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不同培養(yǎng)條件對小麥根際可培養(yǎng)微生物影響

2024-02-27 15:03:18呂路瓊歐陽由男葉淑珍游雨欣李斌王艷麗
浙江農(nóng)業(yè)科學(xué) 2024年2期
關(guān)鍵詞:變形植物功能

呂路瓊,歐陽由男,葉淑珍,游雨欣,李斌,王艷麗

(1.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 植物保護(hù)與微生物研究所 省部共建農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全危害因子與風(fēng)險防控國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 浙江省國家農(nóng)作物品種抗性鑒定試驗(yàn)站,浙江 杭州 310021;2.中國水稻研究所,浙江 杭州 310006;3.浙江大學(xué) 生物技術(shù)研究所,浙江 杭州 310058)

植物在生長過程中為微生物的生長和增殖提供大量生態(tài)位,如植物的內(nèi)部[1]、根際[2]和葉際[3],這些微生物群體及其基因組統(tǒng)稱為植物微生物組[4]。其中,與植物根部相關(guān)的微生物具有豐富多樣性,大約有數(shù)萬種,因而復(fù)雜的根際微生物又被稱為植物的第二基因組[2]。伴隨著植物的生命周期,根際微生物群落在植物營養(yǎng)和健康方面具有巨大潛力,如維持土壤功能、產(chǎn)生植物激素、抑制病原菌等多種途徑,促進(jìn)植物的生長發(fā)育、增強(qiáng)植物抗病性,是植物健康和生產(chǎn)力的關(guān)鍵因素[5]。由于根際微生物的復(fù)雜和重要程度,近年來受到了廣泛關(guān)注[6]。

目前分離和培養(yǎng)植物有益微生物具有重要意義。這些分離到的微生物可以作為植物菌劑促進(jìn)植物生長[7]、抵御生物脅迫[8]與非生物脅迫[9]。然而受培養(yǎng)基類型、培養(yǎng)條件等多種因素影響,在微生物培養(yǎng)過程中可實(shí)現(xiàn)不同種類微生物富集。例如在蘆薈根內(nèi)生細(xì)菌群落組成的培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn)變形菌門在植物混合提取物培養(yǎng)基上為優(yōu)勢菌門,厚壁菌門在化學(xué)合成培養(yǎng)基上為優(yōu)勢菌門[10]。并且部分有益微生物在群體中比例較低,分離培養(yǎng)時很容易忽略,難以使研究者完整地理解植物微生物組及其整體功能。目前高通量測序技術(shù)已被廣泛采用[11],因?yàn)樗鼈兛梢栽谝粋€樣本中鑒定出數(shù)千到數(shù)百萬個序列,揭示稀有微生物物種的豐度。

為探究不同培養(yǎng)方式對小麥根際微生物群落結(jié)構(gòu)影響,本研究對小麥根際微生物取樣后置于兩種培養(yǎng)基與兩個充氧量進(jìn)行培養(yǎng),5 d后進(jìn)行16S rRNA高通量測序,從而揭示小麥可培養(yǎng)根際微生物群落特征,為小麥根際微生物資源開發(fā)與利用提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 樣品采集

選取中國水稻研究所試驗(yàn)田(杭州市富陽區(qū)黃田畈)種植的冬小麥揚(yáng)麥20植株,試驗(yàn)田面積1 334 m2,按照“五點(diǎn)取樣法”,每個取樣點(diǎn)選取生長健壯一致的小麥植株3株,先用農(nóng)具將冬小麥植株松土,取出根系,除去根系上附著的泥土顆粒,沿植株基部剪去根系,稱重100 g根系,用1 L蒸餾水清洗麥根,用定性濾紙過濾,即為冬小麥根際微生物菌種,保存于4 ℃冰箱備用。

1.2 培養(yǎng)基

大米加工的細(xì)米糠 (M培養(yǎng)基):米糠50 g(由浙江國稻高科技種業(yè)有限公司稻米加工廠提供),蒸餾水1 000 mL。

LANDY改良配方培養(yǎng)基(L培養(yǎng)基):葡萄糖20 g,L-谷氨酸鈉5 g,硫酸鎂0.5 g,氯化鉀0.5 g,蒸餾水1 000 mL。

LANDY培養(yǎng)基(D 培養(yǎng)基):葡萄糖 20 g,L-谷氨酸鈉5 g,七水硫酸鎂0.5 g,氯化鉀0.5 g,硫酸亞鐵0.15 mg,硫酸錳5 mg,硫酸銅0.16 mg,蒸餾水1 000 mL。

1.3 培養(yǎng)方法

將100 mL根際土壤溶液分別接種于M培養(yǎng)基(M處理)、L 培養(yǎng)基(L處理)和D 培養(yǎng)基(D處理)中,在微生物培養(yǎng)基(自主研發(fā),ZL202120770944.2)中進(jìn)行培養(yǎng),培養(yǎng)溫度為 28.5 ℃、充氧泵空氣流量為100 L·min-1。將100 mL根際土壤溶液接種于L培養(yǎng)基,置于發(fā)酵罐(型號:JBF-100)培養(yǎng)作為對照,培養(yǎng)溫度為28.5 ℃,充氧泵空氣流量為8 L·h-1。培養(yǎng)5 d后收集樣品并盡快測樣。

1.4 DNA提取

根據(jù)制造商的說明,使用OMEGA土壤DNA分離試劑盒(OMEGA,Bio-Tek,Norcross,Norcross,GA,USA)從樣品中提取總基因組DNA。使用NanoDrop (ND-1000)分光光度計(賽默飛世爾科學(xué)公司,沃爾瑟姆,馬薩諸塞州,美國)測定提取DNA的質(zhì)量。采用通用正向引物338F (5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCA-3′)和通用反向引物806R (5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′)對可培養(yǎng)根際細(xì)菌16S rRNA基因V3~V4區(qū)進(jìn)行PCR擴(kuò)增。將純化的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行等量混合,連接測序接頭,構(gòu)建測序文庫,Illumina PE250上機(jī)測序。

1.5 數(shù)據(jù)處理

使用R語言繪制箱線圖,使用GraphPad Prism 8進(jìn)行顯著性分析,并繪制堆積柱形圖與條形圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 Alpha多樣性分析

為分析不同培養(yǎng)基對大麥根際微生物培養(yǎng)的群落差異,本研究分別使用M與L 2種培養(yǎng)基,在微生物培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),以置于發(fā)酵罐培養(yǎng)基中的L培養(yǎng)基作為對照,在培養(yǎng)5 d后收集不同處理的微生物樣本(每個處理7個重復(fù)),進(jìn)行16S rRNA擴(kuò)增子測序。共獲得有效序列2 675 135條,平均每個樣本127 387條序列,對應(yīng) 17個門、28個綱、49個目、74個科、124個屬。

Alpha多樣性是指特定生境或者生態(tài)系統(tǒng)內(nèi)的物種的豐富程度與多樣性情況。Chao1指數(shù)主要關(guān)心樣本的物種豐富度信息,數(shù)值越大,多樣性越高。Shannon指數(shù)綜合體現(xiàn)物種的豐富度和均勻度,數(shù)值越大,多樣性越高。如圖1所示,3種處理的Alpha多樣性存在顯著差異。其中D處理與M處理Chao1指數(shù)顯著高于L處理,M處理的Shannon指數(shù)顯著高于L處理且與D處理無顯著差異。說明D處理與M處理豐富度與多樣性高于L處理。

不同處理間沒有相同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。A—Chao1指數(shù);B—Shannon指數(shù)。圖1 微生物群落 Alpha多樣性分析Fig.1 Alpha diversity analysis of microbial community

2.2 群落組成分析

如圖2中A所示,在綱水平上,小麥根際可培養(yǎng)微生物群落主要由γ-變形菌綱(Gammaproteobacteria),擬桿菌綱(Bacteroidia)和芽孢桿菌綱(Bacilli)組成。其中D處理中γ-變形菌綱、擬桿菌綱和芽孢桿菌綱分別占比66.40%,17.44%,5.54%;L處理中γ-變形菌綱、擬桿菌綱和芽孢桿菌綱分別占比38.13%,3.61%,24.70%;M處理中γ-變形菌綱、擬桿菌綱和芽孢桿菌綱分別占比81.33%,3.09%,13.56%。如圖2中B所示,在屬水平上,大麥根際可培養(yǎng)微生物群落主要由克雷伯氏菌屬(Klebsiella),普雷沃氏菌屬(Prevotella_9)和氣單胞菌屬(Aeromonas)組成。其中D處理中克雷伯氏菌屬,普雷沃氏菌屬和氣單胞菌屬分別占比43.88%,12.35%,5.86%;L處理中克雷伯氏菌屬,普雷沃氏菌屬和氣單胞菌屬分別占比8.61%,31.36%,12.72%;M處理中克雷伯氏菌屬,普雷沃氏菌屬和氣單胞菌屬分別占比9.41%,16.39%,24.00%。以上研究結(jié)果表明,大麥根際可培養(yǎng)微生物具有豐富的多樣性,且不同培養(yǎng)條件對大麥根際微生物富集類群有很大差別。

A—綱水平;B—屬水平。圖2 小麥根際可培養(yǎng)細(xì)菌群落組成分析Fig.2 Analysis of the composition of cultivable bacterial communities in the wheat rhizosphere

2.3 FAPROTAX功能預(yù)測

FAPROTAX功能預(yù)測是利用多個已發(fā)表的可培養(yǎng)菌文章及自身的原核功能數(shù)據(jù)庫,根據(jù)輸入運(yùn)算分類單元(OTU)信息提取功能完成預(yù)測。圖3為3個處理間對應(yīng)細(xì)菌群落功能注釋預(yù)測的結(jié)果,不同處理樣品之間細(xì)菌群落功能注釋的預(yù)測結(jié)果存在很大差別。把細(xì)菌群落功能注釋排名前10的表現(xiàn)出來,分為5個大類:化能異養(yǎng)、發(fā)酵、碳循環(huán)、氮循環(huán)、鐵呼吸。D處理中與發(fā)酵、有氧化學(xué)異養(yǎng)、硝酸鹽還原、固氮作用等功能相關(guān)的細(xì)菌群落相對豐度最高;L處理中與氮?dú)夂粑喯跛岷粑皝喯跛岚被裙δ芟嚓P(guān)的細(xì)菌群落相對豐度最高;M處理中與化能異樣、芳香族化合物降解和鐵呼吸作用等功能相關(guān)的細(xì)菌群落相對豐度最高。以上研究結(jié)果表明,大麥根際微生物含有多類植物有益菌,且不同培養(yǎng)方式會通過影響可培養(yǎng)微生物群落組成而影響其功能。

圖3 小麥根際可培養(yǎng)微生物功能預(yù)測Fig.3 Function prediction of cultivable microorganisms in wheat rhizosphere

3 結(jié)論與討論

在植物生長過程中,土壤微生物對其生長發(fā)育有著關(guān)鍵作用,因此,研究土壤微生物對促進(jìn)農(nóng)作物生長并提高產(chǎn)量具有關(guān)鍵作用[12]。然而自然環(huán)境中的微生物大多處于“貧營養(yǎng)”但營養(yǎng)元素豐富的狀態(tài),實(shí)驗(yàn)室中很難對自然環(huán)境進(jìn)行模擬。同時在分離培養(yǎng)過程中,富營養(yǎng)細(xì)菌大量生長抑制寡營養(yǎng)細(xì)菌生長。目前能夠在微生物培養(yǎng)基上形成菌落的細(xì)菌數(shù)量通常只占土壤中細(xì)菌總數(shù)的一小部分[13]。研究發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)基類型和氧氣含量都會影響根際微生物群落組成[14]。本實(shí)驗(yàn)分別選用天然培養(yǎng)基與化學(xué)培養(yǎng)基,在兩種充氧量下培養(yǎng)小麥根際微生物,5 d后采用16S rRNA高通量測序,以研究培養(yǎng)基類型與充氧量對小麥根際微生物影響。

在本實(shí)驗(yàn)中,使用高充氧量(微生物培養(yǎng)基)進(jìn)行培養(yǎng)時,米糠培養(yǎng)基內(nèi)細(xì)菌群落Alpha多樣性高于LANDY改良配方培養(yǎng)基,表明天然培養(yǎng)基比化學(xué)培養(yǎng)基更有助于微生物培養(yǎng)。M處理中變形菌綱相對豐度最高,表明變形菌綱更易受培養(yǎng)基類型影響,該結(jié)果與前人[11]結(jié)果一致。自然培養(yǎng)基中含有大量未知天然營養(yǎng)成分,更適于微生物生長。在同時使用LANDY改良配方培養(yǎng)基時,低充氧量(發(fā)酵罐)的微生物群落Alpha多樣性高于高充氧量環(huán)境(微生物培養(yǎng)基),說明根際微生物存在于土壤內(nèi)層,在培養(yǎng)過程中并不需要大量氧氣。L處理中擬桿菌綱和芽孢桿菌綱相對豐度最高,表明這兩種菌更易受充氧量影響。氧氣含量在微生物培養(yǎng)過程中起到關(guān)鍵作用,這與前人[15]結(jié)果一致。

對小麥根際可培養(yǎng)微生物進(jìn)行功能預(yù)測發(fā)現(xiàn)其含有很多促生菌,主要與化能異養(yǎng)、發(fā)酵、碳循環(huán)、氮循環(huán)、鐵呼吸等功能相關(guān)。由此推測小麥根際富含的優(yōu)勢菌群對植物生長與健康具有重要作用。γ-變形菌綱在生理、形態(tài)和代謝等方面呈現(xiàn)出豐富的多樣性,對環(huán)境適應(yīng)性強(qiáng),繁殖速度快,在生態(tài)系統(tǒng)尤其是土壤系統(tǒng)中占主導(dǎo)地位[16,17]。γ-變形菌綱對碳氮循環(huán)具有重要意義[18],也在適應(yīng)環(huán)境變化和抵御逆境脅迫方面發(fā)揮重要作用。擬桿菌綱與變形菌綱也是氮循環(huán)的主要貢獻(xiàn)者。研究發(fā)現(xiàn),隨著施氮量的增加,優(yōu)勢類群中擬桿菌和變形菌相對豐度提高。嗜中性微好氧 FeOB均為變形菌門[19]。

本研究通過測定3種培養(yǎng)條件對小麥根際可培養(yǎng)微生物影響,結(jié)果表明,培養(yǎng)基類型和充氧量會顯著影響小麥根際微生物富集。小麥根際微生物含有大量與植物促生相關(guān)微生物,對農(nóng)作物生長具有關(guān)鍵作用。

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