李 強,唐 微,石園園,李嘉惠,李艷紅,劉 悅(鄖陽醫學院,湖北十堰442000)
蒽酮-硫酸法和3,5-二硝基水楊酸法測定杜仲水提液多糖含量
李 強,唐 微,石園園,李嘉惠,李艷紅,劉 悅(鄖陽醫學院,湖北十堰442000)
采用蒽酮-硫酸法測定杜仲水提液中總糖含量,3,5-二硝基水楊酸法測定杜仲水提液中單糖含量,多糖含量為總糖與還原糖含量之差。該法簡便、快速、準確、穩定,為其他材料水提液中多糖定量提供參考。
蒽酮-硫酸法,3,5-二硝基水楊酸法,杜仲,水提液,多糖
Abstract:The concentration of total sugar in water extraction from Eucommia ulmoides Oliver was determined by anthrone-sulfuric method,while the concentration of reducing sugar was determined by DNS method,however the concentration of polysaccharide depended on their concentration difference.The results showed that the methods were convenient,rapid,accurate and stable.It provided some references for determination of polysaccharide in water extraction from the other meterials.
Key words:anthrone-sulfuric method;3,5-dinitrosalicylic acid method;Eucommia ulmoides Oliver;water extraction;polysaccharide
多糖是由多個單糖分子脫水、縮合所組成的高分子化合物,廣泛分布于動物、植物和微生物中,是構成生命活動的四大基本物質之一,具有抗腫瘤、增強免疫、抗炎癥、抗病毒、抗凝血、降血糖、抗衰老等作用[1]。近年來,多糖已成為保健食品和醫藥行業關注的熱點。多糖提取工藝的優化是多糖產品研究與開發的重要環節。多糖提取工藝有溶劑浸提法、酶法、超聲波輔助提取法、微波輔助提取法、超臨界流體萃取法等[2]。對多糖提取工藝進行研究時,需要對不同工藝條件下水提液多糖含量進行測定,以多糖得率為指標確定最優提取工藝。為避免單糖影響多糖得率,一般對水提液進行醇沉,溶解后進行多糖定量。若直接對水提液進行多糖測定可簡化實驗流程。受原材料處理、溶液pH、水提溫度等因素影響,水提液中可能存在單糖干擾,采用蒽酮-硫酸法、苯酚-硫酸法只能測定總糖含量。3,5-二硝基水楊酸法(DNS法)[3]可測定多糖水提液的總糖和還原糖,多糖含量以總糖和還原糖之差表示,能去除單糖干擾,但制備總糖試液需濃HCl水解樣品,較費時,繁瑣,且浪費樣品。本實驗以杜仲為原料,采用蒽酮-硫酸法和DNS法分別測定杜仲水提液中總糖和還原糖含量,以總糖和還原糖之差表示多糖含量,并進行方法學考察。
杜仲 購于十堰市中藥材公司,產地湖北;葡萄糖 上海化學試劑分裝廠;蒽酮 上海試劑一廠;3,5-二硝基水楊酸 湖州市菱湖望菱試劑廠;其他試劑 為國產分析純。
MP120-2型電子天平 上海良平儀器儀表有限公司;HH·SY11-Ni型電熱恒溫水浴鍋 北京市長風儀器儀表公司;722S型可見光分光光度計 上海精密科學儀器有限公司。
1.2.1 葡萄糖標準溶液的配制 精確稱取烘干至恒重的葡萄糖0.100g,用蒸餾水溶解并定容至1000mL,得濃度為100mg/L的葡萄糖標準溶液,如法配制濃度為1000mg/L的葡萄糖標準溶液。
1.2.2 蒽酮試劑的配制 精確稱取蒽酮2.000g,用98%濃硫酸溶解并定容至1000mL。
1.2.3 DNS試劑的配制 精確稱取6.5g 3,5-二硝基水楊酸溶于少量熱水,移入1000mL容量瓶,加入2mol/L氫氧化鈉溶液325mL,再加入丙三醇45g,搖勻,定容至1000mL。
1.3.1 杜仲水提液的制備 杜仲烘干,粉碎,過40目篩,加入15倍85%乙醇,82℃回流脫脂2h,真空抽濾并用85%乙醇沖洗6次,烘干備用。精確稱取備用杜仲粉40g,加入15倍水,90℃提取2h得到杜仲水提液。
1.3.2 總糖和還原糖供試液的制備 取一定量杜仲水提液準確稀釋30倍,稀釋液作為總糖供試液。未稀釋杜仲水提液作為還原糖供試液。
1.3.3 總糖標準曲線的制作 采用蒽酮-硫酸法[4]。精確量取 0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mL 葡萄糖標準液(100mg/L)于6支試管中,再分別加入蒸餾水至總體積為1mL,搖勻后分別加入5mL蒽酮試劑,混勻后置于沸水浴中加熱6min,取出冷卻至室溫,以空白管為對照,在620nm波長處測定吸光度。以吸光度為橫坐標,葡萄糖濃度為縱坐標,繪制標準曲線。
1.3.4 還原糖標準曲線的制作 采用DNS法[5]。分別精密吸取 0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4mL 葡萄糖標準液(1000mg/L),加入8個25mL容量瓶中,加水至總體積為2.5mL,再分別加入3mL DNS試劑,混勻后置于沸水浴中加熱5min,取出后立即冷卻至室溫,加水定容至25mL,搖勻后,以空白管為對照,在540nm處測定吸光度。以吸光度為橫坐標,葡萄糖濃度為縱坐標,繪制標準曲線。
1.3.5 多糖含量計算 多糖含量=總糖含量-還原糖含量
1.3.6 精密度實驗 取總糖和還原糖供試液6份各1mL,分別按1.3.3項和1.3.4項下方法操作,測定吸光度,考察蒽酮-硫酸法和DNS法的精密度。
1.3.7 穩定性實驗 取總糖供試液1mL,按1.3.3項下方法操作,在 0、10、20、30、60、90min 測定吸光度,考察蒽酮-硫酸法穩定性。取還原糖供試液1mL,按1.3.4 項下方法操作,在0、10、20、30、40、50、60、90min測定吸光度,考察DNS法穩定性。
1.3.8 加樣回收率實驗 精密吸取總糖含量為53.72mg/L的杜仲水提液6份各0.5mL,各精密加入100mg/L標準葡萄糖液0.5 mL,按1.3.3項下方法操作,測定吸光度并計算蒽酮-硫酸法回收率。精密吸取還原糖濃度為596.40mg/L的杜仲水提液6份各0.6mL,各精密加入1000mg/L標準葡萄糖液0.6mL,按1.3.4項下方法操作,測定吸光度并計算DNS法回收率。
1.3.9 杜仲水提液多糖含量測定 取6份杜仲水提液,按1.3.3項和1.3.4項下方法操作,測定吸光度代入相應標準曲線回歸方程,以1.3.5項下方法計算水提液多糖含量。
總糖標準曲線見圖1,線性回歸方程為:y=192.56x-0.3867,R2=0.9999,說明葡萄糖濃度在20~100mg/L范圍內線性良好。
還原糖標準曲線見圖2,線性回歸方程為:y=4326.2x+101.01,R2=0.9997,說明葡萄糖濃度在200~1400mg/L范圍內線性良好。

圖1 總糖標準曲線

圖2 還原糖標準曲線
結果見表1和表2,表明蒽酮-硫酸法測定總糖和DNS法測定還原糖精密度良好。

表1 蒽酮-硫酸法測定總糖精密度實驗結果

表2 DNS法測定還原糖精密度實驗結果
結果見表3和表4,表明蒽酮-硫酸法測定總糖顯色在90min內較穩定,DNS法測定還原糖顯色在30min內較穩定。

表3 蒽酮-硫酸法測定總糖穩定性實驗結果

表4 DNS法測定還原糖穩定性實驗結果
結果見表5和表6,表明蒽酮-硫酸法測定總糖和DNS法測定還原糖加樣回收率較好。

表5 蒽酮-硫酸法測定總糖加樣回收率實驗結果

表6 DNS法測定還原糖加樣回收率實驗結果

表7 杜仲水提液多糖含量測定實驗結果
結果見表7,表明采用蒽酮-硫酸法和DNS法測定杜仲水提液中多糖結果穩定、可靠。
杜仲經乙醇回流預處理,水提液中仍有大量單糖,本實驗用蒽酮-硫酸法和DNS法分別測定水提液中總糖和還原糖含量,多糖含量為總糖與還原糖含量差值,排除了單糖干擾,測得準確的多糖含量。此法簡便、快速、準確、穩定,適于杜仲水提液多糖定量,為其他材料水提液多糖定量提供參考。
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Determination of polysaccharide in water extraction from Eucommia u/moides Oliver by 3,5-dinitrosalicylic acid(DNS)method and anthrone-sulfuric method
LI Qiang,TANG Wei,SHI Yuan-yuan,LI Jia-hui,LI Yan-hong,LIU Yue
(Yunyang Medical College,Shiyan 442000,China)
TS207.3
A
1002-0306(2010)10-0370-03
2009-11-10
李強(1979-),男,碩士,講師,主要從事生物活性成分研究?;痦椖浚亨y陽醫學院科研基金資助項目(2006QDJ06)。