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復元膠囊對大鼠實驗性骨關節炎軟骨IL-6、bFGF的干預研究

2010-09-13 01:36:22梁曉芳李榮亨重慶醫科大學附屬第一醫院中西醫結合科重慶市400016
中國藥房 2010年35期
關鍵詞:骨關節炎劑量模型

梁曉芳,李榮亨,唐 靜(重慶醫科大學附屬第一醫院中西醫結合科,重慶市 400016)

復元膠囊對大鼠實驗性骨關節炎軟骨IL-6、bFGF的干預研究

梁曉芳*,李榮亨#,唐 靜(重慶醫科大學附屬第一醫院中西醫結合科,重慶市 400016)

目的:研究復元膠囊對大鼠實驗性骨關節炎(OA)軟骨白細胞介素-6(IL-6)和堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)表達的影響。方法:Hulth法復制大鼠OA模型,隨機分為對照、模型、四環素和復元膠囊高、中、低劑量組。灌胃給藥,每天1次,連續10周。10周后取軟骨標本,行大體觀察、Mankin’s評分及免疫組化測定軟骨中IL-6、bFGF的表達水平,并將IL-6、bFGF的表達水平與Mankin’s評分指數進行Pearson相關分析。結果:復元膠囊各組關節軟骨Mankin’s評分、IL-6表達水平均低于模型組(P<0.01或P<0.05),bFGF表達水平均高于模型組(P<0.01);復元膠囊各劑量組Mankin’s評分差異具有顯著性(P<0.05),IL-6表達水平與關節病理改變的Mankin’s評分指數呈正相關(P<0.01),bFGF表達水平與關節病理改變的Mankin’s評分無明顯相關。結論:復元膠囊能下調大鼠OA軟骨IL-6的表達,上調bFGF的表達,其作用呈劑量依賴性。高劑量復元膠囊抗大鼠OA作用與四環素相當。

骨關節炎;復元膠囊;白細胞介素-6;堿性成纖維細胞生長因子

骨關節炎(Osteoarthritis,OA)是中老年人最常見的關節疾病。OA的產生,是一系列生物化學及生物力學因素共同作用的結果,最終導致軟骨基質的降解。軟骨基質降解和修復失衡的始發路徑由細胞因子及化學增活素介導。在體及體外實驗研究均表明,阻斷這些細胞因子及化學增活素可消除其效應。在OA患者軟骨組織及關節滑液中,白細胞介素-6(IL-6)含量明顯升高,并呈隨病情加劇而升高的趨勢[1]。堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)是目前已知最強的促細胞生長因子,可刺激成軟骨細胞增殖和分化,并具有反分化作用,能抑制軟骨鈣化。研究表明,bFGF參與膠原及軟骨細胞的再生[2],在OA的軟骨及基質修復中發揮重要作用。本文主要研究復元膠囊(Fyc)對大鼠實驗性OA軟骨IL-6、bFGF的影響,探討其抗OA的作用機制。

1 材料

1.1 儀器

HWS-40B型恒溫水浴箱(江蘇太倉實驗設備廠);MDF 328型低溫冰箱(日本三洋公司);BX-50型生物顯微鏡(日本Olympus公司);HPS-3C型pH計(上海雷磁儀器廠)。

1.2 試藥

Fyc(重慶希爾安藥業公司,批號:20090203,規格:每粒0.41 g);四環素(太極集團西南藥業股份有限公司,批號:20090412,規格:每片250 mg);大鼠IL-6及bFGF免疫組化試劑盒(北京博奧森生物技術有限公司);青霉素(華北制藥股份有限公司,批號:D0809103)。

1.3 動物

SD清潔級大鼠60只,♂,體質量(300±10)g,由重慶醫科大學實驗動物中心提供(動物合格證號:SCXY(渝)20020003)。

2 方法

2.1 模型復制及分組、給藥

隨機選10只SD大鼠為對照組,行皮膚切開后縫合;剩余50只以Hulth法[3]復制模型。術后予iv青霉素8×104IU·kg-1,每天1次,連續7 d。術后1周將模型大鼠隨機分為模型、四環素(50 mg·kg-1)和Fyc高、中、低劑量(2 229.9、743.3、371.65 mg·kg-1)組,ig 給藥,每天1次,且每天驅趕大鼠跑步30 min,連續10周。

2.2 觀察指標

2.2.1 大體觀察關節軟骨 軟骨標本按以下原則評分:關節面光整,色澤正常(0分);關節面粗糙,有裂隙,色澤灰暗(1分);關節面糜爛,軟骨缺損達軟骨表中層(2分);關節面潰瘍形成,軟骨缺損達軟骨深層(3分);軟骨剝脫,軟骨下骨暴露(4分)。

2.2.2 光鏡觀察關節軟骨 取股骨內髁及脛骨平臺軟骨標本,4%多聚甲醛固定,10%EDTA脫鈣2周,常規石蠟包埋,切片,HE染色,依據Mankin’s標準評分。

2.2.3 免疫組化檢測IL-6、bFGF蛋白表達 IL-6、bFGF表達按免疫組化試劑盒說明書操作。圖像分析:每個標本取4張切片,每張切片隨機取5個視野,用北航醫學圖像分析管理系統測定陽性細胞的百分數。

2.3 統計學方法

3 結果

3.1 大體觀察結果

對照組軟骨面光滑,呈淡藍色。模型及各用藥組軟骨面粗燥,呈淡黃色毛刺狀,以模型組最突出,關節腔積液,滑膜顯著增生,軟骨面可見裂紋、糜爛及潰瘍形成,部分潰瘍深達軟骨下骨。Fyc各劑量組及四環素組損傷較模型組輕。各組關節軟骨大體評分結果見表1。

3.2 光鏡觀察結果及Mankin’s評分

對照組關節軟骨結構正常,細胞排列整齊,潮線完整。模型組軟骨染色不均,裂隙多,部分深達鈣化帶,細胞數目減少,排列紊亂,見多重潮線。四環素及Fyc各劑量組Mankin’s評分較模型組低。Mankin’s評分結果見表1。

表1 各組關節軟骨大體及Mankin’s評分(±s)Tab 1 Macroscopic grading score and Mankin’s score in each grou(p±s)

表1 各組關節軟骨大體及Mankin’s評分(±s)Tab 1 Macroscopic grading score and Mankin’s score in each grou(p±s)

與對照組比較:*P<0.01;與模型組比較:#P<0.05,##P<0.01vs.control group:*P<0.01;vs.model group:#P<0.05,##P<0.01

Mankin’s評分0.2±0.421 8.4±0.966*4.2±0.918##3.4±0.966##5.9±0.994#7.4±1.173#n組別對照組模型組四環素組Fyc高劑量組Fyc中劑量組Fyc低劑量組10 10 10 10 10 10大體評分0 3.4±0.699*1.9±0.567##1.7±0.674##2.6±0.699#2.9±0.737

3.3 軟骨組織中IL-6和bFGF的表達

3.3.1 IL-6的表達 模型組全層軟骨中IL-6表達較對照組顯著升高(P<0.01),各用藥組IL-6表達顯著低于模型組(P<0.01);Fyc高劑量組與四環素組IL-6表達無顯著性差異(P>0.05)。各組關節軟骨IL-6表達水平比較見表2。

3.3.2 bFGF的表達 對照組軟骨bFGF均勻分布,模型組軟骨bFGF表達較對照組高(P<0.01),各給藥組bFGF表達顯著高于模型組(P<0.01);Fyc高劑量組bFGF表達高于四環素組(P<0.05)。各組關節軟骨bFGF表達水平比較見表2。

表2 各組關節軟骨IL-6、bFGF表達水平比較(±s)Tab 2 Expression of IL-6 and bFGF in each group(±s)

表2 各組關節軟骨IL-6、bFGF表達水平比較(±s)Tab 2 Expression of IL-6 and bFGF in each group(±s)

與對照組比較:*P<0.01;與模型組比較:#P<0.01vs.control group:*P<0.01;vs.model group:#P<0.01

n組別對照組模型組四環素組Fyc高劑量組Fyc中劑量組Fyc低劑量組10 10 10 10 10 10 IL-6表達0.193±0.015 0.336±0.028*0.250±0.016#0.259±0.014#0.288±0.024#0.299±0.015#bFGF表達0.558±0.018 0.595±0.024*0.685±0.027#0.738±0.022#0.679±0.024#0.632±0.019#

3.3.3 Pearson相關分析 (1)IL-6與Mankin’s評分:兩者相關系數r=0.963 8,P<0.01,呈顯著正相關;(2)bFGF 與Mankin’s評分:兩者相關系數r=0.154,P>0.05,無顯著相關。IL-6、bFGF表達率與Mankin's評分的相關性見圖1。

4 討論

OA屬于中醫“痹證”、“骨痹”范疇,其病因病機概括起來,一為因虛致病:肝腎精虛,無以主骨養筋,筋骨失養,風寒濕邪入侵而為痹;二為因病致虛:跌仆閃挫,筋骨勞損,致氣虛血瘀,久則肝腎虧損,氣血不調,脈絡失和而為痹。本病為本虛標實之證,Fyc配伍淫羊霍、鹿角膠、黃芪、川芎、丹參、三七粉等中藥,以補腎益氣、活血化瘀為法,標本兼治,為臨床治療OA的有效復方。前期研究表明,Fyc可減輕軟骨病變,對軟骨退變有防治作用。

現代醫學認為,OA是多因素共同作用下,軟骨細胞、細胞外基質及軟骨下骨三者間分解和合成代謝失衡的結果。關節軟骨退化及破壞是OA的主要病理特征。許多細胞因子及蛋白酶參與了關節軟骨降解的發生發展。IL-6是一種多效細胞因子,研究發現,IL-6誘導關節軟骨的降解,在骨重建過程中調控骨吸收及生成之間的平衡、誘導MMP-13表達,促進軟骨基質中二型膠原的降解[3]。在骨關節炎軟骨中IL-6表達顯著增加;對體外培養的兔軟骨細胞,IL-6可抑制bFGF誘導的細胞集落形成,抑制軟骨基質蛋白多糖的合成,并顯著增強IL-1β誘導的蛋白多糖降解[4],提示IL-6是一個軟骨細胞增生及關節軟骨代謝的負向調節劑。

此外,OA同軟骨細胞凋亡與增殖失衡關系密切。大量研究表明,OA患者有典型的軟骨細胞凋亡,凋亡數量與OA分級顯著相關[5]。bFGF對軟骨細胞既是絲裂原又是形態發生因子,對培養的關節軟骨細胞增殖及基質代謝有促進作用,隨培養基中bFGF的濃度增加,體外培養的軟骨細胞DNA含量明顯增加。當軟骨細胞生長、分裂活躍時,只有存在bFGF,才能維持軟骨細胞的表現型。bFGF甚至可將已成熟或轉化為成纖維細胞的細胞反分化為軟骨細胞[6]。研究表明,關節軟骨細胞bFGF-mRNA在兔實驗性OA關節軟骨原位表達,上調bFGF-mRNA表達,可減輕軟骨病變[7]。提示bFGF與OA關系密切。

近年研究發現,四環素類抗生素可抑制基質金屬蛋白酶、抑制一氧化氮生成,具有抗炎、免疫調節作用,并可作用于細胞因子網絡,其對OA軟骨的多途徑保護作用已得到證實[8]。本研究采取四環素作為陽性對照,結果發現,IL-6表達與軟骨病變相平行,呈顯著正相關,Fyc及四環素治療可降低IL-6表達、減輕軟骨病變,提示IL-6可作為OA監測病情嚴重程度的指標及治療的作用靶點。Fyc高、中、低劑量組之間,軟骨病變的Mankin’s評分差異具有顯著性(P<0.05),隨Fyc劑量增加,大鼠OA病變減輕,提示其抗OA作用呈劑量依賴性。Fyc高劑量組bFGF表達顯著高于四環素組(P<0.05),而二者軟骨病變、IL-6表達無顯著差異,Fyc高劑量組關節軟骨局部更高的bFGF水平未產生更強的促細胞增生及基質修復效果,可能提示bFGF對軟骨細胞的效應受多種因素影響,在OA治療中,單純增加病變關節局部bFGF水平所獲得的益處有一定的限度,不能有力阻止疾病進展。骨關節炎為損傷-修復性疾病,軟骨基質受損丟失、軟骨細胞凋亡及病理性過度修復增生同時存在,治療中應兩個方面同時兼顧。

綜上所述,IL-6及bFGF與OA密切相關,可作為治療的作用靶點。Fyc及四環素通過降低病變局部IL-6表達,上調bFGF表達而減輕OA軟骨基質降解,促進損傷修復,可能是其治療OA的重要機制之一。Fyc抗OA作用呈劑量依賴性,其作為一個療效肯定、無明顯不良反應的抗OA藥物,值得進一步臨床研究。

[1]王玉彬,陳安民,郭風勁,等.骨關節炎患者軟骨組織中TNF-α、TGF-β、IL-6、IL-9的表達變化及意義[J].山東醫藥,2007,47(12):11.

[2]趙承斌,陳 福.rhBMP和bFGF在大鼠關節軟骨損傷后的修復作用[J].哈爾濱醫科大學學報,2003,37(1):25.

[3]Legendre F,Dudhia J,Pujol JP,et al.JAK/STAT but not ERK1/ERK2pathway mediates interleukin(IL)-6/soluble IL-6R down-regulation of typeⅡ collagen,aggrec-an core,and link protein transcription in articular chondrocytes:association with a down-regulation of SOX9expression[J].J Biol Chem,2003,278(5):2 903.

[4]Jikko A,Wakisaka T,Lwamoto M,et al.Effects of interleukin-6 on proliferation and proteoglycan metabolism in articular chondrocyte cultures[J].Cell Biol Int,1998,22(9~10):615.

[5]Sharif M,Whitehouse A,Sharman P,et al.Increased apoptosis in human osteoarthritis cartilage corresponds to reduced cell density and expression of caspase-3[J].Arthritis Rheum,2004,50(2):507.

[6]Kato Y,Lwamoto M.Fibroblast growth factor is an inhibitor of chondrencyte terminal differentiation[J].J Biol Chem,1990,265(10):5 903.

[7]唐 勇,姜 杰,孟 輝,等.補腎益氣活血方對兔實驗性膝骨關節炎軟骨細胞bFGF-mRNA表達的影響[J].云南中醫學院學報,2005,28(4):24.

[8]王 君,何炳書,李笑萍.四環素對負重所致兔膝骨關節損傷的保護作用[J].中國老年學雜志,2007,1(27):126.

Effects of Fuyuan Capsule on the Expression of Interleukin-6 and Basic Fibroblast Growth Factor in Rats with Experimental Osteoarthritis

LIANG Xiao-fang,LI Rong-heng,TANG Jing(Dept.of Integrated Traditional Chinese and Western Medicine,The First Affiliated Hospital of Chongqing Medical University,Chongqing 400016,China)

OBJECTIVE:To observe the effects of Fuyuan capsule on the expression of interleukin-6(IL-6)and basic fibroblast growth factor(bFGF)in rats with experimental osteoarthritis(OA).METHODS:OA models were induced by Hulth technique.Model rats were randomly divided into six groups:control group,model group,tetracycline group,Fuyuan capsule high-dose,medium-dose and low-dose groups.Those groups were given relevant drug via i.g.gtt once a day for 10 weeks.Articular cartilages were obtained ten weeks later.Histomorphology of cartilage were evaluated according to macroscopic grading score and Mankin’s score was conducted.Expression of IL-6 and bFGF in articular cartilage were detected by immunochistochemistry technology.Pearson correlation analysis was carried out to determine Mankin’s index and the expression of IL-6 and bFGF in articular cartilage.RESULTS:Mankin’s score and the expression of IL-6 in Fuyuan capsule groups were lower than in model group(P<0.01 orP<0.05);the expression level of bFGF in Fuyuan capsule groups were higher than in model group(P<0.01);there was significant difference in Mankin’s score among Fuyuan capsule groups(P<0.05).Pearson correlation analysis showed that the expression of IL-6 in the articular cartilage was positively correlated with the pathological change of joint(P<0.01).There was no significant correlation between the expression of bFGF in the articular cartilage and Mankin’s score.CONCLUSION:Fuyuan capsule can down-regulate the expression of IL-6 and up-regulate the expression of bFGF in dose-dependent manner.The treatment effect of high-dose Fuyuan capsule is identical to tetracycline in the treatment of OA.

Osteoarthritis;Fuyuan capsule;Interleukin-6;Basic fibroblast growth factor

R255.82;R97

A

1001-0408(2010)35-3287-03

2010-05-21

2010-06-08)

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