燕窩對ConA刺激下大鼠淋巴細胞增殖的增效作用

侯 雁，冼小敏，林潔茹，賴小平，陳建南

（廣州中醫(yī)藥大學中藥學院，廣東廣州 510405）

燕窩（Ediblebird'snest,EBN）是指雨燕科（Apodidae）若干種金絲燕單獨使用唾液分泌物或黏合羽毛、植被所筑的巢窩。據(jù)曹炳章的《燕窩考》中記載，燕窩能“養(yǎng)胃液，滋肺陰，生津益血，潤燥澤枯，壯陽益氣，和中開胃，填精補髓，止咳化痰”，現(xiàn)代多認為燕窩具有免疫促進作用[1]。為此，本文探討了不同品種燕窩及其偽品對ConA刺激大鼠淋巴細胞轉化的增效作用。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

原燕窩（白燕窩半加工品）、白燕窩、黃燕窩、血燕窩、即食燕窩均由新加坡錦興公司提供，經(jīng)本實驗室采用分子生物學技術鑒定為爪哇金絲燕產(chǎn)燕窩[2]；懷集燕窩來自廣東省懷集縣，同法鑒定為小白腰雨燕窩；草燕窩產(chǎn)自菲律賓，由新加坡菲利公司提供。市售燕窩經(jīng)mtDNA序列測定[2]以及SDS-PAGE電泳圖譜鑒定為偽品；而燕窩的常見偽品豬皮、明膠則購自傳統(tǒng)市場。

1.2 實驗動物

SPF 級 SD 大鼠 5只，4~6周齡，雄性，體重（190±10）g，由廣東省實驗動物中心提供。

1.3 主要試劑

RPMI-1640干粉，廣州合達生物有限公司；伴刀豆蛋白A（ConA），Sigma公司產(chǎn)品；胎牛血清，上海微科生化試劑公司；Bradford蛋白定量試劑盒，Tiangen 17803；胃蛋白酶、胰蛋白酶，AMRECO公司。

1.4 主要儀器

Sartorius分析天平 BS110S；Eppendrof臺式冷凍離心機5810R；全自動酶聯(lián)免疫檢測儀GENios；恒溫水浴鍋HH-2，江蘇金壇市宏華儀器廠。

1.5 試劑配制

1.5.1 RPMI-1640培養(yǎng)基

10 g RPMI-1640 干粉，0.11 g Na2CO3，5.925 g Hepes，用雙蒸水定容至1 000 ml，過濾滅菌，-40℃保存，避免反復凍融。

1.5.2 RPMI-1640完全培養(yǎng)液

在RPMI－1640培養(yǎng)液中加入胎牛血清、青霉素、鏈霉素和β-巰基乙醇，使其終濃度分別為10%、100 U/ml、5 mM。

1.5.3 2×人工胃液配方

NaCl 4.0 g，胃蛋白酶 6.4 g，濃鹽酸 14 ml，雙蒸水定容于1 000 ml。 pH 約為 1.2[3]。

1.5.4 2×人工腸液配方

13.6 gKH2PO4溶于250ml雙蒸水，振蕩完全溶解后加190ml 0.2 mol/LNaOH和400 ml雙蒸水。加胰蛋白酶20 g，混勻，用0.2 mol/L NaOH調pH到7.5±0.1，雙蒸水定容置1 000 ml[3]。

1.6 方法

1.6.1 大鼠腸系膜淋巴結細胞懸液制備

取大鼠1只，用無菌剪刀和鑷子取其腸系膜淋巴結，用磨棒小心研磨過120目篩網(wǎng)，并用PBS清洗。加PBS至4ml，室溫800 r/5 min離心，棄上清，重復操作2次。RMPI-1640完全培養(yǎng)基懸浮沉淀，6 g/L臺盼藍拒染，活細胞計數(shù)，調整細胞濃度為2×107個/ml[4]。

1.6.2 燕窩樣品制備

1.6.2.1 水提取液：取原燕窩粉末適量，加45BV雙蒸水室溫浸泡1 h，分別在60、80、100℃水浴中提取3 h，離心取上清，過濾滅菌。Bradford法檢測上清液的蛋白質濃度。用RPMI-1640培養(yǎng)液分別稀釋至濃度為 5.7、14.0、34.0、127.0、180.0 μg/ml。

1.6.2.2 人工胃液消化物[3]：將上述60℃提取的燕窩蛋白質濃度縮至1 mg/ml。加入同等體積2×人工胃液，37℃消化1 h，立即加入0.168 mol/LNa2CO3調pH為7~8終止反應。離心取上清，過濾滅菌。

1.6.2.3 人工腸液消化物[3]：取同樣燕窩濃縮液，加入同等體積2×人工腸液，37℃消化1 h，90℃加熱5 min滅酶。離心取上清，過濾滅菌。

1.6.3 MTT法測定大鼠淋巴細胞的生長曲線

用 RPMI-1640 完全培養(yǎng)基將細胞懸液稀釋成 1×106、2×106、5×106個/ml 3 個濃度，取 200 μl于 96 孔板中，37℃，5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。 分別于 12、24、36、48、60、72、84、96 h 用 MTT 比色法測定細胞在570 nm處OD值，繪制生長曲線。

1.6.4 Con A濃度對淋巴細胞轉化的影響

實驗組取2×106個/ml細胞懸液200μl于96孔細胞培養(yǎng)板內(nèi)，加入 20 μl不同濃度的 ConA（0.125、0.25、0.5、1、2、4、8、16、32、64 μg/ml）共同培養(yǎng)，調零組僅加培養(yǎng)基 200 μl，對照組僅加細胞懸液200μl，每組設 3個重復。37℃，5%CO2培養(yǎng) 48 h。培養(yǎng)結束前4 h，加入5 mg/ml MTT溶液20μl。培養(yǎng)結束后，室溫2 000r/5min離心，棄上清，加入150μl DMSO溶液震蕩30 s，靜止20 min。用酶標儀在570 nm處測各孔OD值。

1.6.5 燕窩濃度對淋巴細胞轉化的影響

取3組2×106個/ml細胞懸液200μl和60℃提取的不同濃度（5.7、14.0、34.0、127.0、180.0 μg/ml）原燕窩提取液置 96孔細胞培養(yǎng)板內(nèi)培養(yǎng)，一組不加ConA，其余兩組分別加入濃度為2μg/ml和4μg/ml的ConA；調零組A僅加培養(yǎng)基200μl，調零組B（排除顏色干擾）同時加200μl培養(yǎng)基和180μg/ml燕窩提取液20 μl，對照組僅加 2×106個/ml細胞懸液 200 μl。 同法測定 570 nm處各孔OD值。

1.6.6 爪哇金絲燕不同處理方法對淋巴細胞轉化的影響

分別取兩組2×106個/ml細胞懸液200μl和不同方法制備的燕窩提取液于96孔細胞培養(yǎng)板內(nèi)培養(yǎng)，一組不加ConA，另一組加2μg/ml ConA；調零組、對照組同上。同法測定570 nm處各孔OD值。

1.6.7 不同品種燕窩及其偽品對淋巴細胞轉化的影響

取2×106個/ml細胞懸液200μl和不同品種燕窩及其偽品提取液于96孔細胞培養(yǎng)板內(nèi)，加入2μg/ml ConA；調零組、對照組同上。同法測定淋巴細胞在570 nm波長下各孔OD值。

2 結果

2.1 MTT比色法測定大鼠腸系膜淋巴結細胞的生長曲線

如圖1所示，濃度為5×106個/ml的淋巴細胞在48 h內(nèi)數(shù)目不斷增加，此后則呈現(xiàn)衰退狀態(tài)；濃度為2×106個/ml的淋巴細胞在檢測時間內(nèi)呈持續(xù)緩慢生長狀態(tài)；濃度為1×106個/ml的淋巴細胞在檢測時間內(nèi)數(shù)量緩慢減少。故其最佳培養(yǎng)濃度為2×106個/ml，檢測時間設定為 48 h。

2.2 ConA濃度對淋巴細胞轉化的影響

如圖2所示，ConA濃度低于2μg/ml時，沒有表現(xiàn)出促淋巴細胞轉化的作用，當濃度超過2μg/ml開始出現(xiàn)明顯的促轉化作用，隨著濃度升高，轉化作用持續(xù)增強；直到濃度超過16μg/ml，對淋巴細胞轉化逐漸減弱。

2.3 燕窩濃度對淋巴細胞轉化的影響

如圖3所示，不加ConA組燕窩不能促進淋巴細胞的轉化，燕窩濃度對其亦沒有太大影響；其余兩組淋巴細胞增殖明顯，由于3條曲線成平行趨勢，故認為大鼠腸系膜淋巴結細胞的轉化主要與ConA有關，與是否添加燕窩關系不大，燕窩的濃度對其影響較小。兩組加入不同濃度ConA的淋巴細胞轉化程度差異不大，但比較之下，低濃度ConA促淋巴細胞轉化量緩慢的增加，呈劑量依賴關系，故認為ConA的最佳濃度為2μg/ml；淋巴細胞轉化受燕窩濃度影響不明顯，故考慮到冷凍干燥后的燕窩粉末復溶較困難，不易得到較高濃度的燕窩樣品，故將其濃度確定為40μg/ml。

BNE為燕窩提取物縮寫，下同

2.4 爪哇金絲燕不同處理方法對淋巴細胞轉化的影響

如圖4所示，和對照組相比，不加ConA組燕窩沒有促淋巴細胞轉化作用；ConA組燕窩促淋巴細胞轉化作用明顯，其中胃蛋白酶消化后的燕窩樣品促淋巴細胞轉化作用最強，其次是胰蛋白酶消化樣品；而水提取樣品中，60℃水提取的燕窩促淋巴細胞增殖作用最強，隨著溫度的增高，增殖作用均有所減弱。

2.5 不同品種燕窩及其偽品對淋巴細胞轉化的影響

如圖5所示，不加ConA組除了市售燕窩和黃燕窩外，淋巴細胞轉化作用均低于對照組；加入ConA后淋巴細胞轉化率均有所提高，樣品組除銀耳外均有輔促淋巴細胞轉化的作用，其中原燕窩、黃燕窩、白燕窩和懷集燕窩輔促淋巴細胞轉化作用最強，其次是即食燕窩、血燕窩和市售燕窩；草燕窩作用最弱，僅比偽品豬皮、銀耳略高。

3 討論

燕窩始載于清朝張璐的《本草逢原》，具有潤肺滋陰，化痰止嗽；開胃氣，利勞??；益氣補中，壯陽，添精補髓的功效。一般認為，燕窩平均含有9%水分，20%無機灰分，32.3%蛋白質和38.7%碳水化合物，主要成分是一種黏蛋白樣的糖蛋白[5-6]。在現(xiàn)代藥理學研究中，張玫等[7]對珍珠燕窩提取液進行藥理試驗顯示，珍珠燕窩提取液能提高T淋巴細胞轉化以及提高小鼠血液IgM含量。M.H.NG觀察了燕窩水提物對人外周單核細胞在凝集素刺激下有絲分裂的促進作用[8]。

淋巴細胞轉化實驗的原理是T淋巴細胞在有絲分裂原（如ConA,PHA）的刺激下，引起細胞內(nèi)新的DNA合成及細胞分化，從而發(fā)生一系列增殖變化。和放射性同位素標記法和形態(tài)學法比較起來，MTT比色法簡便、準確、安全價廉，已經(jīng)廣泛應用于生物學和醫(yī)學的許多研究領域中[9-11]。與M.H.NG實驗結果相似，筆者發(fā)現(xiàn)經(jīng)胃蛋白酶和胰蛋白酶消化后的燕窩輔促淋巴細胞轉化作用并沒有消失，甚至超過了60℃燕窩水體液，可見胃蛋白酶和胰蛋白酶沒有影響燕窩的活性；有研究顯示，寡糖鏈能修飾并改變蛋白質的內(nèi)在特性，保護多肽鏈不被蛋白酶水解[12]。在前期研究中筆者亦發(fā)現(xiàn)，早期研究中的燕窩活性蛋白確實有可能避開胃腸道的消化降解，直接作用于腸上皮細胞發(fā)揮作用。而隨著提取溫度的升高，燕窩輔促淋巴細胞轉化作用開始下降，這說明這種活性蛋白有可能具有熱敏感性。

由黃燕窩制作的即食燕窩仍表現(xiàn)出了和原物質相似的性質，可見罐頭的加工過程并沒有損耗燕窩樣品中的活性物質；除銀耳外，其他所有樣品均表現(xiàn)出輔促淋巴細胞轉化的作用，其中以未經(jīng)加工處理的原始燕窩作用最強，由此可見，加工過程會對燕窩活性物質產(chǎn)生一定影響；在輔促淋巴細胞轉化的實驗中，懷集燕窩表現(xiàn)出了和燕窩中品質較高的黃燕窩、白燕窩一樣的作用，可猜測其中均含有共同的活性物質，由于懷集燕窩含雜質較多，加工處理過程繁瑣，雖進入市場但商品價值較低。有人認為血燕窩之所以呈現(xiàn)紅色與燕子棲息巖洞中的礦物質有關；如果這個假設是成立的，市場上血燕窩的數(shù)量必定稀少。筆者猜測，目前大量于市場中流通的血燕窩其中大部分是采用水溶性或脂溶性染料加工成的染色燕窩，故導致其活性物質減少，輔促淋巴細胞轉化的作用減弱。

蛋白多糖是細胞外基質的重要組成成分，參與細胞分化、生長、黏附、遷移、信息傳遞和組織形態(tài)結構的形成，在細胞免疫方面起著重要作用[13]。在SDS-PAGE電泳實驗中，筆者亦證明燕窩中含有大量糖蛋白，燕窩輔促大鼠淋巴細胞轉化作用的活性物質是否為糖蛋白，仍需要在進一步分離燕窩蛋白質的基礎上驗證。綜上所述，燕窩不能直接促進大鼠腸系膜淋巴結細胞轉化，但對低濃度ConA誘導下淋巴細胞的轉化有一定增強作用。推測其原因是其具有T淋巴細胞有絲分裂原的性質，可促進T淋巴細胞的分裂增殖，反映了集體細胞免疫水平，但推測燕窩具有細胞免疫增強作用則需要進一步驗證。

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