強是其作用機理之一,以往研究均是對全方在免疫調(diào)節(jié)方面的研究,有關(guān)其免疫調(diào)節(jié)有效組分研究的報道很少,苷類成分是六味地黃方中重要活性部位。芍藥苷具有抗炎、免疫調(diào)節(jié)作用[2-4]。尤其是對自身免疫性疾病的治療有著積極的作用。本實驗中芍藥苷在較高濃度對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有明顯協(xié)同作用,而在低濃度對ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞增殖有明顯的協(xié)同作用。喬善義[5]在研究中發(fā)現(xiàn),莫諾苷具有促進脾細胞增殖作用,而近年來研究主要集中在神經(jīng)保護方面,本實驗發(fā)現(xiàn)莫諾苷能夠顯著促進淋巴細胞增殖,且對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞和ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞均有明顯增殖作用。馬錢苷作為山茱萸中環(huán)烯醚萜類的主要成分,具有免疫調(diào)節(jié)、抗休克等作用。無論在體內(nèi)與體外,適當(dāng)濃度的馬錢子苷能促進淋巴細胞轉(zhuǎn)化,高濃度時則有抑制作用,提示馬錢子苷對免疫反應(yīng)有雙相調(diào)節(jié)作用[6]。趙武述等[7]在研究中也發(fā)現(xiàn),無論是體外還是體內(nèi)實驗,合適濃度的馬錢子苷對淋巴細胞轉(zhuǎn)化、IL-2產(chǎn)生、LAK細胞生成均有促進作用,高濃度時則有抑制作用。本實驗中,馬錢苷僅在10-7M濃度對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有協(xié)同作用,濃度增高反而抑制,與文獻報道基本一致。桃葉珊瑚苷和薯蕷皂苷元未見免疫方面報道,本實驗結(jié)果表明,桃葉珊瑚苷在較高濃度對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有明顯協(xié)同作用,而在各濃度條件下對ConA誘導(dǎo)的T淋巴細胞均有明顯增殖作用;薯蕷皂苷元在10-6~10-5M范圍內(nèi)對LPS誘導(dǎo)的B淋巴細胞增殖有明顯協(xié)同作用。本實驗結(jié)果為進一步深入研究六味地黃湯免疫調(diào)節(jié)作用,尋找高活性、高選擇性免疫調(diào)節(jié)劑打下了基礎(chǔ)。

[1]王敏,劉旭平,張建勤,等.黃芩苷對小鼠T、B淋巴細胞增殖的影響[J].江西醫(yī)學(xué)院學(xué)報,2007,47(6):17 -19.

[2]Tang NY,Liu CH,Hsieh CT,et al.The anti- inflammatory effect of paeoniflorin on cerebral infarction induced by ischemia-reperfusion injury in Sprague - Dawley rats[J].The American journal of Chinese medicine,2010,38(1):51 -64.

[3]Tsuboi H,Hossain K,Akhand AA,et al.Paeoniflorin induces apoptosis of lymphocytes through aredox - linked mechanism[J].J Cell Biochem,2004,93(1):162 -172.

[4]Wu H,Wei W,Song L,et al.Paeoniflorin induced immunetolerance of mesenteric lymph node lymphocytes via enhancing beta 2-adrenergic receptor desensitization in rats with adjuvant arthritis[J].Int Immunopharmacol,2007,7(5):662 -73.

[5]喬善義.六味地黃湯醇溶部位免疫活性成分研究多糖構(gòu)效關(guān)系的初步研究[D].北京:軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院,1999:1-14.

[6]付桂香,李建民,周勇,等.山茱萸總苷抗炎免疫抑制作用及其機理的大鼠實驗研究[J].中華微生物學(xué)和免疫學(xué)雜志,2007,27(4):314-320.

[7]趙武述,張玉琴,趙世萍,等.山茱萸成分的免疫活性研究[J].中草藥,1990,21(3):113 -116.

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