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氣相色譜法檢測干辣椒中的11種農藥殘留量

2011-01-22 00:51:43劉寶圣呂運開郭春海陳瑞春
化學分析計量 2011年3期
關鍵詞:檢測

劉寶圣 呂運開 郭春海 陳瑞春

(河北大學化學與環境科學學院,保定 071002) (河北出入境檢驗檢疫局,石家莊 050051 )

辣椒品種繁多,形狀各異,其栽培具有極強的生長適應性,許多國家和地區皆大量種植。由于辣椒在生長或儲藏過程中經常會出現病蟲害,尤其對于干辣椒,由于不少農戶忽視農藥的正確、合理使用,農藥污染問題經常發生,毒死蜱、三氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、氰戊菊酯殘留量時有超標現象。而我國和歐盟、美國、日本、韓國等國家或地區,出于維護本國經濟利益和保護人們健康,相繼對進口辣椒及制品中的幾種農藥殘留量等衛生指標提出了要求,規定的限量范圍為0.2~30 mg/kg。

為有效監控各類農藥在辣椒及其制品等生產中的合理使用,開展農藥殘留分析[1,2]以及相關樣品前處理技術[3,4]研究非常必要。農藥殘留的檢測方法有很多報道,但大多是水果、蔬菜中的殘留分析[5]。干辣椒的基質復雜,盡管電子捕獲檢測器(ECD)選擇性很強,但由于檢測的組分限量很低,當使用有機溶劑提取時,如果凈化方法選擇不當,色素等雜質干擾嚴重,極易污染儀器,給檢測結果的判定帶來影響。農藥檢測的凈化方法有很多,如氟羅里硅土/活性炭混合柱層析法[6,7]、氟羅里硅土固相萃取柱法[8-10]、中性氧化鋁柱法[11]、硅藻土凈化法、凝膠滲透色譜凈化法[12]、基質分散技術凈化法等[13]。這些凈化方法中,有些步驟略顯繁瑣,有些僅適用于蔬菜、水果中部分農藥殘留的檢測,或者是用質譜法檢測,對色素較重的干辣椒等基質的凈化效果不理想。經查詢辣椒中百菌清、毒死蜱、聯苯菊酯等11種農藥殘留同時檢測的方法未見報道。筆者采用丙酮提取,正己烷液液萃取加硅膠60 SPE柱凈化[14],GC-ECD檢測,可以滿足干辣椒及其制品中百菌清、毒死蜱、聯苯菊酯、甲氰菊酯、氯氟氰菊酯、氯菊酯、氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、氟胺氰菊酯[15]、氰戊菊酯、溴氰菊酯等殘留的檢測,方法快速、簡便,測定結果準確。

1 實驗部分

1.1 主要儀器與試劑

氣相色譜儀:7890A型,配有電子捕獲檢測器(ECD),美國Agilent公司;

旋轉蒸發儀:Laborota 4000型,德國Heidolph公司;

氮氣濃縮儀:TurboVapTMLv,美國Caliper公司;

平板搖床:S-02型,英國 Stuart Scientific公司;

硅膠60:63~200 μm,德國Fluka公司;

SPE空管:6 mL,北京艾杰爾科技有限公司;

Florisil SPE柱:1 g,6 mL,北京迪馬科技有限公司;

丙酮、正己烷、二氯甲烷:農殘級,北京迪馬科技有限公司;

無水硫酸鈉:分析純,北京化工廠;

百菌清、毒死蜱、聯苯菊酯、甲氰菊酯、氯氟氰菊酯、氯菊酯、氟氯氰菊酯、氯氰菊酯、氟胺氰菊酯、氰戊菊酯、溴氰菊酯標準溶液:濃度均為100 μg/mL,農業部環境保護科研監測所。

1.2 硅膠60 SPE柱的制備

在放有5.0 mL正己烷的SPE空管中,依次加入1.0 g經 130℃活化2 h的硅膠60,無水硫酸鈉。流速控制在1滴/秒,棄去正己烷,備用。

1.3 標準溶液配制

分別準確量取百菌清等11種農藥標準溶液1.0 mL于100 mL容量瓶中,用正己烷定容至刻度,備用。使用時配制成所需濃度。

1.4 樣品處理

稱取2.5 g(準確至0.01 g)已絞碎混勻的辣椒干樣品于100 mL具塞錐形瓶中,加入適量水潤濕,再加入20 mL丙酮,振蕩30 min,過濾并轉移到250 mL分液漏斗中,用丙酮洗滌錐形瓶,并將洗滌液一并轉移至上述分液漏斗。加入30 mL正己烷、25 mL硫酸鈉水溶液(20 g/L),振瑤1.5 min,靜置分層,棄去水相,正己烷層經過盛有無水硫酸鈉的漏斗過濾到雞心瓶中,用正己烷潤洗分液漏斗兩次,一并轉入雞心瓶;于45℃下在旋轉蒸發儀上濃縮至干,用5 mL正己烷溶解定容。

1.5 樣品凈化

準確移取上述雞心瓶中溶液1.0 mL,轉入硅膠60柱中,用5.0 mL正己烷-二氯甲烷(體積比4∶1)溶液淋洗,棄去淋洗液,再用6.0 mL二氯甲烷洗脫,將洗脫液吹干,用正己烷定容至2.0 mL,待測。

1.6 儀器分析條件

色譜柱:彈性石英毛細管柱DB-608(30 m× 0.32 mm,0.5 μm),美國Agilent公司;進樣口溫度:250℃;檢測器溫度:280℃;柱箱溫度:150℃保持2 min,以8℃/min升至250℃,保持4 min,再以8℃/min升至270℃,保持18 min;載氣:氮氣,流速為3.5 mL/min;進樣方式:不分流;進樣量:2 μL。

2 結果與討論

2.1 稱樣量的選擇

分別稱取1.00、2.50、5.00 g辣椒樣品做空白實驗。當稱樣量為5.00 g時,色譜圖的雜質峰會產生干擾;稱取1.00 g時,稀釋倍數過大,會影響檢測的定量限。綜合考慮凈化效果、氣相色譜法基體干擾情況以及滿足定量限要求等因素,選擇稱取2.50 g樣品進行實驗。

2.2 液液萃取溶劑的選擇

本實驗涉及的農藥脂溶性較強,采用液液分配萃取法,可洗去樣品中一部分水溶性雜質,而選擇合適的有機萃取溶劑,既可以滿足回收率要求又不帶入更多的雜質。在添加水平為1.00 mg/kg時,分別采用石油醚和正己烷作為液液萃取溶劑,每種溶劑分別使用 30 mL萃取一次與用40 mL分兩次萃取,所得到的回收率結果均可滿足要求,考慮到快速簡便,選擇30 mL萃取一次;石油醚較正己烷揮發性強,因此選用正己烷作為萃取溶劑。

2.3 凈化柱的選擇

分別選擇氟羅里硅土和硅膠60 SPE柱凈化,前者上樣后需直接收集,否則目標化合物會損失,而且干擾很大,組分被洗脫的同時,也把過多的雜質和色素帶到洗脫液中;選擇硅膠60,用正己烷條件化,正己烷-二氯甲烷(體積比4∶1,)溶液淋洗后,大部分色素隨淋洗液流出,排除了基體中大量雜質的干擾,回收率滿足要求。各組分的濃度均為0.005 μg/mL的混合標準溶液的色譜圖見圖1,添加0.02 mg/kg標準溶液的干辣椒樣品過硅膠60柱所得氣相色譜圖見圖2。試驗結果表明,凈化后不但效果好,而且還可以降低樣品雜質對儀器進樣口、色譜柱、檢測器的污染。

1—百菌清; 2—毒死蜱; 3—聯苯菊酯; 4—甲氰菊酯;5—氯氟氰菊酯; 6—氯菊酯; 7—氟氯氰菊酯; 8—氯氰菊酯;9—氟胺氰菊酯; 10—氰戊菊酯; 11—溴氰菊酯圖1 標準溶液氣相色譜圖

1—百菌清; 2—毒死蜱; 3—聯苯菊酯; 4—甲氰菊酯;5—氯氟氰菊酯; 6—氯菊酯; 7—氟氯氰菊酯; 8—氯氰菊酯;9—氟胺氰菊酯; 10—氰戊菊酯; 11—溴氰菊酯 圖2 添加0.02 mg/kg標準溶液的干辣椒樣品氣相色譜圖

2.4 洗脫溶劑量的確定

將1.0 mL濃度為1.0 μg/ mL干辣椒基質的標準溶液,在硅膠60柱上進行梯度洗脫,每2 mL洗脫液收集一次,定容至1 mL,總共收集4次,當二氯甲烷洗脫到6 mL時,各組分可從凈化柱上全部被洗脫下來,所以選用6 mL洗脫液,這樣既節省了時間,又減少了洗脫出雜質的量。

2.5 柱箱溫度的選擇

采用多階程序升溫的條件來進行樣品色譜分離,可以將一些低沸點雜質峰與目標化合物分開,消除了基質峰對化合物分析的干擾,提高了定性和定量分析的準確度。

2.6 線性方程和定量限

分別選擇0.005、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μg/mL 7個水平的混合標準工作液進樣分析,運用儀器的“峰加和”功能對有異構體的化合物進行定量分析,每種化合物的線性方程、相關系數見表1。以被測組分的信號值大于基線平均噪音10倍時的濃度為定量限(考慮了整個檢測過程),各化合物的定量限列于表1。

表1 線性方程、相關系數和定量限

注:Y—峰面積,X—溶液濃度。

2.7 回收試驗及精密度試驗

在選擇的實驗條件下,分別在空白干辣椒樣品中添加絕對量為0.05、0.1、0.5 μg標準物質的混合溶液,得到相當于樣品質量分數為0.02、0.04、0.2 mg/kg的3個添加樣品,對每個濃度平行測定6次,回收率和相對標準偏差列于表1。由此可見,精密度和準確度滿足檢測要求。

表2 回收及精密度試驗結果

3 結語

參照有關文獻,在SPE凈化柱和色譜條件的選擇上,以及被測組分的種類等方面進行了一些改進。經過大量干辣椒樣品實驗驗證,此方法具有操作簡便,分離效率和檢測靈敏度高,線性范圍寬等優點;降低了對色譜柱、氣化室和檢測器維護成本,提供了辣椒干及其制品中的11種有害農藥的檢測方法。該法節約檢測成本、易于推廣、定量準確。

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