






摘要:【目的】探究外源褪黑素(melatonin, MT)對鹽脅迫下棉花生長發育的調控效應?!痉椒ā恳試烂?號為材料,采用室內盆栽方法,土壤含鹽量為0.3%(質量分數),篩選出適宜的MT濃度后,設置4個處理:澆灌清水+噴施清水(CK)、澆灌鹽水+噴施清水(S)、澆灌清水+噴施MT(MT)和澆灌鹽水+噴施MT(MS),研究了不同處理下棉花的株高、莖粗、葉面積、葉綠素相對含量(用soil and plant analyzer development,SPAD值代表)、單株生物量、根冠比、抗氧化酶活性、活性氧含量以及滲透調節物質含量的變化,并對上述指標進行了相關分析。【結果】與CK處理相比,S處理顯著降低棉花的株高、莖粗、葉面積、SPAD值、單株地上部鮮物質質量、地下部鮮物質質量、地上部干物質質量、地下部干物質質量,顯著提高根冠比;在鹽脅迫處理后期,S處理顯著降低葉片超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)、過氧化物酶(peroxidase, POD)和過氧化氫酶(catalase, CAT)活性,顯著提高過氧化氫、超氧陰離子和丙二醛的含量,顯著降低可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸的含量。與S處理相比,鹽脅迫下葉片噴施200 μmol·L-1 MT(MS處理)可顯著提高棉花的株高、莖粗、葉面積、SPAD值、單株地上部與地下部的鮮物質質量及地上部干物質質量,顯著降低根冠比,顯著提高SOD、POD和CAT活性,顯著降低過氧化氫、超氧陰離子和丙二醛的含量,顯著提高可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸的含量。棉株地上部干物質質量與株高、莖粗、葉面積、SPAD值、地上部鮮物質質量、地下部鮮/干物質質量、SOD活性、POD活性、CAT活性、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、脯氨酸含量均呈顯著正相關關系,而與超氧陰離子含量、丙二醛含量顯著負相關。【結論】葉面噴施200 μmol·L-1 MT能夠有效緩解高鹽環境(土壤含鹽量為0.3%)對棉花產生的氧化脅迫與滲透脅迫,促進棉花生長,提高耐鹽能力。
關鍵詞:棉花;褪黑素;鹽脅迫;抗氧化酶;滲透調節物質;生物量
Effects of exogenous melatonin on the growth and development, antioxidant enzyme activity, and osmotic adjustment substance content of cotton under salt stress
Song Chen1, 2, Liu Shasha1, 2, Wang Jian1, 2, Ma Xinying1, 2, Liu Liantao2, Zhang Ke2, Zhang Yongjiang2, Sun Hongchun2, Bai Zhiying1, 2*, Li Cundong2*
(1. College of Life Science, Hebei Agricultural University, Baoding, Hebei 071000, China; 2. College of Agronomy, Hebei Agricultural University/State Key Laboratory of North China Crop Improvement and Regulation/Key Laboratory of Crop Growth Regulation of Hebei Province, Baoding, Hebei 071000, China)
Abstract: [Objective] This study aims to investigate the regulatory effect of exogenous melatonin (MT) on cotton growth and development under salt stress. [Methods] Guoxinmian 9 was used as the material, and the indoor pot method was adopted with the soil salt content of 0.3%, and after screening out the appropriate MT concentration, four treatments were set: irrigate water + spray water (CK), irrigate salt water + spray water (S), irrigate water + spray MT (MT), and irrigate salt water + spray MT (MS). The plant height, stem diameter, leaf area, relative chlorophyll content (soil and plant analyzer development, SPAD value), biomass per plant, root-shoot ratio, antioxidant enzyme activity, reactive oxygen species content, and osmotic adjustment substance content of cotton under different treatments were studied. And correlation analysis of the above indexes was carried out. [Results] Compared with CK treatment, S treatment significantly reduced plant height, stem diameter, leaf area, SPAD value, aboveground fresh matter mass, underground fresh matter mass, aboveground dry matter mass, and underground dry matter mass, and significantly increased root-shoot ratio of cotton. In the later stage of salt stress treatment, S treatment significantly reduced the activities of superoxide dismutase (SOD), peroxidase (POD), and catalase (CAT) in cotton leaf; significantly increased the contents of hydrogen peroxide, superoxide anion, and malondialdehyde; and significantly decreased the contents of soluble sugar, soluble protein, and proline. Compared with S treatment, foliar spraying 200 μmol·L-1 MT under salt stress (MS treatment) significantly increased plant height, stem diameter, leaf area, SPAD value, aboveground and underground fresh matter mass, and aboveground dry matter mass per plant; significantly reduced root-shoot ratio; significantly increased SOD, POD, and CAT activities; significantly reduced the contents of hydrogen peroxide, superoxide anion, and malondialdehyde; and significantly increased the contents of soluble sugar, soluble protein, and proline. Aboveground dry matter mass was significantly and positively correlated with plant height, stem diameter, leaf area, SPAD value, aboveground fresh matter mass, underground fresh and dry matter mass, SOD activity, POD activity, CAT activity, soluble sugar content, soluble protein content, and proline content; while was significantly and negatively correlated with superoxide anion content and malondialdehyde content. [Conclusion] Foliar spray 200 μmol·L-1 MT can effectively alleviate the oxidative stress and osmotic stress of cotton under high salt environment (soil salt content of 0.3%), promote cotton growth, and improve salt tolerance of cotton.
Keywords: cotton; melatonin; salt stress; antioxidant enzymes; osmotic adjustment substance; biomass
土壤鹽漬化是1種主要的環境風險,且隨著人口增加、工業污染加重、不良灌溉習慣日益加劇,土地鹽漬化面積逐年增加,嚴重影響了植物的生長發育[1]。鹽脅迫主要通過影響作物種子萌發、生長和開花結果,造成作物產量與品質下降[2-3]。研究發現,鹽漬化土壤中高濃度的Na+和Cl-打破了植物體內離子動態平衡,導致種子萌發率降低[4-5]。鹽脅迫會使幼苗期植物吸水能力下降,引起滲透脅迫,導致植物體內水分虧缺和營養失衡,植株生長緩慢[6]。鹽脅迫導致植物葉面積、葉綠素含量和類胡蘿卜素含量顯著降低,從而對光合作用產生不利影響,致使地上部和地下部的鮮物質質量及干物質質量降低[7-8]。高濃度的鹽脅迫還會引起植物體內活性氧(reactive oxygen species, ROS)過度累積,加重膜脂過氧化程度,導致丙二醛(malondialdehyde, MDA)過量產生。為了減輕ROS對細胞產生的危害,植物可通過調節抗氧化系統平衡減少ROS的累積。超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)、過氧化物酶(peroxidase, POD)和過氧化氫酶(catalase, CAT)是植物體內酶促防御系統的重要保護酶,它們能有效分解活性氧自由基,從而減輕逆境對植物的危害[9-10]。研究發現,在150 mmol·L-1 NaCl處理前期,水稻體內抗氧化酶活性升高,而處理中后期抗氧化酶活性降低[11]。150 mmol·L-1 NaCl處理降低了黃瓜幼苗的抗氧化酶活性,導致ROS與MDA累積[12]。鹽脅迫下,植物為了維持細胞內的滲透壓平衡狀態,會積累可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸等物質,以緩解鹽脅迫的不利影響[13]。Wang等[14]研究表明,0.3%(質量分數)NaCl脅迫處理前期水稻幼苗根系中可溶性糖、可溶性蛋白含量增加。
褪黑素(melatonin, MT)是吲哚胺類化合物,具有很強的抗氧化能力,能夠有效清除植物體內的自由基,以減輕氧化脅迫產生的損傷[15-16]。研究發現,150 mmol·L-1 NaCl條件下,100 μmol·L-1 MT處理增加了玉米葉片中葉綠素含量,并提高了抗氧化酶活性,從而增強了玉米的耐鹽性[8]。鹽脅迫下MT可通過提高SOD、POD、CAT等抗氧化酶的活性來降低ROS含量,調節氧化還原穩態[17]。在150 mmol·L-1 NaCl條件下,10 μmol·L-1 MT處理能夠增加棉花根系的可溶性糖和可溶性蛋白含量,維持細胞的完整性,緩解鹽脅迫對棉花根系發育的抑制效應[18]。
棉花為錦葵科棉屬植物,是我國重要的經濟作物之一。棉花相對耐鹽,但高濃度的鹽脅迫仍會對棉花的生長發育以及產量形成造成較大影響[19-20]。目前,有關MT對鹽脅迫下棉花影響的研究主要集中在種子萌發與幼苗生長等方面[18-21],關于MT對鹽脅迫下棉花生長發育后期調控效應的研究報道較少。鑒于此,本研究通過室內盆栽試驗,設置鹽脅迫條件及MT處理,明確MT對鹽脅迫下棉花生育期內植株形態、生物量和葉片生理生化指標的影響,為MT在棉花生產中的應用提供參考。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
供試棉花材料為國欣棉9號。2023年4月至2024年1月種植于河北農業大學智能氣候室。MT購買于Sigma公司,用95%(體積分數)的乙醇配成200 mmol·L-1母液,儲存于-20 ℃冰箱,使用時稀釋成相應濃度的MT溶液。
1.2 MT濃度篩選
采用土培種植方式,土壤由深層土和黃沙按3∶1的體積比混合而成。選取健康飽滿的棉花種子,消毒浸種后在培養箱中(25 ℃,濕度60%)避光保存24 h。篩選露白程度一致的棉種播種到盆缽中,每個處理10盆,每盆10粒,在河北農業大學科研大樓智能氣候室進行培養,室內晝/夜溫度為28 ℃/25 ℃,光照14 h/黑暗10 h,相對濕度為45%~50%,光照強度為300 μmol·m-2·S-1。待棉苗長出1片真葉后間苗,每盆僅保留1株生長良好的棉苗。在培養過程中,采用稱量法精確控制灌水量,保持土壤濕潤。
NaCl處理:棉苗三葉期,根據土壤質量及土壤含水量,精確稱取適量NaCl,使用蒸餾水將其溶解。隨后將制備完成的NaCl溶液均勻澆灌至盆栽土壤中,確保土壤中的鹽分含量達到0.3%(質量分數)。對于其他非鹽脅迫處理,同時澆灌等量蒸餾水。為了防止鹽分隨水分流失,每個花盆下放置1個托盤,用于收集可能滲出的溶液,并將托盤中收集的溶液重新澆灌回相應的花盆中,以確保土壤含鹽量的穩定性[22]。
MT處理:鹽脅迫或清水處理后第6天開始,每隔1 d對植株葉面噴施不同濃度(50、100、200、500 μmol·L-1)的MT溶液(分別記為MT50、MT100、MT200、MT500),避光噴施,共噴施7次,每次以葉片正反兩面附著一層小液珠且不滴落為標準。以噴施等量清水作為對照。第7次噴施后1 d,測定棉花的株高、莖粗、葉面積與葉片葉綠素相對含量(soil and plant analyzer development, SPAD值),每3 d(即鹽脅迫處理后20 d、23 d、26 d、29 d、32 d)測定1次,篩選出最適宜的MT處理濃度。
1.3 試驗處理
設置4個處理:澆灌清水+噴施清水(CK),澆灌鹽水+噴施清水(S),澆灌清水+噴施MT(MT),澆灌鹽水+噴施MT(MS)。每個處理10株。棉花播種、培養條件及鹽脅迫處理同1.2。
鹽脅迫或清水處理后第6天噴施篩選濃度的MT溶液,噴施方法同1.2。第7次噴施后1 d,測定棉株的生長和生理指標,每15 d(即鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d)測定1次。
1.4 形態指標測定
垂直測量子葉節至棉花頂端生長點的距離即為株高。于子葉節上方1 cm處使用游標卡尺測量莖粗。葉面積=葉片長度×葉片寬度×0.75。
1.5 鮮物質質量和干物質質量測定
地上部、地下部的鮮物質質量和干物質質量:在鹽脅迫處理后80 d,從子葉節處將棉花分為地上部和地下部,并分別進行稱量,獲得地上部、地下部的鮮物質質量。然后將地上部和地下部放入烘箱,先在105 ℃殺青30 min,然后在80 ℃烘干72 h至質量恒定,測定地上部、地下部的干物質質量。
根冠比:地下部干物質質量與地上部干物質質量之比。
1.6 生理生化指標測定
使用SPAD-502葉綠素計(日本柯尼卡美能達公司)測定棉花主莖倒三葉的SPAD值。
每個處理選取3株棉花,取主莖倒三葉,用錫紙包裹,使用液氮速凍并保存于-80 ℃冰箱。用南京建成生物工程研究所的總超氧化物歧化酶測定試劑盒、過氧化物酶測定試劑盒、過氧化氫酶測定試劑盒分別測定樣品的SOD、POD和CAT活性,用植物可溶性糖含量測試盒、總蛋白測定試劑盒和脯氨酸測定試劑盒分別測定可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸的含量,用過氧化氫測定試劑盒、丙二醛測定試劑盒分別測定過氧化氫(H2O2)和MDA的含量。用索萊寶生物公司的超氧陰離子含量檢測試劑盒測定超氧陰離子(superoxide anion)含量。
1.7 數據處理與分析
使用Microsoft Office Excel 2019整理相關數據,利用SPSS 27.0.1進行單因素方差分析,使用Origin 2021進行相關分析,采用GraphPad Prism 8.0繪圖。
2 結果與分析
2.1 MT濃度的篩選
從圖1可以看出,處理后23 d、26 d、29 d、32 d,相較于CK處理(澆灌清水+噴施清水),S處理(澆灌鹽水+噴施清水)下棉花的株高、莖粗、葉面積以及SPAD值均顯著下降(處理后23 d的株高除外)。鹽脅迫下噴施MT增加了棉花的株高、莖粗、葉面積和SPAD值;但隨著MT濃度的升高,不同時期的棉花株高、莖粗、葉面積和SPAD值均呈先升高后降低趨勢,其中MT濃度為200 μmol·L-1(MT200)時,棉花的株高、莖粗、葉面積及SPAD值最高,且在處理后26 d、29 d、32 d均與S處理差異顯著。說明200 μmol·L-1的MT處理能夠有效促進鹽脅迫下棉花植株的生長,選擇200 μmol·L-1的MT開展進一步的研究。
2.2 外源MT對鹽脅迫下棉花株高、莖粗和葉面積的影響
與CK處理相比,S處理下棉花的株高、莖粗和葉面積顯著降低(鹽脅迫處理后20 d的莖粗和葉面積除外)(圖2),說明鹽脅迫顯著影響棉株生長。
與CK處理相比,MT處理下棉花株高顯著增加14.55%~28.46%,莖粗增加8.35%~12.15%,葉面積增加12.32%~22.94%。與S處理相比,MS處理下棉花株高顯著增加15.89%~18.40%,莖粗增加4.84%~8.71%,葉面積增加13.89%~19.39%,但均低于CK處理。表明在正常條件和鹽脅迫下噴施MT均能促進棉株生長。
2.3 外源MT對鹽脅迫下棉花葉片SPAD值的影響
隨著生育進程推進,各處理的棉花葉片SPAD值呈現先升高后降低的變化趨勢。與CK處理相比,MT處理的棉花葉片SPAD值升高,在鹽脅迫處理后50 d、65 d分別顯著升高8.02%、7.72%。與CK處理相比,S處理下棉花葉片SPAD值顯著降低10.48%~13.61%。與S處理相比,MS處理顯著提高了棉花葉片SPAD值,在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d的增幅分別為12.63%、10.78%、11.50%、11.43%和13.17%(表1)。表明鹽脅迫顯著降低棉花葉片的SPAD值,外源MT處理能夠顯著提高鹽脅迫下棉花葉片的SPAD值。
2.4 外源MT對鹽脅迫下棉花生物量及根冠比的影響
鹽脅迫處理后80 d,MT處理的棉花地上部鮮物質質量較CK處理顯著增加45.00%,但地下部鮮物質質量無顯著差異。與CK處理相比,S處理的棉花地上部、地下部鮮物質質量分別顯著降低49.75%、43.39%。與S處理相比,MS處理的棉花地上部、地下部鮮物質質量分別顯著增加41.06%、34.46%(圖3A)。MT處理的棉花地上部干物質質量較CK處理顯著增加46.38%,但地下部干物質質量無顯著差異。S處理下棉株地上部、地下部干物質質量分別較CK處理顯著降低54.17%和26.62%。與S處理相比,MS處理下棉株地上部干物質質量顯著增加68.70%,棉株地下部干物質質量增加17.26%(圖3B)。說明鹽脅迫顯著抑制棉花生物量的累積,噴施MT可以緩解這種抑制效應。
與CK處理相比,MT處理降低了棉花根冠比,但二者之間無顯著差異;S處理下棉花的根冠比顯著提高58.78%。與S處理相比,MS處理下棉花根冠比顯著降低29.80%(圖3C)。說明鹽脅迫會導致棉花根冠比顯著升高,鹽脅迫下噴施MT可以降低棉花的根冠比,但在正常條件下噴施MT對根冠比的影響并不顯著。
2.5 外源MT對鹽脅迫下棉花抗氧化酶活性的影響
隨著生育進程推進,CK、MT處理下棉花葉片的SOD、POD、CAT活性均呈下降趨勢;S和MS處理下,棉花葉片的SOD、POD活性呈先升高后降低趨勢,CAT活性呈下降趨勢(圖4A~C)。與CK處理相比,MT處理提高了棉花葉片的SOD、POD、CAT活性。
與CK處理相比,S處理的SOD活性在鹽脅迫處理后20 d、35 d分別顯著升高18.25%、41.39%,在鹽脅迫后65 d、80 d分別顯著降低16.15%、39.44%。與S處理相比,MS處理的SOD活性在鹽脅迫后65 d、80 d 分別顯著提高34.60%、45.35%(圖4A)。
與CK處理相比,S處理的POD活性在鹽脅迫處理后20 d、35 d分別顯著升高9.84%、33.29%,在50 d、65 d、80 d分別顯著降低7.56%、26.62%、32.20%。與S處理相比,MS處理的POD活性在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d分別顯著提高4.30%、9.15%、10.59%、17.98%和49.77%(圖4B)。
與CK處理相比,S處理的CAT活性在鹽脅迫處理后20 d顯著提高33.35%,在65 d、80 d分別顯著降低35.96%、37.13%。與S處理相比,MS處理的CAT活性在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d分別顯著提高21.43%、31.79%、55.01%、63.87%和58.28%(圖4C)。
以上結果表明,正常情況下外源MT可提高棉花葉片抗氧化酶活性,而鹽脅迫下噴施MT能有效提高棉花葉片抗氧化酶活性。
2.6 外源MT對鹽脅迫下棉花ROS及MDA含量的影響
隨著生育進程推進,4個處理下棉花葉片的H2O2、超氧陰離子、MDA含量均呈逐漸增加或波動增加趨勢(圖4D~F)。
與CK處理相比,MT處理的棉花葉片H2O2含量在鹽脅迫處理后20 d顯著升高,其余時間無顯著差異。在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d和65 d,S處理的棉花葉片H2O2含量分別比CK處理顯著增加103.60%、40.38%、23.69%和28.39%。與S處理相比,在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d和65 d,MS處理的棉花葉片H2O2含量分別顯著降低35.76%、20.27%、17.63%和20.19%(圖4D)。
與CK處理相比,在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d,MT處理的棉花葉片超氧陰離子含量無顯著變化;S處理下棉花葉片的超氧陰離子含量分別顯著增加106.45%、140.40%、172.35%、133.78%和100.12%。MS處理的棉花葉片超氧陰離子含量較S處理分別顯著降低38.67%、38.29%、35.42%、31.94%和25.70%(圖4E)。
與CK處理相比,MT處理的棉花葉片MDA含量在鹽脅迫處理后50 d顯著降低,其余時間無顯著差異。在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d,S處理的棉花葉片MDA含量比CK處理分別顯著升高77.27%、54.84%、38.00%、62.96%和81.54%;MS處理的棉花葉片MDA含量比S處理分別顯著降低38.46%、35.42%、28.99%、25.00%和29.66%(圖4F)。
以上結果表明,鹽脅迫顯著增加棉花葉片H2O2、超氧陰離子和MDA含量,鹽脅迫下噴施MT顯著降低棉花葉片的H2O2、超氧陰離子和MDA含量,但在正常情況下噴施MT的效果并不顯著。
2.7 外源MT對鹽脅迫下棉花滲透調節物質含量的影響
隨著生育進程推進,S處理下棉花葉片可溶性糖含量呈下降趨勢,其余處理下棉花葉片的可溶性糖含量均呈現先上升后降低的變化趨勢。與CK處理相比,MT處理增加了棉花葉片可溶性糖含量,但差異并不顯著。鹽脅迫處理后20 d,S處理的棉花葉片可溶性糖含量比CK處理顯著增加22.24%;鹽脅迫處理后50 d、65 d和80 d,S處理的葉片可溶性糖含量分別比CK處理顯著降低20.75%、27.77%和38.99%。鹽脅迫處理后35 d、50 d、65 d和80 d,MS處理的葉片可溶性糖含量分別比S處理顯著增加22.89%、26.79%、45.48%和43.09%(圖5A)。
不同處理下的棉花葉片可溶性蛋白含量均隨生育進程推進呈下降趨勢。與CK處理相比,MT處理的葉片可溶性蛋白含量在鹽脅迫處理后50 d、65 d和80 d分別顯著增加40.93%、30.99%和42.64%; S處理的葉片可溶性蛋白含量在鹽脅迫處理后20 d顯著增加22.37%,在鹽脅迫處理后35 d、50 d、65 d和80 d分別顯著降低12.19%、24.89%、34.50%和46.51%。在鹽脅迫處理后20 d、35 d、50 d、65 d和80 d,MS處理的葉片可溶性蛋白含量比S處理分別顯著增加14.62%、18.51%、34.27%、70.53%和124.64%(圖5B)。
隨著生育進程推進,CK和MT處理的棉花葉片脯氨酸含量呈先上升后降低趨勢,S和MS處理的棉花葉片脯氨酸含量呈降低趨勢。與CK處理相比,MT處理增加了棉花葉片脯氨酸含量(鹽脅迫處理后20 d除外);S處理下的葉片脯氨酸含量在鹽脅迫處理后20 d顯著增加61.01%,在鹽脅迫處理后65 d、80 d分別顯著降低24.25%、42.65%。與S處理相比,在鹽脅迫處理后35 d、50 d、65 d和80 d,MS處理下的棉花葉片脯氨酸含量分別顯著增加27.10%、34.49%、33.16%和38.39%(圖5C)。
綜上所述,在鹽脅迫初期,棉花葉片的可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸含量上升,但長期鹽脅迫導致其含量明顯下降,鹽脅迫條件下噴施MT能顯著增加棉花葉片的滲透調節物質含量。
2.8 棉花生長及生理生化指標之間的相關分析
地上部干物質質量與株高、莖粗、葉面積、SPAD值、地上部鮮物質質量、地下部鮮物質質量、地下部干物質質量、SOD活性、POD活性、CAT活性、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、脯氨酸含量均呈顯著正相關關系。地下部干物質質量與株高、莖粗、葉面積、SPAD值、地上部鮮物質質量、地下部鮮物質質量、SOD活性、CAT活性、可溶性糖含量、脯氨酸含量均呈顯著正相關關系。棉株地上部干物質質量和地下部干物質質量均與超氧陰離子含量、MDA含量呈顯著負相關關系。SOD、POD和CAT的活性均與超氧陰離子含量、MDA含量顯著負相關。超氧陰離子含量與MDA含量顯著正相關(圖6)。
3 討論
3.1 MT對鹽脅迫下棉花生長的調控效應
鹽脅迫抑制植物生長發育[22]。鹽脅迫下,小麥葉片中葉綠素的積累受到抑制,根長和株高顯著降低[23-25]。鹽脅迫下棉花幼苗的株高、葉面積、生物量顯著降低,而噴施MT可顯著提高株高、葉面積和生物量[7, 18]。本研究結果表明,在土壤鹽含量為0.3%的脅迫條件下,棉花的株高、莖粗、葉面積、葉片SPAD值、地上部鮮物質質量、地下部鮮物質質量、地上部干物質質量和地下部干物質質量均顯著降低,經過MT處理后棉花的株高、莖粗、葉面積、SPAD值、地上部鮮物質質量、地下部鮮物質質量和地上部干物質質量顯著增加,但仍低于對照處理;在正常條件下噴施MT也可增加棉花的株高、莖粗、葉面積、SPAD值、地上部鮮物質質量、地下部鮮物質質量、地上部干物質質量和地下部干物質質量。表明在鹽脅迫條件下,棉花生長受到明顯抑制,正常條件和鹽脅迫下MT處理均能促進棉花的生長,但并未使鹽脅迫下的棉花生長狀態恢復到正常環境的水平[7]。
根冠比能夠反映植物地上部與地下部的生物量分配。鹽脅迫下,花楸、平歐雜種榛的根冠比顯著高于對照處理[26-27]。本研究結果表明,鹽脅迫顯著提高了棉花的根冠比,說明鹽脅迫增加了地下部生物量的占比,可能利于增強棉株對水分和營養物質的吸收能力。而鹽脅迫下噴施MT顯著降低棉花根冠比,說明MT可明顯促進棉花地上部發育,緩解鹽脅迫對棉花生長發育的影響。
3.2 MT對鹽脅迫下棉花抗氧化能力的調控效應
在正常情況下,ROS的產生和清除系統是保持穩態平衡的,高濃度的鹽脅迫會打破這種穩態平衡,導致體內超氧陰離子和MDA累積,影響植物的生長發育[28]。在逆境脅迫下為了清除體內過量的ROS,植物會提高SOD、POD、CAT等抗氧化酶的活性[29]。研究表明,鹽脅迫增加了黃瓜、甜菜體內超氧陰離子、H2O2和MDA含量,MT處理顯著提高了SOD、POD、CAT活性,進而降低了超氧陰離子、H2O2和MDA含量[12, 30]。本研究發現,棉花葉片的SOD、POD和CAT活性在鹽脅迫處理前期顯著增加,后期逐漸降低;隨時間延長,超氧陰離子、H2O2和MDA的含量明顯增加,這可能是由于鹽脅迫會激活植物體內的抗氧化系統使抗氧化酶活性提高,但長時間脅迫導致抗氧化酶活性降低,超氧陰離子、H2O2過量積累[31]。鹽脅迫下,噴施MT后,棉花葉片的SOD、POD和CAT活性顯著升高,超氧陰離子、H2O2和MDA含量顯著降低,表明MT可通過增強抗氧化酶防御系統活性緩解氧化損傷。此外,本研究發現,正常條件下噴施MT后棉花葉片的SOD、POD、CAT活性升高,但無顯著差異(脅迫后65 d和80 d的SOD活性以及脅迫后20 d的POD活性除外),表明正常情況下噴施MT對棉花葉片抗氧化酶活性無明顯影響[5]。
3.3 MT對鹽脅迫下棉花滲透調節物質含量的調控效應
在逆境條件下,植物會通過增加滲透調節物質的含量來提升細胞的滲透壓,從而增強植物對不利環境的適應能力[32-33]。較低的鹽濃度會導致植物體內可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸含量升高,但長時間鹽脅迫會導致滲透調節物質含量降低[18, 30]。鹽脅迫處理導致玉米幼苗可溶性糖含量顯著增加,MT處理可促進可溶性糖積累[8, 34]。鹽脅迫下,裸燕麥中可溶性蛋白含量降低,脯氨酸含量增加;MT處理可顯著增加可溶性蛋白、脯氨酸含量[35]。本研究結果表明,棉花葉片的可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸含量在鹽脅迫處理后20 d顯著高于對照,之后逐漸降低,這可能是由于長時間鹽脅迫導致大量ROS累積,影響滲透調節物質的合成途徑并促進滲透調節物質降解,導致其含量降低;鹽脅迫下,噴施MT能顯著提高棉花葉片的可溶性糖、可溶性蛋白和脯氨酸含量。上述結果表明鹽脅迫下噴施MT可促進棉花體內滲透調節物質積累,減輕滲透脅迫對棉花造成的損傷[8, 35]。
此外,相關分析表明,棉花地上部鮮物質質量、地上部干物質質量與株高、莖粗、葉面積、SPAD值、地下部鮮物質質量、地下部干物質質量、抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性、滲透調節物質(可溶性糖、可溶性蛋白、脯氨酸)含量均呈顯著正相關關系,而與超氧陰離子含量、MDA含量呈顯著負相關關系。表明外源MT通過增強抗氧化酶活性,提高滲透調節物質含量,降低超氧陰離子含量和MDA含量,促進棉花生物量積累和生長發育。這與前人的研究結果相符[36]。
4 結論
土壤含鹽量為0.3%的脅迫處理顯著影響棉花的生長發育,降低棉花的株高、莖粗、葉面積、SPAD值、單株生物量和葉片抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性,提高葉片H2O2、超氧陰離子和MDA含量,降低滲透調節物質(可溶性糖、可溶性蛋白、脯氨酸)含量。鹽脅迫下噴施200 μmol·L-1 MT能夠顯著提高棉花的株高、莖粗、葉面積、SPAD值及單株生物量,提高葉片抗氧化酶活性,顯著降低葉片H2O2、超氧陰離子和MDA含量,顯著提高滲透調節物質含量,從而促進棉花生長,增強棉株的耐鹽性。
參考文獻:
[1] Yang Y Q, Guo Y. Unraveling salt stress signaling in plants[J/OL]. Journal of Integrative Plant Biology, 2018, 60(9): 796-
804[2024-07-06]. https://doi.org/10.1111/jipb.12689.
[2] Zhao S S, Zhang Q K, Liu M Y, et al. Regulation of plant responses to salt stress[J/OL]. International Journal of Molecular Sciences, 2021, 22(9): 4609[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/
ijms22094609.
[3] Zhang Q, Liu Y Q, Jiang Y L, et al. OsASR6 enhances salt stress tolerance in rice[J/OL]. International Journal of Molecular Sciences, 2022, 23(16): 9340[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/ijms23169340.
[4] Gong Z Z. Plant abiotic stress: new insights into the factors that activate and modulate plant responses[J/OL]. Journal of Integrative Plant Biology, 2021, 63(3): 429-430[2024-07-06]. https://
doi.org/10.1111/jipb.13079.
[5] 陳莉, 劉連濤, 馬彤彤, 等. 褪黑素對鹽脅迫下棉花種子抗氧化酶活性及萌發的影響[J/OL]. 棉花學報, 2019, 31(5): 438-447[2024-07-06]. https://doi.org/10.11963/1002-7807.cllcd.20190905.
Chen Li, Liu Liantao, Ma Tongtong, et al. Effects of melatonin on the antioxidant enzyme activities and seed germination of cotton (Gossypium hirsutum L.) under salt-stress conditions[J/OL]. Cotton Science, 2019, 31(5): 438-447[2024-07-06]. https://doi.org/10.11963/1002-7807.cllcd.20190905.
[6] Arif Y, Singh P, Siddiqui H, et al. Salinity induced physiological and biochemical changes in plants: an omic approach towards salt stress tolerance[J/OL]. Plant Physiology and Biochemistry, 2020, 156: 64-77[2024-07-06]. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2020.08.042.
[7] Jiang D, Lu B, Liu L T, et al. Exogenous melatonin improves salt stress adaptation of cotton seedlings by regulating active oxygen metabolism[J/OL]. PeerJ, 2020, 8: e10486[2024-07-06]. https://
doi.org/10.7717/peerj.10486.
[8] Chen Y E, Mao J J, Sun L Q, et al. Exogenous melatonin enhances salt stress tolerance in maize seedlings by improving antioxidant and photosynthetic capacity[J/OL]. Physiologia Plantarum, 2018, 164(3): 349-363[2024-07-06]. https://doi.org/10.1111/ppl.12737.
[9] 陳明媛, 張淑英, 王夢柯, 等. 外源硫化氫對NaCl脅迫下棉花幼苗抗逆生理特性的影響[J/OL]. 干旱地區農業研究, 2021, 39(2): 55-61[2024-07-06]. https://doi.org/10.7606/j.issn.1000-
7601.2021.02.08.
Chen Mingyuan, Zhang Shuying, Wang Mengke, et al. Effects of exogenous hydrogen sulfide on stress resistance physiological characteristics of cotton seedlings under NaCl stress[J/OL]. Agricultural Research in the Arid Areas, 2021, 39(2): 55-61[2024-07-
06]. https://doi.org/10.7606/j.issn.1000-7601.2021.02.08.
[10] Birhanie Z M, Yang D, Luan M, et al. Salt stress induces changes in physiological characteristics, bioactive constituents, and antioxidants in kenaf (Hibiscus cannabinus L.) [J/OL]. Antioxidants, 2022, 11(10): 2005[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/antiox11102005.
[11] Yan F Y, Wei H M, Ding Y F, et al. Melatonin regulates anti-
oxidant strategy in response to continuous salt stress in rice seedlings[J/OL]. Plant Physiology and Biochemistry, 2021, 165: 239-250[2024-07-06]. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2021.05.003.
[12] Zhang T G, Shi Z F, Zhang X H, et al. Alleviating effects of exogenous melatonin on salt stress in cucumber[J/OL]. Scientia Horticulturae, 2020, 262: 109070[2024-07-06]. https://doi.org/
10.1016/j.scienta.2019.109070.
[13] 齊琪, 馬書榮, 徐維東. 鹽脅迫對植物生長的影響及耐鹽生理機制研究進展[J/OL]. 分子植物育種, 2020, 18(8): 2741-2746[2024-07-06]. https://doi.org/10.13271/j.mpb.018.002741.
Qi Qi, Ma Shurong, Xu Weidong. Advances in the effects of salt stress on plant growth and physiological mechanisms of salt tolerance[J/OL]. Molecular Plant Breeding, 2020, 18(8): 2741-
2746[2024-07-06]. https://doi.org/10.13271/j.mpb.018.002741.
[14] Wang Y X, Zhao L M, Feng N J, et al. Plant growth regulators mitigate oxidative damage to rice seedling roots by NaCl stress[J/OL]. PeerJ, 2024, 12: e17068[2024-07-06]. https://doi.org/
10.7717/peerj.17068.
[15] Jiang D, Lu B, Liu L T, et al. Exogenous melatonin improves the salt tolerance of cotton by removing active oxygen and protecting photosynthetic organs[J/OL]. BMC Plant Biology, 2021, 21(1): 331[2024-07-06]. https://doi.org/10.1186/s12870-
021-03082-7.
[16] 馬鑫穎, 宋晨, 孟妍君, 等. 外源褪黑素對鎘脅迫下棉花種子萌發、抗氧化酶活性及滲透調節物質含量的影響[J/OL]. 棉花學報, 2023, 35(4): 313-324[2024-07-06]. https://doi.org/10.11963/cs20230021.
Ma Xinying, Song Chen, Meng Yanjun, et al. Effects of exogenous melatonin on germination, antioxidant enzymes activity, and osmotic adjustment substance content of cotton seed under cadmium stress[J/OL]. Cotton Science, 2023, 35(4): 313-324[2024-07-06]. https://doi.org/10.11963/cs20230021.
[17] Khan A, Numan M, Khan A L, et al. Melatonin: awakening the defense mechanisms during plant oxidative stress[J/OL]. Plants, 2020, 9(4): 407[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/plants
9040407.
[18] Duan W J, Lu B, Liu L T, et al. Effects of exogenous melatonin on root physiology, transcriptome and metabolome of cotton seedlings under salt stress[J/OL]. International Journal of Molecular Sciences, 2022, 23(16): 9456[2024-07-06]. https://
doi.org/10.3390/ijms23169456.
[19] 孫文君. 低溫和鹽堿脅迫下棉花幼苗對外源褪黑素的生理響應[D]. 阿拉爾: 塔里木大學, 2021.
Sun Wenjun. Physiological responses of cotton seedlings to exogenous melatonin under low temperature and salt-alkaline stress[D]. Aral: Tarim University, 2021.
[20] Shen J, Chen D D, Zhang X P, et al. Mitigation of salt stress response in upland cotton (Gossypium hirsutum) by exogenous melatonin[J/OL]. Journal of Plant Research, 2021, 134(4): 857-
871[2024-07-06]. https://doi.org/10.1007/s10265-021-01284-6.
[21] Chen L, Lu B, Liu L T, et al. Melatonin promotes seed germination under salt stress by regulating ABA and GA3 in cotton (Gossypium hirsutum L.) [J/OL]. Plant Physiology and Biochemistry, 2021, 162: 506-516[2024-07-06]. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2021.03.029.
[22] 王龍, 李靜, 錢晨, 等. 鹽脅迫對油菜生理特征和菜籽產量品質的影響[J/OL]. 作物學報, 2024, 50(6): 1597-1607[2024-07-
06]. https://doi.org/10.3724/SP.J.1006.2024.34137.
Wang Long, Li Jing, Qian Chen, et al. Effects of salt stress on yield, quality, and physiology in rapeseed[J/OL]. Acta Agronomica Sinica, 2024, 50(6): 1597-1607[2024-07-06]. https://doi.
org/10.3724/SP.J.1006.2024.34137.
[23] Shah F A, Ni J, Tang C G, et al. Karrikinolide alleviates salt stress in wheat by regulating the redox and K+/Na+ homeostasis[J/OL]. Plant Physiology and Biochemistry, 2021, 167: 921-933[2024-07-06]. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2021.09.023.
[24] 李雙, 王愛英, 焦湞, 等. 鹽脅迫下不同抗性小麥幼苗生理生化特性及轉錄組分析[J/OL]. 中國農業科技導報, 2024, 26(2): 20-32[2024-07-06]. https://doi.org/10.13304/j.nykjdb.2022.
0679.
Li Shuang, Wang Aiying, Jiao Zhen, et al. Physiological and chemical characteristics and transcriptome analysis of different type of wheat seedlings under salt stress[J/OL]. Journal of Agricultural Science and Technology, 2024, 26(2): 20-32[2024-07-
06]. https://doi.org/10.13304/j.nykjdb.2022.0679.
[25] Fu Y Y, Li P H, Si Z Y, et al. Seeds priming with melatonin improves root hydraulic conductivity of wheat varieties under drought, salinity, and combined stress[J/OL]. International Journal of Molecular Sciences, 2024, 25(9): 5055[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/ijms25095055.
[26] 黃榮雁, 路程偉, 許嶸, 等. 鹽堿脅迫對‘冬紅’花楸生長、生理及光合特性的影響[J/OL]. 草地學報, 2024, 32(2): 480-488[2024-07-06]. https://doi.org/10.11733/j.issn.1007-0435.2024.
02.015.
Huang Rongyan, Lu Chengwei, Xu Rong, et al. Effects of saline-alkali stress on growth, physiology and photosynthetic characteristics of Sorbus sibirica 'DongHong'[J/OL]. Acta Agrestia Sinica, 2024, 32(2): 480-488[2024-07-06]. https://doi.org/10.11733/j.issn.1007-0435.2024.02.015.
[27] 羅達, 史彥江, 宋鋒惠, 等. 鹽脅迫對平歐雜種榛幼苗生長、光合熒光特性及根系構型的影響[J/OL]. 應用生態學報, 2019, 30(10): 3376-3384[2024-07-06]. https://doi.org/10.13287/j.
1001-9332.201910.001.
Luo Da, Shi Yanjiang, Song Fenghui, et al. Effects of salt stress on growth, photosynthetic and fluorescence characteristics, and root architecture of Corylus heterophylla × C. avellan seedlings[J/OL]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2019, 30(10): 3376-3384[2024-07-06]. https://doi.org/10.13287/j.1001-9332.
201910.001.
[28] Cen H F, Wang T T, Liu H Y, et al. Melatonin application improves salt tolerance of alfalfa (Medicago sativa L.) by enhancing antioxidant capacity[J/OL]. Plants, 2020, 9(2): 220[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/plants9020220.
[29] Hasanuzzaman M, Parvin K, Bardhan K, et al. Biostimulants for the regulation of reactive oxygen species metabolism in plants under abiotic stress[J/OL]. Cells, 2021, 10(10): 2537[2024-07-
06]. https://doi.org/10.3390/cells10102537.
[30] Zhang P F, Liu L, Wang X, et al. Beneficial effects of exogenous melatonin on overcoming salt stress in sugar beets (Beta vulgaris L.)[J/OL]. Plants, 2021, 10(5): 886[2024-07-06]. https://
doi.org/10.3390/plants10050886.
[31] Laxa M, Liebthal M, Telman W, et al. The role of the plant antioxidant system in drought tolerance[J/OL]. Antioxidants, 2019, 8(4): 94[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/antiox
8040094.
[32] Yancey P H. Organic osmolytes as compatible, metabolic and counteracting cytoprotectants in high osmolarity and other stresses[J/OL]. Journal of Experimental Biology, 2005, 208(15): 2819-2830[2024-07-06]. https://doi.org/10.1242/jeb.01730.
[33] Inayat H, Mehmood H, Danish S, et al. Impact of cobalt and proline foliar application for alleviation of salinity stress in radish[J/OL]. BMC Plant Biology, 2024, 24: 287[2024-07-06]. https://doi.org/10.1186/s12870-024-04998-6.
[34] Li Z G, Xu Y, Bai L K, et al. Melatonin enhances thermotole-
rance of maize seedlings (Zea mays L.) by modulating anti-
oxidant defense, methylglyoxal detoxification, and osmoregulation systems[J/OL]. Protoplasma, 2019, 256(2): 471-490[2024-07-06]. https://doi.org/10.1007/s00709-018-1311-4.
[35] Gao W Y, Feng Z, Bai Q Q, et al. Melatonin-mediated regulation of growth and antioxidant capacity in salt-tolerant naked oat under salt stress[J/OL]. International Journal of Molecular Sciences, 2019, 20(5): 1176[2024-07-06]. https://doi.org/10.3390/ijms20051176.
[36] 段文靜, 孟妍君, 江丹, 等. 外源褪黑素對鹽脅迫下棉花幼苗形態及抗氧化系統的影響[J/OL]. 中國生態農業學報(中英文), 2022, 30(1): 92-104[2024-07-06]. https://doi.org/10.12357/cjea.20210411.
Duan Wenjing, Meng Yanjun, Jiang Dan, et al. Effects of exogenous melatonin on the morphology and antioxidant enzyme activities of cotton seedlings under salt stress[J/OL]. Chinese Journal of Eco-Agriculture, 2022, 30(1): 92-104[2024-
07-06]. https://doi.org/10.12357/cjea.20210411.
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