

[摘要] 目的 探討靶向細胞間質上皮轉化因子(cellular-mesenchymal epithelial transition factor,c-Met)的嵌合抗原受體NK(chimeric antigen receptor-NK,CAR-NK)細胞在體外對胃癌細胞的抑制和殺傷作用。方法 采用流式細胞術(flow cytometry,FCM)、蛋白質免疫印跡法、反轉錄熒光定量聚合酶鏈反應檢測胃癌細胞株(MKN-45、GTL-16和NCI-N87)和胃黏膜上皮細胞GES-1中c-Met的蛋白和核酸水平表達情況;通過細胞免疫熒光實驗檢測c-Met CAR對高表達c-Met的胃癌細胞株GTL-16的特異性識別作用;通過慢病毒載體構建靶向c-Met的CAR-NK細胞,并應用FCM檢測CAR-NK細胞的感染效率和細胞表型;通過乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)實驗和酶聯免疫吸附試驗檢測c-Met CAR-NK細胞對胃癌細胞株和胃黏膜上皮細胞的殺傷效應。結果 在核酸水平和蛋白水平,c-Met均顯著高表達于胃癌細胞株GTL-16和MKN-45,低表達于胃癌細胞株NCI-N87和胃黏膜上皮細胞GES-1。FCM結果顯示c-Met CAR-NK感染率為(14.97±0.25)%,c-Met CAR病毒感染并未影響NK-92細胞的表型。細胞免疫熒光結果顯示轉染c-Met CAR質粒的Lenti X-293T細胞靶向結合至胃癌細胞GTL-16周圍。LDH殺傷實驗結果表明,c-Met CAR-NK相較于NK-92對高表達c-Met的胃癌細胞株GTL-16和MKN-45具有更顯著的殺傷效果(Plt;0.05)。按照效靶比10∶1時c-Met CAR-NK與高表達c-Met的胃癌細胞株GTL-16和MKN-45共培養時,可顯著釋放出更多的腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α和干擾素(interferon,IFN)-γ(Plt;0.05)。結論 本研究構建的c-Met CAR-NK細胞具有特異性識別并靶向殺傷高表達c-Met的胃癌細胞的能力,且有較強的殺傷效應功能,能釋放出更多的TNF-α和IFN-γ。
[關鍵詞] 細胞間質上皮轉化因子;嵌合抗原受體NK細胞;細胞免疫治療;胃癌
[中圖分類號] R735.2" """"[文獻標識碼] A """""[DOI] 10.3969/j.issn.1673-9701.2025.20.008
In vitro study of CAR-NK cell immunotherapy targeting c-Met for gastric cancer
LU Huifei, MAO Liqi, WEI Guijun
Department of Gastroenterology, the First People’s Hospital of Huzhou, Huzhou 313000, Zhejiang, China
[Abstract] Objective To investigates the inhibitory and cytotoxic effects of chimeric antigen receptor-engineered natural killer (CAR-NK) cells targeting cellular-mesenchymal epithelial transition factor (c-Met) against gastric cancer (GC) cells in vitro. Methods c-Met expression at protein and mRNA levels was evaluated in GC cell lines (MKN-45, GTL-16, NCI-N87) and gastric mucosal epithelial cells (GES-1) by using flow cytometry (FCM), Western blot, and reverse transcription quantitative polymerase chain reaction. Immunofluorescence assays were conducted to confirm c-Met CAR-mediated specificity toward c-Met-overexpressing GTL-16 cells. Lentiviral vectors were utilized to construct c-Met-targeting CAR-NK cells, with transduction efficiency and phenotypic integrity verified by FCM. Cytotoxic activity against GC cells and normal epithelial cells was quantified via lactate dehydrogenase (LDH) release assays and cytokine secretion measured by enzyme-linked immunosorbent assay. Results c-Met exhibited significantly higher expression in GTL-16 and MKN-45 cells at both transcriptional and protein levels compared to NCI-N87 and GES-1 cells (Plt;0.05). CAR-NK cells demonstrated a transduction efficiency of (14.97 ± 0.25)% without altering NK-92 cell phenotypes. Immunofluorescence confirmed specific binding of c-Met CAR-expressing Lenti-X-293T cells to GTL-16 targets. LDH assays revealed enhanced cytotoxicity of c-Met CAR-NK cells against c-Met-high GC cells (GTL-16, MKN-45) versus untransduced NK-92 controls (Plt;0.05). At a 10:1 effector-to-target ratio, c-Met CAR-NK cells co-cultured with c-Met-high GC cells secreted significantly elevated tumor necrosis factor(TNF-α) and interferon(IFN)-γ (Plt;0.05). Conclusion The c-Met CAR-NK cells constructed in this study have the ability to specifically recognize and target to kill gastric cancer cells with high expression of c-Met, and have a strong killing effect function, which can release more TNF-α and IFN-γ.
[Key words] Cellular-mesenchymal epithelial transition factor; Chimeric antigen receptor natural killer cells; Cellular immunotherapy; Gastric cancer
胃癌(gastric cancer,GC)為消化系統的高發惡性腫瘤,現階段臨床對GC仍以外科手術切除結合放化療為主要干預方案,但由于術后復發風險較高及遠端轉移頻發,多數患者的臨床結局較差、5年生存率未達預期[1-3]。隨著基因編輯技術與免疫腫瘤學領域的突破,過繼性細胞免疫療法作為新型治療策略正受到廣泛關注[4-6]。
嵌合抗原受體自然殺傷(chimeric antigen receptor NK,CAR-NK)細胞免疫治療是基于遺傳編輯技術對NK細胞進行工程化改造,將包含特異性抗原結合域與NK細胞活化信號模塊的基因序列導入細胞內,賦予NK細胞特異性識別腫瘤表面抗原的能力,并通過激活內源性殺傷信號通路觸發細胞毒作用,釋放穿孔素與顆粒酶素B等效應分子介導腫瘤細胞裂解[7-8]。實體瘤抗原異質性是造成腫瘤逃逸和細胞免疫治療的主要限制性因素,因此尋找合適的靶點對腫瘤細胞免疫治療至關重要。細胞間質上皮轉化因子(cellular-mesenchymal epithelial transition factor,c-Met)是Met基因編碼產生的具有磷酸酶活性的跨膜受體,已被證實在肝癌、胃癌和肺腺癌等多種實體瘤中高表達,且造成腫瘤的不良預后[9]。研究表明c-Met通路的異常激活可促進GC進展及導致GC多線耐藥,c-Met可作為胃癌免疫治療的理想靶點[10]。本研究通過慢病毒轉染方式構建c-Met CAR-NK細胞,并利用體外細胞實驗評估其抗胃癌效果。
1 "材料與方法
1.1 "細胞株、實驗試劑與儀器
胃癌細胞株(GTL-16、MKN-45和NCI-N87)、胃黏膜上皮細胞GES-1及X-293T細胞均由湖州市第一人民醫院中心實驗室保存;細胞培養基、細胞因子和添加劑均購自美國Gibco公司;流式抗體均購自美國Biolegend公司;c-Met單克隆抗體和蛋白質免疫印跡(Western blot,WB)二抗均購自美國CST公司;DAPI和乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)試劑盒購自中國上海碧云天公司;酶聯免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒購自中國武漢三鷹公司;細胞總RNA、反轉錄、熒光定量聚合酶鏈反應(quantitative polymerase chain reaction,qPCR)試劑盒均購自美國Thermo Fisher公司。細胞培養耗材購自美國Corning公司。qPCR儀器購自美國BIO-RAD公司;流式細胞儀購自美國Beckman Coulter公司;酶標儀購自美國Bio Tek公司;化學發光儀器購自中國上海天能公司;共聚焦顯微鏡購自德國ZEISS公司。
1.2 "細胞培養
胃黏膜上皮細胞GES-1和X-293T培養基配方:DMEM基礎培養基90%,FBS 10%,P/S 1%;胃癌細胞株MKN-45、NCI-N87和GTL-16培養基配方:RPMI-1640培養基90%,FBS 10%,P/S 1%。NK-92細胞培養基配方:參考文獻[7]培養條件。放置于37℃、5% CO2培養箱中培養擴增。
1.3 "實驗方法
胃癌細胞株及胃黏膜上皮細胞提取細胞總RNA后反轉錄得到cDNA,經反轉錄實時熒光定量PCR(reverse transcription quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR)實驗,結果以GAPDH為內參基因,以c-Met為目的基因,并按照公式算出c-Met的相對表達量。各細胞株經WB法提取總蛋白,蛋白濃度測定后放置于金屬浴,95℃ 10min煮樣變性。將各組蛋白上樣、電泳、轉膜、封閉、一抗二抗孵育后充分洗滌,化學曝光檢測后進行半定量統計分析并作圖比較。進行流式細胞術(flow cytometry,FCM),各細胞株經PBS洗滌3次后進行細胞計數,控制每管細胞數量為3×105,并用100μl PBS重懸細胞沉淀,于各組細胞樣品中加入相應流式抗體并放置于4℃避光孵育30min,孵育結束后經PBS洗滌,用300μl PBS重懸細胞沉淀后細胞篩網過濾,FCM儀器上機檢測并分析。
1.4 "c-Met CAR-NK細胞制備
將2×105個NK-92細胞加入至提前準備RetroNectin預包被的6孔板,并加入polybrene(1mg/ml)促感染試劑。按照MOI=50將c-Met CAR慢病毒感染NK-92細胞制備c-Met CAR-NK細胞,放置于37℃、5% CO2培養箱中培養。將經c-Met CAR慢病毒感染的X-293T細胞與高表達c-Met的GTL-16共培養12h后加入PBS浸沒漂洗,細胞經甲醇固定、0.2% TritonX-100通透及5% BSA封閉后,滴加經抗體說明書稀釋的c-Met一抗于4℃避光孵育過夜;次日經PBS浸沒漂洗后滴加經稀釋的熒光二抗,放置于37℃避光孵育1h,緩慢加入PBS浸沒漂洗3次,加入DAPI進行核染,避光孵育10min并加入PBS緩沖液漂洗4次,包上錫紙,放置于共聚焦顯微鏡觀察拍照。
1.5 "c-Met CAR-NK細胞的殺傷能力檢測
靶細胞:經離心收集MKN-45、GTL-16、NCI-N87和GES-1并調整細胞濃度后置于細胞培養箱中過夜培養;效應細胞:收集c-Met CAR-NK和NK-92細胞,并按照梯度效靶比(20∶1、10∶1、5∶1和2.5∶1)調整細胞濃度,并將各梯度的效應細胞加入至靶細胞中進行共培養,各濃度設置3個復孔,并設置樣本孔、高對照孔和低對照孔;效靶細胞共孵育24h;按照試劑盒說明書添加試劑后,用酶標儀檢測490nm處A值并計算細胞損傷效率。效靶細胞以固定效靶比的比例共培養24h,并收集各組共培養上清備用。采用ELISA法測定各組上清中腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α和干擾素(interferon,IFN)-γ的濃度。
1.6 "統計學方法
采用SPSS 22.0統計學軟件對數據進行處理分析,計量資料以均數±標準差(")表示,組間比較采用t檢驗、單因素方差分析和雙因素方差分析。Plt;0.05為差異有統計學意義。Graphpad Prism和ImageJ軟件進行分析及繪圖。
2 "結果
2.1 "c-Met mRNA在胃癌細胞系的表達水平比較
與胃黏膜上皮細胞GES-1比較,c-Met顯著性高表達于胃癌細胞株MKN-45和GTL-16中(F=73.573,Plt;0.05)。WB法結果顯示c-Met顯著高表達于GTL-16和MKN-45中,低表達于GES-1和NCI-N87中(Plt;0.05),見圖1。FCM結果顯示,胃癌細胞株(GTL-16、MKN-45、NCI-N87)和胃黏膜上皮細胞GES-1中c-Met蛋白的表達量分別為99.6%、87.1%、26.5%和0.023%。
2.2" c-Met CAR-NK感染效率及靶向識別功能分析
c-Met CAR-NK感染效率為(14.97±0.25)%,CAR病毒感染并未對NK-92細胞表型產生影響。通過激光共聚焦成像結果顯示,c-Met CAR陽性細胞特異性聚集并吸附于c-Met高表達的胃癌細胞株GTL-16周圍,證實本研究構建的c-Met CAR-NK細胞具備靶向識別并共定位于腫瘤表面c-Met抗原的功能,見圖2。
2.3" c-Met CAR-NK對c-Met高表達胃癌細胞株的特異性殺傷效果分析
將效應細胞(c-Met CAR-NK細胞組和NK-92細胞組)與靶細胞(胃癌細胞株GTL-16、MKN-45、NCI-N87及胃黏膜上皮細胞GES-1)共培養,LDH實驗結果顯示在高表達c-Met胃癌細胞株GTL-16和MKN-45中,c-Met CAR-NK具有極強的殺傷效果能力,且殺傷效果與效靶比呈正相關(Plt;0.05)。而在低表達或不表達c-Met胃癌細胞株NCI-N87和胃黏膜上皮細胞GES-1中,c-Met CAR-NK細胞組與NK-92細胞組的殺傷效果差異無統計學意義(Pgt;0.05)。經LDH實驗確定固定效靶比為10:1,固定效靶后與NK-92細胞比較,c-Met CAR-NK細胞在與c-Met高表達胃癌細胞共培養體系中,IFN-γ和TNF-α效應因子釋放水平呈顯著提升(Plt;0.05)。
3 "討論
胃癌的臨床防治面臨多重挑戰,晚期胃癌患者5年生存率不足20%[11]。當前臨床干預仍以手術切除為核心,但約50%的患者確診時已進展至中晚期,放化療及靶向治療易受腫瘤異質性和微環境免疫抑制影響,存在應答率低及耐藥問題[12-13]。免疫檢查點抑制劑客觀緩解率低,凸顯實體瘤免疫治療瓶頸,因此亟需新型療法[14-15]。
CAR-NK細胞免疫治療作為免疫治療新方向,是近年來癌癥免疫治療領域的重要突破。CAR-NK通過基因工程改造技術,將帶有特定的抗原識別結構域和胞內信號活化分子轉導入NK細胞內,增強其靶向殺傷腫瘤細胞的能力,已展現出顯著優于傳統CAR-T療法的潛力[16-17]。
缺乏特異性靶點是細胞免疫治療實體瘤的主要限制性因素,本研究采用c-Met作為治療胃癌的特異性靶點。c-Met是一種受體酪氨酸激酶,其配體為肝細胞生長因子[18]。研究證實c-Met是促瘤基因,在多種實體瘤中高度表達,尤其是胃癌、肺癌、肝癌及乳腺癌,其信號通路的異常激活(如基因擴增、突變或過表達)與多種實體瘤的侵襲、轉移和耐藥性密切相關[19]。本研究經RT-qPCR、WB法和FCM實驗,從核酸水平和蛋白水平分別驗證c-Met在胃癌細胞株和胃黏膜上皮細胞中的表達水平,并成功篩選c-Met高表達胃癌細胞株(GTL-16和MKN-45)、c-Met低表達胃癌細胞株NCI-N87及不表達c-Met的胃黏膜上皮細胞GES-1用于后續實驗研究。
本研究中FCM檢測CAR-NK細胞的感染效率較低,推測可能與慢病毒感染方式有關,為改善NK細胞的感染效率。本研究qPCR實驗結果證明,成功構建的c-Met CAR-NK細胞能特異性識別并靶向結合至胃癌腫瘤細胞膜表面抗原c-Met,證明c-Met CAR-NK細胞的靶向定位能力。本研究LDH細胞毒性實驗結果表明,c-Met CAR-NK細胞在與c-Met高表達胃癌細胞(GTL-16和MKN-45)共培養體系中,具有更顯著的殺傷效果,證明c-Met CAR-NK的特異性靶向殺傷效率與胃癌腫瘤細胞膜表面c-Met表達水平高低密切相關。且相較于NK-92細胞,c-Met CAR-NK細胞顯現更顯著的殺傷效果,該結果進一步揭示以c-Met作為胃癌的特異性靶點的優越性。研究表明CAR-NK靶向殺傷腫瘤細胞的過程中可分泌大量效應性細胞因子,如IFN-γ和TNF-α細胞因子通過激活免疫細胞、調控炎癥和誘導細胞死亡清除病原體或異常細胞,具有一定的抗腫瘤作用[20]。本研究ELISA實驗結果表明,細胞因子IFN-γ和TNF-α的釋放水平與c-Met表達水平呈正相關。LDH殺傷實驗和ELISA實驗結果共同揭示以c-Met作為靶點構建的c-Met CAR-NK細胞對胃癌細胞株的特異性殺傷效果及在較低的感染效率下仍能展現顯著的特異性殺傷效應。
本研究采用體外實驗驗證c-Met CAR-NK對胃癌的殺傷效率,因此缺乏克服體內實體瘤腫瘤異質性的有力證據。綜上,本研究構建的c-Met CAR-NK能特異性識別并靶向殺傷高表達c-Met的胃癌細胞,且分泌大量細胞因子。
利益沖突:所有作者均聲明不存在利益沖突。
[參考文獻]
[1]"" SIEGEL R L, WAGLE N S, CERCEK A, et al. Colorectal cancer statistics, 2023[J]. CA Cancer J Clin, 2023, 73(3): 233–254.
[2]"" 王斌, 王濤. 胃癌的科學預防、早期診斷與精準治療[J]. 陸軍軍醫大學學報, 2025, 47(5): 385–395.
[3]"" 張浩然, 朱健康. 腫瘤疫苗用于胃癌治療的研究進展[J]. 中外醫學研究, 2025, 23(6): 157–160.
[4]"" 楊會燕, 吳冰. 阿帕替尼聯合替吉奧、奧沙利鉑三藥方案在晚期胃癌腹膜轉移患者轉化治療中的應用研究[J]. 黑龍江醫學, 2025, 49(4): 453–455.
[5]"" 楊迪雅, 孔祥輝, 周秀梅. 嵌合抗原受體療法在腫瘤免疫治療中的研究進展[J]. 中國細胞生物學學報, 2023, 45(3): 557–568.
[6]"" 賈宇, 陳彥, 劉建生. 肝癌的NK細胞免疫治療研究[J]. 胃腸病學和肝病學雜志, 2021, 30(11): 1219–1223.
[7]"" GONG Y, KLEIN WOLTERINK R G J, WANG J, et al. Chimeric antigen receptor natural killer (CAR-NK) cell design and engineering for cancer therapy[J]. J Hematol Oncol, 2021 , 14(1): 73.
[8]"" PENG L, SFERRUZZA G, YANG L, et al. CAR-T and CAR-NK as cellular cancer immunotherapy for solid tumors[J]. Cell Mol Immunol, 2024, 21(10): 1089–1108.
[9]"" GUO R, LUO J, CHANG J, et al. MET-dependent solid tumours - Molecular diagnosis and targeted therapy[J]. Nat Rev Clin Oncol, 2020, 17(9): 569–587.
[10] RECONDO G, CHE J, JANNE P A, et al. Targeting MET dysregulation in cancer[J]. Cancer Discov, 2020, 10(7): 922–934.
[12] 張曉瑞, 單海霞, 朱正秋. 奧沙利鉑及卡培他濱聯合信迪利單抗一線治療HER2陰性晚期胃癌的療效及安全性[J]. 中國臨床研究, 2025, 38(1): 37–41.