貝萊斯芽孢桿菌SB10的篩選、鑒定及其在番茄青枯病防治中的應用

摘要：為獲得雷爾氏青枯菌（Ralstonia solanacearum）高效拮抗生防菌株資源，從生姜患病組織中分離、篩選出高效拮抗菌株SB10，經理化指標及分子生物學鑒定為貝萊斯芽孢桿菌（Bacillus velezensis）。該菌對病原菌的平板拮抗試驗結果表明，SB10具有廣譜抑菌功能，其對立枯絲核菌（Rhizoctonia solani）、尖孢鐮刀菌（Fusarium oxysporum）、大麗輪枝孢菌（Verticilium dahliae）等病原真菌和柑橘黃單胞桿菌（Xanthomonas campestris）、燕麥嗜酸菌西瓜亞種（Acidovorax avenae subsp.Citrulli）及青枯雷爾氏菌（Ralstonia solanacearum）等病原細菌均有顯著的抑制作用，抑菌圈直徑均在 3.0 cm 以上。生防盆栽試驗結果表明，SB10菌體重懸液和發酵液均對青枯雷爾氏菌具有預防和治療作用，且其發酵液的預防作用的相對防效為80%，顯著優于治療作用的相對防效（42%）；且SB10菌體重懸液和發酵液對青枯雷爾氏的防治效果有差異，其菌體重懸液生防效果優于發酵液。促生盆栽試驗結果表明，接種菌株SB10菌體重懸液顯著地增加了番茄的地上部鮮重。綜上，Bacillus velezensis SB10菌株具有廣譜抑菌能力，對番茄植株有明顯促生效果，可作為番茄青枯病高效生防菌劑資源。

關鍵詞：貝萊斯芽孢桿菌；番茄青枯病；廣譜抑菌功能；生防作用；促生作用；土傳病害

中圖分類號：S182；S436.412.1₊5" 文獻標志碼：A

文章編號：1002-1302（2024）19-0134-09

收稿日期：2023-10-25

基金項目：韶關市科技計劃（編號：220805106270728、210806164532037）；廣州市科技計劃（編號：202201011832）；廣東特支計劃（編號：2021JC06N628）；“十四五”廣東省農業科技創新十大主攻方向“揭榜掛帥”項目（編號：2022SDZG09、2023SDZG09）。

作者簡介：劉玉敏（1995—），女，河南確山人，碩士，助理工程師，從事生防菌株資源的收集和利用，E-mail：3074307426@qq.com；共同第一作者：謝小林（1986—），男，江西上饒人，博士，高級工程師，從事農用固體有機廢棄物資源化利用，E-mail：522353739@qq.com。

通信作者：朱紅惠，博士，研究員，從事農用微生物種質資源挖掘及創新利用。E-mail：zhuhh@gdim.cn。

番茄青枯病是一種由青枯雷爾氏菌（Ralstonia solanacearum）引起的典型的土傳病害^［1］，具有分布范圍廣，發病嚴重、致死率高的特點，而且病原菌可在土壤中越冬，一旦發病，很難將其根除^［2］。據統計，在番茄種植中因番茄青枯病造成的病害，輕病地塊減產10%～30%，嚴重地塊減產50%以上，甚至絕收^［3］。目前，番茄青枯病的防治主要包括抗性產品的選擇^［4］、物理防治^［5］、化學防治^［6］和生物防治^［7］等措施。化學防治因見效快、操作簡單被長期推廣使用，但化學農藥的濫用可能會導致病原菌的耐藥性增強，農產品品質下降，而且大量使用化學農藥會造成土壤板結、酸化、鹽漬化和水體的富營養化^［8-13］，這些嚴重阻礙了我國番茄產業的綠色發展。因此，尋找綠色、安全、高效的番茄青枯病防治方法對番茄產業高質量發展具有重要意義。

生物防治因其安全、綠色、無污染的特點，逐漸成為國內外番茄青枯病防治的研究熱點^［6］。而貝萊斯芽孢桿菌具有良好的抑菌活性和廣譜抑菌性，對瘡痂病鏈霉菌（Streptomyces scabies）、赤霉病（Fusarium head blight）、尖孢鐮刀菌（Fusarium oxysporum）等植物病原菌均有明顯的抑制作用^［14-16］，對番茄青枯病等作物病害也具有良好的防治效果^［17-18］。Kang等的室內共培養試驗表明，接種內生貝萊斯芽孢桿菌CCO9具有良好抑菌性，對葉枯病防治效果達 21.64%，對小麥全蝕病的防治效果達到66.67%^［19］。曹宇等的試驗表明，同時接種Bacillus velezensis HNU24和青枯雷爾氏菌EP1至番茄植株，青枯病的發病率明顯下降^［20］。郭浩群的盆栽試驗表明，提前5 d接種貝萊斯芽孢桿菌2014WK-N60發酵液，對青枯雷爾氏菌GMI1000的防效達到 58.90%^［21］。有大量室內試驗研究表明，同時接種貝萊斯芽孢桿菌和病原菌時，貝萊斯芽孢桿菌可有效降低病害的發生率，但關于貝萊斯芽孢桿菌對病原菌的預防作用和治療作用相關研究較少，且對于生防菌株菌體和發酵液對病害防治的效果差異的相關研究不多。基于此，本試驗從生姜患病組織中分離出1株高效拮抗青枯雷爾氏菌的內生菌株貝萊斯芽孢桿菌SB10，評估其廣譜抑菌性，并利用室內盆栽試驗評估其對番茄青枯病的生物防治及促生效果，重點關注SB10菌體重懸液和發酵液的生防效果及其差異以及SB10菌劑預防和治療作用效果的差異，以期為揭示該菌株生防機制以及高效生防菌劑的研發提供數據支撐。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

供試樣品：樣品于2021年6月采集自河北省唐山市路南區生姜種植大田，采用五點取樣法采集大田健康土壤和患病植株，進行病原菌和生防菌的分離和篩選。

供試菌株：青枯雷爾氏菌HB23，分離自姜瘟病患病組織，保藏于廣東省微生物菌種保藏中心，保藏編號為 GDMCC 1.3036；立枯絲核菌、尖孢鐮刀菌、大麗花輪枝孢菌、燕麥嗜酸菌西瓜亞種、青枯雷爾氏菌和柑橘黃單胞桿菌等靶標病原菌均由廣東省微生物菌種保藏中心提供。

供試植株：供試番茄品種為新金豐一號，是青枯雷爾氏菌易感品種，育苗至3～5張真葉時備用。因分離自生姜姜瘟病的病原菌青枯雷爾氏菌可導致番茄青枯病病害，且番茄植株生長周期較生姜短，在廣東省番茄種植面積多于生姜種植面積，因此選擇番茄作為供試植株。

供試土壤：自然風干的土壤和沙子，按照3 ∶1體積比混勻，過2 mm（10目）孔徑篩，121 ℃高壓蒸汽滅菌1 h，重復3次，分別間隔1 d，晾干后備用^［22］。

1.2 青枯雷爾氏菌病原菌的分離

取新鮮生姜患病根部組織，采用組織分離法^［23］分離病原菌。具體分離步驟為：自來水沖洗生姜組織5 min左右，切取病健交接部位使用75%乙醇和1% NaClO進行消毒，置于營養肉湯瓊脂培養基上，30 ℃培養3 d左右，之后根據形態差異純化菌株^［22］。

經氯化三苯甲基四氮唑（TTC）平板法^［23］和柯赫氏回接法^［24］驗證病原菌的致病力。

1.3 菌株SB10的分離和篩選

1.3.1 可培養菌的分離

采用稀釋涂布法^［25］從生姜種植土壤樣品中分離可培養微生物，具體分離步驟為：取10 g根際土壤樣品，在無菌三角瓶中加入 90 mL 無菌水和20顆左右的滅菌玻璃珠，置于搖床200 r/min振蕩培養30 min。分別取10^-3、10^-4、10^-5稀釋液100 μL涂布于營養肉湯瓊脂培養基（NA）、馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養基（PDA）和R2A瓊脂培養基，每個梯度3次重復，倒置于恒溫培養箱中30 ℃培養3 d左右。待菌落長出后挑取不同形態的單菌落進行純化，3～4次后獲得純菌落，置于25%甘油中保存備用。

1.3.2 青枯雷爾氏菌生防菌的初篩

采用平板對峙法^［25］進行生防菌的初篩，以青枯雷爾氏菌HB23為靶向病原菌，將其活化后接入至NB培養基中，培養 24 h后調節D_{600 nm}到 1.0左右，然后用無菌水稀釋1 000倍，吸取100 μL病原菌菌液均勻涂布至NA平板上，將活化好的待測菌株采用點接法接種在距培養皿中心3 cm處的四均分位點，每個平板點接4個菌株，每個菌株2次重復，置于28 ℃培養約48 h后，觀察抑菌情況^［22］。

1.3.3 青枯雷爾氏菌生防菌的復篩

參考陳丹丹等的方法^［26］進行生防菌的復篩，以青枯雷爾氏菌HB23為靶向病原菌，選擇有明顯抑菌圈的菌株復篩。方法為：病原菌發酵后菌液稀釋后涂布于NA平板上，距培養皿中心3 cm處呈“十”字形打孔4個（孔徑為8 mm），挑取生防菌單菌落接種于NB培養基中，30 ℃ 200 r/min 培養24 h成生防菌液，吸取50 μL生防菌液于孔中，置于28 ℃培養48 h后，觀察其抑菌圈直徑^［22］。

1.4 菌株SB10的鑒定

1.4.1 形態學鑒定

將篩選到的拮抗菌株SB10接種到NA平板上，根據伯杰細菌鑒定手冊^［27］和常見細菌系統鑒定手冊^［28］觀察菌落形態，通過革蘭氏染色，在顯微鏡下觀察菌體的形態^［28］。

1.4.2 生理生化鑒定

參照陳芳芳等的方法^［29］，采用API試劑條（梅里埃）和 API ZYM試劑條（梅里埃）對SB10進行生理生化指標的測定。

1.4.3 分子生物學鑒定

挑取活化后的SB10單菌落，于NB培養基中 30 ℃ 200 r/min 條件下培養 12 h 后，1 000 g離心收集菌體，提取DNA，DNA純度檢測合格后，送測并做全基因組掃描圖分析^［22］。基于16S rDNA的比對鑒定結果，將SB10的全基因序列與NCBI及EzBioCloud數據庫進行同源性比對分析，使用UBCG（http：//172.16.20.20：8080/BioUI/Task QueryListener）建立系統進化樹（Bootstrap值設置為1 000）^［22］。

1.5 菌株SB10廣譜抑菌性試驗

采用平板對峙法評估青枯雷爾氏拮抗菌SB10的廣譜抑菌功能，選擇表1中作物常見病害病原菌為靶向病原菌，細菌病原菌拮抗平板選擇NA培養基，真菌病原菌拮抗平板選擇PDA培養基，具體操作參考謝永麗的方法^［30］，進行3次獨立重復試驗。

1.6 菌株SB10對番茄青枯病防治效果試驗

盆栽試驗于2021年11月26日在廣東省科學院微生物研究所（廣東省廣州市越秀區）100號大院59號樓光照培養室進行，共設7個處理（表2），每個處理5次重復，隨機區組排列。將土壤和沙按 3 ∶1 體積比混勻后裝入圓盆中，每盆500 g基質，移入1株番茄苗，移栽7 d后進行病原菌和生防菌劑的處理^［22］。生防菌劑的制備：SB10挑取單菌落制備種子液，按照2%接種量接種至NB培養液中，于30 ℃、200 r/min 搖床中培養24 h制備發酵液，調節D_{600 nm}到1.0，即為SB10的發酵液（有效活菌數為4.3×10₇ CFU/mL）^［22］。將一半SB10菌液 6 000 r/min，10 min 離心后取其菌體，采用0.9%生理鹽水重懸，即為SB10菌體生理鹽水重懸液，灌根接種。病原菌菌液制備：將活化好的青枯雷爾氏菌菌株HB23接到NB培養基中，同樣方法培養至對數生長期，制備成病原菌菌液（有效活菌數為2.5×10₉ CFU/mL）。病原菌的接種采用傷根灌注接種法，菌液接入量為20 mL/盆^［22］。試驗處理為：對照組（CK）為清水對照；病原菌對照組為接種20 mL青枯雷爾氏菌菌液和20 mL無菌生理鹽水（A1）或者20 mL NB液體培養基（A2）；預防組處理為：先接種20 mL SB10生防菌劑（B1接種SB10菌體生理鹽水重懸液/B2接種SB10發酵液），24 h后接種20 mL青枯雷爾氏菌菌液；治療組處理為：先接種20 mL青枯雷爾氏菌菌液，5 d后發病接種20 mL SB10生防菌劑（C1接種SB10菌體生理鹽水重懸液/C2接種SB10發酵液）。

番茄苗經處理后置于光照培養室中，控溫至 30 ℃ 左右，控濕至80%左右，隨機區組擺放，按照20%土壤含水量稱重澆水。每天觀察，待番茄植株處理5 d后發病，按照Kempe對青枯病的發病級別劃分^［31］，發病7 d后統計以下指標：植株發病率=（發病株數/總株數）×100%；病情指數（DI）=［∑（各級病株數×相應級別數）/（調查總株數×最高級別值）］×100；相對防效（BE）=［（對照組的病情指數-試驗處理組的病情指數）/對照組的病情指數］×100%^［31］。

1.7 菌株SB10對番茄促生效果試驗

促生試驗共設2個處理，即CK為清水對照，SB10為接種貝萊斯芽孢桿菌SB10的菌體重懸液，每個處理3次重復。SB10的菌體重懸液制備方法同“1.6”節中菌體生理鹽水重懸液的制備。番茄苗移栽7 d后，每盆按照5×10₉ CFU接種量接入SB10菌體重懸液，對照接入等體積水。整個試驗周期為30 d，試驗周期內共處理3次，間隔10 d處理1次。置于溫室大棚中培養，每天定量澆水至土壤含水量保持在20%左右，培養30 d后測定番茄株高、莖粗及地上部、地下部的鮮干重。

1.8 數據分析

采用SPAdes Contigs Filter拼接SB10的全基因組序列。功能性基因由RSAT進行注釋。通過anti SMASH （https：//dl.secondarymetabolites.org/ releases/4.0.2/）軟件對樣本的次級代謝產物合成基因簇進行預測，獲得代謝產物基因注釋結果。

生防試驗和促生盆栽試驗數據使用軟件IBM SPSS Statistics Version 21.0進行方差分析（ANOVA，Turkey’s HSD檢驗）、獨立樣本t檢驗分析（ANOVA，Turkey’s HSD檢驗），表格等使用軟件Microsoft Excel 2007進行繪制。

2 結果與分析

2.1 青枯雷爾氏菌病原菌的分離

菌株HB23分離自生姜患病根部組織，經16S rRNA鑒定為青枯雷爾氏菌。圖1-A中青枯雷爾氏菌單菌落在TTC平板上邊緣為白色，中間為粉紅色，具有致病力，圖1-B中青枯雷爾氏菌單菌落為鮮紅色，不具有致病力，同時根據柯赫氏法則傷根灌根回接確定其致病性。篩選圖1-A中邊緣為白色，中間為粉紅色的青枯雷爾氏菌具有致病力的單菌落進行保存備用。

2.2 菌株SB10的分離和篩選

從土壤樣品和生姜組織中共分離篩選出56株菌落形態有差異的菌株，初篩后得到6株青枯雷爾氏菌生防菌株，經復篩，其中分離自生姜組織的內生菌SB10菌株對青枯雷爾氏菌抑制效果最好，且效果穩定，抑菌圈直徑為3.0 cm，其平板抑菌效果如圖2所示。

2.3 菌株SB10廣譜抑菌效果

由圖3可知，菌株SB10對立枯絲核菌、尖孢鐮刀菌及大麗輪枝孢菌等3種常見病原真菌及柑橘黃單胞桿菌、燕麥嗜酸菌西瓜亞種及青枯雷爾氏菌3種病原細菌具有明顯的抑制作用。其中，貝萊斯芽孢桿菌SB10對大麗輪枝孢菌的抑制效果最明顯，抑菌圈直徑最大可達6 cm，對立枯絲核菌、尖孢鐮刀菌、柑橘黃單胞桿菌、燕麥嗜酸菌西瓜亞種、青枯雷爾氏菌病原菌的抑菌圈直徑為3 cm及以上。

2.4 菌株SB10的鑒定

2.4.1 形態鑒定

由圖4可知，SB10單菌落在營養肉湯瓊脂培養基上呈白色、圓形、不透明狀、表面粗糙，邊緣微凸起，菌落直徑為1～3 mm（圖4-A）。革蘭氏陽性菌，顯微鏡下菌體呈桿狀（圖4-B）。

2.4.2 生理生化鑒定

由表3可知，SB10菌株生理生化指標中，硝酸反應和明膠反應為陽性，可以水解β-葡萄糖苷酶，可以產生堿性磷酸鹽酶、酯酶、類脂肪酶和苯酚-AS-BI-磷酸水解酶。

2.4.3 分子生物學鑒定

由圖5可知，在NCBI數據庫中，菌株SB10與Bacillus velezensis NRRL B-41580聚在了一支上，且2株菌株相似性為99.8%，而且SB10與Bacillus velezensis NRRL B-41580的平均核苷酸相似度（ANI）為98.29%，大于96%，可聚類為同種菌株。綜上所述，菌株SB10鑒定為貝萊斯芽孢桿菌。該菌株作為專利菌株（專利保藏編號為 GDMCC NO.62370）保藏于廣東省微生物菌種保藏中心（2021.10.11）。

2.4.4 基因注釋分析

由表4可知 SB10菌株經基因組測序獲得掃描圖，共獲得4 073 835 bp序列，將其進行拼接，有825個序列。經RAST注釋，有28%的基因被注釋。其中促生相關的基因，注釋到11個鐵載體基因和3個生長素生物合成基因。生長素合成基因有APRT、PRAI、TSa，與鐵載體相關的基因有dhbB、dhbC、dhbE、dhbF。

本研究利用anti SMASH 對菌株SB10進行次生代謝產物基因預測，結果表明，菌株SB10編碼7種次生代謝產物合成基因簇，其中包括與生防相關的基因簇有非核糖體肽合成酶NRPS、聚酮化合物PKS、RiPP-like、T3PKS、Terpene、Trans-AT PKS、Tropodithietic acid，均未比對到數據庫已知信息，可能為該菌株特有。

2.5 菌株SB10對番茄青枯病的防治效果

由表5可知，SB10菌劑對番茄青枯病具有預防作用。相較于A1組（只接病原菌），提前接種SB10菌體重懸液（B1）降低發病率至60%，顯著降低病情指數至15，相對防效達到85%；相較于A2組（只接病原菌），提前接種SB10發酵液（B2）降低發病率至60%，病情指數顯著降低至20，相對防效達到80%。以上結果表明，SB10菌劑無論菌體重懸液還是發酵液，均對番茄青枯病有顯著的預防作用。

SB10菌劑對番茄青枯病具有一定的治療作用，由表5可知，相較于A1組，后接種SB10菌體重懸液（C1）顯著降低發病率至50%，降低病情指數至50，相對防效達到50%；相較于A2組，后接種SB10發酵液（C2）降低發病率至83%，降低病情指數至58，相對防效達到42%。

SB10菌體重懸液和發酵液對青枯雷爾氏菌的作用存在差異，相較于A2，SB10菌體重懸液（B1）和SB10發酵液（B2）處理的發病率軍降低至60%，但SB10菌體重懸液降低病情指數15低于發酵液病情指數20，SB10菌體重懸液對青枯雷爾氏相對防效85%高于發酵液的相對防效80%，雖沒有達到顯著水平，但表明可能是SB10菌體在生防作用中起到主要作用。

2.6 菌株SB10對番茄植株的促生效果

由表6可知，相較于對照組，SB10處理組極顯著促進了番茄植株地上部鮮重增加，且番茄植株的地上部和地下部的鮮重、干重以及株高均增加，但未達到顯著水平。結果表明，SB10具有顯著促生作用，且在持續的觀察中發現SB10菌劑處理組番茄葉片整體更為翠綠，開花更早。

3 討論

生物防治是防控番茄青枯病的有效途徑^［7］，功能菌種貝萊斯芽孢桿菌對常見植物病害病原菌具有廣譜抑菌功能^［32］。平板拮抗試驗結果表明，貝萊斯芽孢桿菌SB10對香蕉枯萎病病原菌尖孢鐮刀菌具有抑制作用，這與萬青等的平板拮抗試驗結果具有一致性，其篩選出的貝萊斯芽孢桿菌B18平板對峙試驗中對尖孢鐮刀菌的抑制率為 44.17%^［33］。本試驗中貝萊斯芽孢桿菌SB10對于水稻紋枯病病原菌立枯絲核菌、棉花黃萎病病原菌大麗花輪枝孢菌病原真菌以及番茄青枯病病原菌青枯雷爾氏菌、哈密瓜角斑病病原菌燕麥嗜酸菌西瓜亞種、柑橘潰瘍病病原菌柑橘黃單胞桿菌等3種病原細菌具有顯著的抑制作用，其抑菌圈直徑大于3 cm，表明菌株SB10具有廣譜抑菌功能，雖然抑菌活性大小有差異，但具有生防菌劑研發的潛力，這與郭佳的試驗結果相似，其篩選的菌株 GS-7 對黃瓜灰霉病病菌、香蕉葉枯病病菌、梨腐爛病病菌和棉花枯萎病病菌都有抑制作用^［34］。

本試驗對SB10進行全基因組測序，通過基因注釋和次生代謝產物基因預測來探尋其潛在的生防促生機制，菌株SB10編碼7種次生代謝產物合成基因簇，其中包括與生防相關的基因簇有非核糖體肽合成酶NRPS、聚酮化合物PKS（polyketides）、RiPP-like、T3PKS、Terpene、Trans-AT PKS、Tropodithietic acid。這些基因簇雖未比對至數據庫中具體產物種類（可能為該菌株特有），但與抗生素的合成緊密相關，如表面活性素、伊枯草素和豐原素等脂肽類物質和聚酮類物質，可以裂解細胞或者抑制病原菌，是生防菌抑菌機制之一^［35］。吳黎明在B.amyloliquefaciens FZB42代謝產物中分離得到聚酮活性物質Bacilysin和Difficidin，對Xanthomona spp.（黃單胞菌）有顯著抑制效果^［36］。劉雪嬌等研究發現，貝萊斯芽孢桿菌 3A3-15 能夠產生次生代謝產物如表面活性素等抑菌物質，能夠抑制尖孢鐮刀菌的孢子萌發率至93.2%，同時會導致菌絲膨大、彎曲、纏繞、螺旋等變形甚至斷裂等^［37］。

番茄生防盆栽試驗中生防預防組B1菌體生理鹽水菌懸液處理組顯著降低發病率至60%，生防治療組C1菌體生理鹽水重懸液處理組顯著降低發病率至50%，這表明SB10菌株成功定殖到土壤中，并對青枯雷爾氏菌起到抑制作用，通過生態位或者養分的競爭抑制病原菌可能是貝萊斯芽孢桿菌SB10防治番茄青枯病的機制之一，這與Perea-Molina等的研究結果相似，其試驗結果表明B. velezensis IBUN 2755，通過特定生態位競爭，減少水稻植株中細菌性谷枯病莢殼伯克霍爾德菌的數量 是該菌株的生防機制之一^［38］。相較于CK，生防預防組菌體發酵液處理組B2和生理鹽水菌懸液處理組B1的發病率均為60%，表明SB10對青枯雷爾氏菌的防治機制可能以競爭作用或者誘導植物免疫抗性為主，SB10發酵液代謝產物起到較小作用。這與 Abo-Elyousr 等的結果具有相似性，其分離出的泛菌PYTOPO2菌體重懸液處理組對青枯雷爾氏菌的抑制作用大于其發酵液的抑制作用^［39］。

貝萊斯芽孢桿菌SB10對青枯雷爾氏菌具有預防和治療作用，鄭雪芳等的研究表明，提前接種耐寒短桿芽孢桿菌FJAT-20261或特基拉芽孢桿菌 FJAT-19700菌液對番茄青枯菌的防效分別達72.73%和67.77%^［3］。貝萊斯芽孢桿菌SB10對青枯雷爾氏菌的預防作用優于其治療作用，可能與青枯菌致病機制相關，青枯菌病原菌侵染植株后在維管束內迅速繁殖，會分泌一些糖類和蛋白，阻塞植株

的運輸器官，導致植物缺失水分養分而死^［40］，由雷爾氏菌引起的青枯病一旦發病，其治療難度增加，因此在農業應用上較推薦提前施用生防菌劑來防治病害的發生。

貝萊斯芽孢桿菌SB10菌劑處理極顯著增加了番茄植株的地上部鮮重，促進了番茄的生長，這與Dhouib等的試驗結果一致，表明貝萊斯芽孢桿菌可能分泌如 IAA、NH和ACC脫氨酶等多種植物激素等物質，能夠促進作物的生長發育^［41］。貝萊斯芽孢桿菌SB10促進番茄植株的生長，提高植物對病原菌的防御能力，降低植物病害的發生可能是其生防機制之一。成娜娜的研究表明，B. velezensis J-4發酵液對辣椒根腐病防治效果達到58.01%，其發酵液顯著促進了辣椒生物量的增加，對辣椒的生長具有促進作用^［42］。菌株對植物的促生機制可以是直接作用，歸因于養分的可利用性、生物固氮、細胞分裂的調控、植物激素的產生以及磷酸鹽的增溶作用和鐵載體的產生或者是間接作用^［3］，包括生態位的競爭、酶或者次生代謝產物等底物的競爭、鐵載體或者揮發性物質的產生，這些物質可以誘導植物系統性抗性^［40］。本試驗對篩選出的促生菌株SB10進行基因功能注釋，注釋到與生長素合成相關的基因APRT、PRAI、TSa，與鐵載體相關的基因dhbB、dhbC、dhbE、dhbF，這些基因可能都與菌株SB10的促生相關。

生物防治在植物病蟲害防治和環境友好治理方面具有巨大的潛力。本試驗篩選出的菌株SB10具有抑菌能力具有廣譜性，且對番茄青枯病具有較好的防治效果，同時可顯著增加番茄地上部的鮮重，可以作為具有促生和生物防治功能的菌劑開發潛力的高性能菌株。

4 結論

本研究從姜瘟病患病生姜組織分離篩選出1株青枯雷爾氏菌拮抗菌株貝萊斯芽孢桿菌SB10。菌株SB10的抑菌能力具有廣譜性，對立枯絲核菌、尖孢鐮刀菌、大麗輪枝孢菌病原真菌和青枯雷爾氏菌、燕麥嗜酸菌西瓜亞種、柑橘黃單胞桿菌病原細菌具有顯著的抑制作用，其抑菌圈直徑均在3 cm及以上。生防盆栽試驗結果表明，菌株SB10對青枯雷爾氏菌具有預防和治療作用，且其預防作用顯著高于治療作用，菌體重懸液的防治效果要優于發酵液，推測菌株SB10對青枯雷爾氏菌的防治機制可能以養分或者生態位競爭作用或者誘導植物免疫抗性為主，SB10發酵液代謝產物起到較小作用。促生盆栽試驗結果表明，接種SB10菌株對番茄植株具有顯著促生作用，可能與生長素合成基因相關。因此，貝萊斯芽孢桿菌SB10可以作為具有促生和生物防治功能的菌劑開發潛力的高性能菌株。

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