







摘要:為開發花生高油相關分子標記,促進花生高油育種,并提高我國食用油自給率,以普通油酸含量高油花生品種HFLS與3個高油酸花生品種(系)花育665、花育668、FB4為親本搭配4個雜交組合,選擇含油量遺傳規律相對簡單且主基因遺傳率最高的HFLS×花育665組合,利用F2群體構建各包括30個個體的極端高油和極端低油混池,連同親本HFLS和花育665進行高通量測序。將花生含油量基因初步定位在A02和A05染色體上,候選區間總長度分別為5.3、5.1 Mb。在候選區間內設計119對SNP和InDel引物,篩選出雙親間具有多態性的InDel標記和SNP標記共14對;利用F2群體驗證這14對標記,經單標記分析發現,A02染色體上的4對標記(Chr02-7、Chr02-25、Chr02-65和Chr02-34)和A05染色體上的1對標記(Chr05-80)與花生含油量顯著相關,表型變異解釋率分別為46.4%、33.2%、34.8%、31.0%和28.3%。其中,標記Chr02-65、Chr02-7、Chr02-25和Chr02-34所對應的物理位置為A02染色體87 578 082~88 550 841 bp之間,區間大小約為0.97 Mb,區間內基因為37個。本研究定位區間與前人報道的無重疊,為花生高油分子育種提供了新的標記。
關鍵詞:花生;主基因+多基因;含油量;BSA;基因定位
中圖分類號:S565.201;S565.203" 文獻標志碼:A
文章編號:1002-1302(2024)19-0051-06
收稿日期:2024-05-17
基金項目:國家花生產業技術體系建設專項(編號:CARS-13);山東省農業重大技術協同推廣計劃(編號:SDNYXTTG-2024-01);山東省農業科學院農業科技創新工程人才類任務(引進國內高層次人才)(編號:CXGC2024F20);山東省農業科學院農業科技創新工程(編號:CXGC2024D19);山東省重點研發計劃(編號:2022TZXD0031);新疆維吾爾自治區重大科技專項(編號:2022A02008-3);廣東省重點領域研發計劃(編號:2020B020219003)。
作者簡介:樊美玉(1998—),女,吉林長春人,碩士研究生,主要從事花生品質遺傳育種研究。E-mail:1026213557@qq.com。
通信作者:姜春姣,碩士,研究實習員,主要從事花生品質改良研究。E-mail:qaujcj@163.com。
我國食用油短缺,食用油自給率不足40%。花生是油、食、蔬兼用及比較優勢的經濟作物。在主要油料作物中,花生單位面積產油量最高,為油菜的2倍、大豆的4倍。在闡明花生高油性狀遺傳規律基礎上定位花生高油基因,將為培育高油花生品種提供技術支撐,對于保障我國食用油脂供應安全、降低對外依存度具有重要意義。
關于花生含油量遺傳規律和相關數量性狀基因座(QTL)定位已有研究報道。不同研究者對花生含油量遺傳規律研究的結論有所不同。于海洋等以農大D666為中心親本配置4個雜交組合及正反交構建F2群體,利用主基因加多基因遺傳模型分析花生含油量遺傳效應,結果表明不同組合受3種遺傳模式控制,存在多個微效基因累加效應[1]。牟大林等構建5個家系世代群體研究花生含油量的遺傳規律,發現含油量的遺傳模型為加性-顯性多基因,主要受多基因遺傳控制[2]。陶順玉等利用親本徐花13和中花6號2個含油量差異顯著的品種通過測序開發插入缺失(InDel)標記并構建遺傳連鎖圖譜,將和含油量相關的QTL定位于A08染色體 1.2 Mb 區段內,表型變異解釋率為11.21%[3]。曲藝偉利用濰花8號×12L49的雜交組合構成140個F2分離群體,通過遺傳圖譜定位3個QTL,表型變異解釋率在5.50%~10.48%之間[4]。張新友等以鄭8903×豫花4號的215個重組自交系群體構建遺傳圖譜定位到2個QTL,表型變異解釋率分別為5.25%和8.24%[5]。
相較于傳統QTL定位方法,集群分離分析(bulked segregant analysis,BSA)法定位更加快速、準確。BSA法是可以快速確定候選區間、識別影響目的性狀的基因或遺傳位點的定位方法,利用具有極端表型的少量個體構建混池,減少大量人力、試劑等耗費成本,增加標記篩選效率,非常實用,應用廣泛,但在花生含油量基因定位上鮮有報道。
本研究以高油花生和普通含油量花生為親本雜交,構建F2分離群體,通過BSA法對控制花生含油量的基因進行初定位研究,開發相關標記,以促進花生高油育種。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
以高油普通油酸花生品種HFLS為中心親本,與高油酸品種(系)花育665(HY665)、花育668(HY668)、FB4搭配4個雜交組合。父母本于2021年5月種植于山東省花生研究所萊西試驗站雜交圃(120.51°E,36.81°N),9月收獲F1代種子。通過花生轉座子分子標記(ahTE)鑒定的真雜種,于2022年5月種植于萊西試驗站田間,2022年9月收獲F2代種子。各組合F2代種子粒數如下:C2105(FB4×HFLS)475粒,C2106(HFLS×FB4)662粒,C2107(HFLS×HY668)619粒,C2108(HFLS×HY665)584粒。
1.2 花生含油量測定與分析
利用 MPA型傅里葉變換紅外光譜儀(德國布魯克光學有限公司) 采集花生籽仁光譜。單粒花生重復掃描3次,每次掃描前將樣品翻轉。采用近紅外光譜儀自帶的OPUS 7.5軟件配合團隊自建近紅外模型由光譜儀導出樣品含油量數據,取3次重復的平均值。
對這4個組合的F2代個體進行近紅外分析測定,采用數量性狀主基因+多基因混合遺傳分析R軟件包SEA v2.0[6]研究花生含油量遺傳規律,選擇遺傳規律相對簡單且主基因遺傳率高的雜交組合用于BSA。
1.3 基因組DNA提取、極端混池的構建和測序分析
從選中的組合F2群體中挑選30個極端高油和30個極端低油個體,連同2個親本HFLS和HY665,取其子葉用十二烷基硫酸鈉(SDS)法進行DNA提取,將30個極端高油和30個極端低油的子葉DNA分別等量混合,構建高油和低油混池。對父母本及2個極端池共4個DNA樣品進行測序分析。DNA檢測合格后,通過Covaris儀器隨機打斷成長度為 350 bp 的片段,完成文庫制備,文庫質檢合格后,根據文庫的有效濃度及數據產出需求在 Illumina 平臺進行測序。BSA全流程包括質控(對下機得到的Raw data進行質控得到Clean data)、參考基因組比對(Clean data與選定的參考基因組進行比對)、變異檢測[根據比對結果進行單核苷酸多態性(SNP)和InDel位點檢測]、標記篩選(根據變異位點質量、測序深度、親本基因型差異情況等條件對標記進行過濾)、性狀定位(針對經上述處理后獲得的位點,選擇合適的統計方法進行混池間等位頻率的差異分析,并定義顯著區間及區間內的候選基因)。過濾不合格read,對得到的clean read,使用Sentieon軟件進行參考基因組比對分析,進行SNP和InDel位點檢測和基因注釋,確定變異位點在基因組上的區域及突變類型。
1.4 花生含油量相關基因定位
篩選親本間純合且有差異的位點,基于篩選出來的多態性標記,計算2個子代在這些標記位點的SNP/InDel-index,并過濾掉子代存在缺失的位點,選取子代indexgt;0.3的位點,按照滑窗的方法對計算獲得的SNP/InDel-index、ΔSNP/InDel-index及相關計算結果進行擬合,取窗口內的平均值作為擬合后的值,其中窗口大小和使用步長根據基因組大小確定,滑窗時使用的窗口大小為1 Mb,使用的步長大小為100 kb。選擇99%或者95%置信水平下,大于閾值的窗口作為候選區間。利用BLAST(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)對候選基因進行篩選和功能預測。
1.5 分子標記的開發
篩選SNP/InDel差異位點,進一步在BSA初定位區間內提取該變異位點前后150~500 bp的序列,在候選區間內變異位點設計均勻分布的引物。引物長度20~25 bp,Tm為55~65 ℃,GC含量 40%~60%,交由青島蔚來生物科技有限公司和通用生物(安徽)股份有限公司合成。用合成的引物對DNA進行PCR擴增,PCR擴增體系(20 μL)為TaqMix 10 μL、DNA模板1 μL、上下游引物各 1 μL、ddH2O 7 μL。反應程序為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 45 s,54 ℃ 45 s,72 ℃ 45 s,35個循環。擴增產物經瓊脂糖凝膠電泳檢測后,進行帶型統計或送青島蔚來生物科技有限公司測序。瓊脂糖凝膠電泳采用3%濃度,電壓90 V,電泳時間30~120 min。
2 結果與分析
2.1 用于花生含油量相關基因初定位的雜交組合選擇
對選中的4個組合的含油量遺傳分析,結果(表1)表明,C2105和C2106最適遺傳模型均為 2MG-EA(2對主基因等加性效應),C2107和C2108最適遺傳模型均為2MG-A(2對主基因加性效應),主基因遺傳率分別為77.52%、41.41%、80.18%和97.42%。在4個組合中,組合C2108含油量遺傳規律較簡單,主基因遺傳率最高,因此用于下一步的基因定位。
2.2 C2108組合雙親及含油量高低池基因組重測序和變異位點檢測
對C2108組合2個F2群體極端池(極端高油池、極端低油池)和雙親(HFLS、HY665)進行全基因組測序(表2),得到read總條數分別為238 468 318、249 325 338、670 132 052、612 796 102 bp,與比對read數基本一致,與參考基因組的比對率(mapping rate)均在99%以上,4個樣品的GC含量在 36.76%~38.32%之間,覆蓋率1X和4X均在96%以上。
檢測到親本HFLS和HY665之間多態性位點SNP和InDel分別共獲得911 743、307 264個,SNP位點的數量顯著多于InDel位點的數量,其中SNP和InDel分別共258 456、827 702個多態性位點分布在基因間區,分別共11 488、16 297個位點位于基因上游。非同義變異位點SNP為10 282個,同義突變位點數量為 5 907 個。
2.3 對C2108組合含油量區域關聯和候選基因篩選
ΔSNP/InDel-index曼哈頓圖如圖1所示,選擇99%或者95%置信水平下,大于閾值的窗口作為候選區間,最終得到2號染色體區域83 350 000~88 650 000 bp 和5號染色體區域23 800 000~28 900 000 bp,區域總長度分別為5.3、5.1 Mb,分別包含148、251個基因。
2.4 候選區間內分子標記分析
根據BSA結果,在2號和5號染色體定位區間共設計119對PCR引物,利用親本HFLS和HY665的DNA篩選出雙親間有多態性的InDel標記和SNP標記共14對(表3)。
其中,從初期設計的20對InDel引物中篩選出3對(引物Chr02-55、Chr02-65和Chr05-80),其PCR產物條帶清晰且目標片段大小差異顯著。進一步利用這3對引物對F2代高油和低油花生各10個樣品進行基因型分析。圖2為其中2對InDel引物擴增產物的膠圖。
根據染色體定位區間內特異位點所設計的SNP引物,用雙親DNA擴增,其PCR產物在瓊脂糖凝膠上呈清晰可辨的單一條帶,則直接進行Sanger測序,利用DNAstar比對序列,最終發現2號染色體上雙親PCR產物目標位點存在差異的SNP引物有11對,有堿基差異的進一步用子代驗證(圖3、圖4)。
根據F2代個體基因型與表型數據,分別對14個位點進行獨立樣本t檢驗,最終得到5個位點不同基因型間含油量存在顯著或極顯著差異(表4)。
分析結果(表4)表明,有5個標記(Chr02-7、Chr02-25、Chr02-65、Chr02-34和Chr05-80)經t檢驗可知P值均小于0.05。其中1個標記(Chr02-7)的P值小于0.01。相關系數的平方值即為表型解釋變異率,經相關性分析可知,標記Chr02-7、Chr02-25、Chr02-65、Chr02-34和Chr05-80的表型解釋變異率分別為46.4%、33.2%、34.8%、31.0%和28.3%。
其中標記Chr02-65、Chr02-7、Chr02-25、Chr02-34對應的物理位置為2號染色體 87 578 082~88 550 841 bp之間,該區間內基因共37個。對這4個標記物理位置所對應的區間內基因通過BLAST軟件多個數據庫注釋結果推測蛋白質編碼基因,對該區域內的基因在GO數據庫(http://www.geneontology.org/)中查找基因注釋。其中3個基因在基因注釋文庫中功能未知,GO富集到的基因分細胞定位、分子功能、生物學過程3類,發現參與蛋白質的合成代謝類基因最多,其余富集到的基因與氧化還原過程、信號轉導和木質素分解代謝過程等相關。經BLAST軟件分析基因注釋結果顯示,基因W9RD48可能參與脂質代謝過程,其他基因可能存在幾種功能或者參與多個轉導合成過程,更多的功能還需進一步探索。
3 討論與結論
關于花生含油量相關QTL鑒定已有多個研究報道。張勝忠等利用花育36號和高油品系6-13為親本,構建了181個重組自交系,通過SNP及SSR標記的連鎖圖上定位到5個QTL,表型變異解釋率(PVE)為16.53%~17.39%[7];Jadhav等利用雜交組合TMV2×TMV2-NLM構建出含432個RIL家系,采用700個標記構建遺傳圖譜定位到11個QTL,其中含2個主效QTL[8];Pandey等利用2個RIL群體研究花生含油量QTL定位分別檢測到10、8個QTL,PVE分別為3.03%~25.52%和3.93%~14.07%[9]。李玉穎等利用BSA法定位到花生籽仁含油量相關區間位于A01的 15.17~18.38 Mb區間內[10],Gomez等利用BSA-seq法定位到花生含油量1個QTL,PVE達到11.03%[11]。Sun等利用豫花15×W1202構建出含329個家系的RIL群體對花生品質性狀進行全基因組測序,檢測到和含油量相關的主效QTL位于Arahy.05的6.34~7.83 Mb[12],同樣的,Wilson等研究定位到Arahy.05的21.79 Mb位置上[13],但均與本研究所定位到A05染色體候選區間并無重疊,說明本研究候選區域內存在新的QTL位點,可進行進一步研究。
本研究利用HFLS×HY665為雜交組合構建F2分離群體,針對該組合進行BSA定位,通過分子標記縮小區間,為進一步研究花生含油量相關基因和實施標記輔助選擇奠定了基礎。
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