中圖分類號:S858.32文獻標識碼:C 文章編號:1673-1085(2025)08-0104-04
鴨新型鵝細小病毒病由新變種的鵝細小病毒引發,具有高度傳染性、快速傳播和高致死率等特點。該病主要影響雛鴨,表現出明顯的器官特異性損害,并在高密度養殖條件下易發生。診斷手段包括血清學和分子生物學技術,而有效的防控措施涉及隔離、免疫接種和綜合管理等多方面。該病的防治工作面臨早期診斷難、傳播迅速等挑戰,急需采取多層次防控策略以降低損失并保障養殖安全。
1鴨新型鵝細小病毒病的發生特點
鴨新型鵝細小病毒病主要經垂直和水平途徑傳播,垂直傳播多發生在種鴨階段,而水平傳播主要依賴感染個體的排泄物或分泌物污染環境,引起在群體內快速擴散[1]。該病的發病高峰集中于幼齡階段,常伴隨呼吸困難、肝臟腫大及廣泛出血等癥狀,表現出較強的器官特異性損害;而且該病具有隱蔽性和復雜性,早期識別難度較大,大大增加了防控挑戰。該病在發病模式和傳播動力學上表現出顯著的區域性和季節性差異,不同地區發病率及死亡率呈現一定波動,這與當地氣候條件和飼養管理方式密切相關。
2鴨新型鵝細小病毒病的診斷技術
2.1血清學檢測
鴨新型鵝細小病毒病的診斷技術臨床常采用血清學檢測方法,通過檢測鴨群血清中是否存在鵝細小病毒特異性抗體,可以初步判斷是否存在感染情況。常見的血清學檢測方法包括酶聯免疫吸附試驗、免疫熒光試驗和病毒中和試驗等。
酶聯免疫吸附試驗(ELISA):將病毒抗原包被在微孔板上,然后加入鴨血清,若血清中含有特異性抗體,則會與抗原結合形成復合物,隨后通過加酶標記的二抗反應檢測復合物的形成。ELISA作為常用的血清學檢測技術,具有較高的靈敏度和特異性,適用于大規模鴨群病毒感染的初步篩查。然而,該方法對于早期感染者的診斷準確性較低,特別是在抗體未顯著升高的情況下,會出現假陰性結果。
免疫熒光試驗(IFA):通過使用特異性抗體與病毒抗原結合,形成熒光復合物并通過熒光顯微鏡進行檢測。該方法靈敏度較高,但操作相對復雜,且需要專業的設備和人員,一般適用于實驗室條件下的確認性診斷[2]。
2.2分子生物學檢測
分子生物學檢測在鴨新型鵝細小病毒病的診斷中具有重要意義,在早期感染者和無癥狀攜帶者的檢測中展現出明顯的優越性[3]。常用的分子生物學檢測方法包括聚合酶鏈式反應(PCR)及其衍生技術,如實時定量PCR(qPCR)和反轉錄-PCR(RT-PCR)。
PCR檢測敏感性可達到 95% 以上,特異性則可達到 98% ,即使在病毒載量較低的情況下依然能夠準確檢測,非常適用于早期診斷和流行病學監控。實時定量PCR(qPCR)技術是在傳統PCR基礎上進一步發展,能夠在擴增過程中實時監測熒光信號的變化,提供病毒載量的定量信息。這對于評估病毒感染的嚴重程度及監測病毒在不同時間點的復制情況具有重要作用。qPCR技術在鴨新型鵝細小病毒病中的應用,可以更精準地量化病毒負荷,為臨床治療和防控決策提供支持。反轉錄-PCR(RT-PCR)技術則用于檢測RNA病毒,通過逆轉錄酶將病毒RNA轉錄為cDNA,再進行PCR擴增。該技術在檢測RNA病毒如鵝細小病毒,表現出更高的靈敏度和廣泛性,尤其適用于病毒基因組具有較高突變率的情況。
3鴨新型鵝細小病毒病綜合性防控措施
構建完整的防控體系,需要從隔離消毒、科學免疫、疫病監測和從全鏈條管理等多個層面協調發力,全面阻斷鴨新型鵝細小病毒病的傳播。
3.1隔離消毒
在疫情處置環節,一旦確診,必須迅速啟動隔離封鎖機制,對發病鴨群進行隔離觀察,并將疑似感染區域劃分為高風險區和低風險區,分別采取不同等級的防控措施,切斷病毒傳播鏈條,防止疫情向周邊區域擴散。高風險區內的養殖場需立即停止鴨只和物資的流動,設置警示標識和專門的人員出入檢查點,強制進行消毒操作,并明確記錄人員及物資的流入、流出信息。對低風險區的鴨群則需加強健康監測,使用實時定量PCR技術檢測病毒載量,確保無隱性感染存在。隔離期間,高風險區的空氣樣本和水源應定期采樣檢測,根據檢測結果調整隔離區域范圍和防控力度[4]。
在封鎖環節,應依據疫病傳播半徑設置封鎖區范圍,建議以發病中心半徑 10km 作為初始封鎖范圍,結合流行病學數據適時調整。封鎖區內所有進出道路,設置消毒通道,并對運輸工具使用高濃度消毒劑噴灑處理,采用含有效氯 5000mg/L 的消毒液處理后病毒殘留率可下降 90% 以上。在封鎖期間,養殖場工作人員需佩戴全套防護裝備,避免病毒通過間接接觸傳播,并每日進行血清學監測以排除潛在感染。此外,封鎖區內的禽類產品應暫停交易,并通過區域內定點銷毀受污染物資來減少病原擴散風險。同時,還需在封鎖區邊緣建立緩沖帶,設置多層消毒屏障。
在消毒環節,每個養殖區域需配備獨立的消毒設施,確保每日對場地進行至少1次高效消毒,選擇含有效氯 5000mg/L 的消毒液噴灑地面和墻壁,重點針對鴨群活動密集區、排泄物污染區等病毒易殘留區域加強消殺。每次在消毒結束后,對空氣中病原含量進行檢測,及時調整消毒頻率、藥劑濃度和覆蓋范圍,確保消毒覆蓋率達到 95% 以上。對集中飼養模式,需依據鴨舍數量配備專屬的飼養設備,杜絕設備共用導致的交叉污染,并定期對飼養用具進行高溫滅菌處理,溫度控制在121℃以上,確保病毒滅活率達到 99% 以上。
3.2科學免疫接種
為確保疫苗接種的有效性和覆蓋率,科學免疫接種在實施過程中需全面考慮鴨群的健康狀況、免疫時間及疫苗質量等多方面因素[5]。實際操作時,應先對養殖區域開展系統的流行病學調查,通過分子生物學技術如PCR和基因測序對毒株進行分型分析,從而篩選出匹配性最高的疫苗種類。為了保證疫苗質量,所有疫苗均需嚴格遵循《獸藥生產質量管理規范(2020年修訂)》標準,在其運輸和保存過程中必須維持2~8℃的冷鏈環境,以避免疫苗活性降低。
依據流行病學調查數據,制定精準的接種計劃,確保每只鴨都能通過免疫獲得有效保護。鴨群免疫接種時間的確定,需結合其生長周期和病毒的流行特點。通常建議在鴨苗出殼后1~3d內開展首輪基礎免疫,每只鴨接種 0.3mL ,采用頸部皮下注射進行。在首輪免疫后 14d ,需及時實施第二輪加強免疫,確保鴨群抗體水平足以抵御環境中的高濃度病毒侵襲。在接種過程中,嚴格執行無菌規范,所用的注射器和針頭均需經高溫高壓滅菌處理后方可使用,同時注射劑量和接種部位也應嚴格按照疫苗說明書要求執行。為了減少交叉污染的風險,每完成100只鴨的接種,便要更換設備或重新滅菌。為保障免疫工作規范有序,各環節均應明確專人負責,所有操作記錄需實時上傳至統一管理平臺,實現全流程的可追溯性和動態監督管理。同時,建立完備的免疫檔案,詳細記錄鴨群的基礎信息、接種時間、疫苗批次及接種人員等信息,實現全流程可追溯管理。此外,為了提高整體接種覆蓋率,建議在養殖場的高風險區域設置專門的免疫監測點,通過血清學檢測動態評估鴨群的抗體水平,及時對抗體低下的個體進行補免。完成免疫后,需對鴨群進行為期7d的健康觀察,重點觀察接種部位反應及其他不良反應,以便根據觀察結果及時調整后續免疫方案。因此,執行上述科學免疫接種流程細節,能為阻斷病毒傳播筑牢可靠防線。
3.3疫病監測
疫病是防控體系的核心組成部分,需建立實時監測網絡,搭建智能化監測預警平臺,通過血清學和分子生物學檢測技術結合的方式,對鴨群的健康狀況進行動態評估。建議每月對 10% 的養殖鴨進行血清采樣,使用ELISA檢測抗體水平,同時對疑似病例進行實時定量PCR檢測,核實病毒載量。監測數據經實時上傳至中央數據庫,通過大數據分析實現風險預測和預警功能。
3.4構建全鏈條管理體系
建立覆蓋整個養殖流程的標準化管理體系,貫穿繁育、孵化、育雛、飼養、出欄全流程,通過精細化管理與數字化手段,從源頭降低病毒傳播風險。繁育環節,是防控病毒傳播的第一道防線,嚴格篩選種源,建立種禽健康檔案,定期對種禽進行全面病毒檢測,同時做好繁育環節衛生消毒工作,從源頭把控養殖品質,為后續環節奠定堅實基礎。孵化環節,防控重點在于確保種蛋不受病毒污染。每批種蛋進入孵化前需進行病毒核酸檢測,采用PCR技術篩查常見的垂直傳播病毒,確保病毒不能通過種蛋傳遞至雛鴨,同時,做好孵化設備的每日消殺工作,阻斷病毒通過種蛋垂直傳播的途徑。
育雛期,需動態調整鴨舍內溫濕度,通過智能通風系統實現通風換氣,對雛鴨科學免疫,確保在關鍵發育期建立穩定較好的免疫屏障。日常飼養中,應嚴格執行分群飼養,根據畜禽日齡、體重、生長情況實現精準投喂;確保每只鴨在各生長階段都能獲得適宜的營養支持。為了減少鴨群之間的應激反應并避免病毒傳播的風險,控制飼養密度在20只 /m2 以下,通過智能感應設備實時監測并預警,減少應激反應和病毒擴散概率。
出欄運輸環節,應采用封閉式專用運輸車輛,并配備溫控系統、空氣過濾裝置和自動消殺設備,有效阻止空氣中的病原傳播,減少感染的風險;同時,建立嚴格的車輛出入登記制度和物資追溯機制,確保每一輛運輸車和物資的流通都可以被追溯并監控。通過信息化手段記錄運輸全程信息,確保運輸環節可溯源、可管控。搭建鴨養殖全鏈條信息化管理平臺,該平臺能夠接入監控與預警系統,并于歷史監測數據結合,通過大數據分析實現動態評估防控體系中的薄弱環節。一旦發現問題,平臺能夠立即啟動問題處置機制,及時調整防控策略和措施。
4小結
鴨新型鵝細小病毒病的防控是一項系統性工程,需要從精準診斷、隔離封鎖、科學免疫以及構建完善的管理體系等多個方面協同發力。未來,對鴨新型鵝細小病毒病的防控工作,應進一步優化現有的診斷手段,提高早期檢測的準確性,并深化對疫病傳播動力學的研究,增強免疫策略的針對性。通過整合大數據分析、人工智能等先進技術,創新疫病預警與防控模型,并結合精細化管理模式,為制定更有效的防控策略提供理論支持和實踐指導,從而推動鴨新型鵝細小病毒病防控領域的技術創新與體系完善。
參考文獻:
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