李 森,馬 靈,李 婷,彭 爐,李莎莎,李慶業(yè),周 曼,吳賀君
(1.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,四川 雅安 625014;2.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)理學(xué)院,四川 雅安 625014)
明膠(gelatin,G)是一種由廢棄動(dòng)物骨頭、皮膚和結(jié)締組織中的膠原蛋白水解產(chǎn)生的高分子蛋白質(zhì)[1],因其良好的成膜性、氣體阻隔性、耐油性以及資源豐富、成本低廉等優(yōu)勢(shì),成為塑料包裝的一種潛在替代品[2-3]。明膠膜的易吸水性導(dǎo)致其易受到細(xì)菌和霉菌的污染,且生物活性低,因此應(yīng)用受到限制[4]。香芹酚(carvacrol,C)是一種揮發(fā)性單萜酚,天然存在于牛至、百里香、冬季香薄荷等唇形科植物中,具有非特異性的抗氧化、抗細(xì)菌、真菌等功效[5-6],Kavoosi等[7]將香芹酚添加至明膠膜后得到的復(fù)合膜表現(xiàn)出優(yōu)異的功能活性,可用于制備廣譜高效的抗菌活性食品包裝材料。然而,香芹酚的快速揮發(fā)致使其存在抑菌時(shí)效短、利用率低的問(wèn)題[8]。
為了抑制香芹酚活性成分的揮發(fā),目前有研究將其封裝于埃洛石納米管等無(wú)機(jī)礦物制備抗菌復(fù)合體中,提升其長(zhǎng)效抗菌效果[9-11]。然而埃洛石納米管對(duì)于細(xì)胞的潛在毒性可能會(huì)限制其在食品包裝中進(jìn)一步應(yīng)用[12-13]。硅藻土(diatomite,D)是硅藻遺骸經(jīng)地質(zhì)作用形成的硅質(zhì)多孔沉積巖,其具有無(wú)毒、孔隙率高(高達(dá)80%,孔徑50~200 nm)、比表面積大、吸附性強(qiáng)以及價(jià)格低廉等優(yōu)點(diǎn)[14-15]。已有研究人員用硅藻土負(fù)載牛至精油[16]、百里酚[17]等制備包封效果好并具有緩釋特性的新型抗菌復(fù)合體。然而目前將這種硅藻土負(fù)載植物精油的新型抗菌復(fù)合體用于制備緩釋活性包裝膜的研究還相對(duì)較少。基于此,本研究將硅藻土/香芹酚(D/C)復(fù)合體與明膠復(fù)合,探究D/C復(fù)合體添加量對(duì)明膠膜結(jié)構(gòu)與性能的影響并驗(yàn)證其緩釋效果,為促進(jìn)含香芹酚等植物精油的明膠基抗菌復(fù)合膜的應(yīng)用提供參考。
明膠(化學(xué)純)、硅藻土(純度99%、堆積密度0.47 g/cm3)、乙醇(分析純)(化學(xué)純) 成都科隆化學(xué)品有限公司;香芹酚(分析純) 上海瑞永生物科技有限公司;丙三醇(分析純) 成都金山化學(xué)試劑有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH) 南京都萊生物技術(shù)有限公司;營(yíng)養(yǎng)肉湯、營(yíng)養(yǎng)瓊脂 杭州微生物試劑有限公司;金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)(ATCC29215)、大腸桿菌(Escherichia coli)(ATCC25922) 四川農(nóng)業(yè)大學(xué)食品微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室;實(shí)驗(yàn)用水均為去離子水。
85-2A型恒溫磁力攪拌器 天津賽德利斯實(shí)驗(yàn)分析儀器制造廠;SHZ-DIII型循環(huán)水式真空泵 北京市永光明醫(yī)療器械有限公司;SU-1510型掃描電子顯微鏡 日本日立公司;Nicolet iS10型傅里葉變換紅外光譜儀、Varioskan Flash型全波長(zhǎng)多功能熒光酶標(biāo)儀 美國(guó)賽默飛世爾科技公司;Rise-2006型激光粒度分析儀 濟(jì)南潤(rùn)之科技有限公司;CM2300D型色差儀 日本柯尼卡美能達(dá)投資有限公司;WGW型光電霧度儀 上海儀電物理光學(xué)儀器有限公司;HD-A821-1型電子拉力試驗(yàn)機(jī)東莞市海達(dá)儀器有限公司;DSX-280B型手提式壓力蒸汽滅菌鍋 上海申安醫(yī)療器械廠。
1.3.1 D/C復(fù)合體的制備
D/C復(fù)合體的制備參考文獻(xiàn)[18]的方法并稍作修改。取一定質(zhì)量(m1/g)硅藻土混合足夠量的香芹酚,加入到抽濾瓶中,磁力攪拌10 min。再通過(guò)真空抽濾增大瓶?jī)?nèi)內(nèi)部壓力,將硅藻土表面香芹酚壓入硅藻土的孔洞中,同時(shí)排出硅藻土孔洞中的空氣。以上抽濾操作重復(fù)6 次,每次40 s。抽濾結(jié)束后,將混合物加入至已稱質(zhì)量的離心管(m2/g)中,4 000 r/min離心10 min,回收離心游離香芹酚(上清液)于抽濾瓶中,重復(fù)上次操作,進(jìn)行二次離心。再次稱量含有混合物的離心管總質(zhì)量(m3/g)。將離心出來(lái)的游離部分香芹酚回收至廣口瓶,可重復(fù)利用。硅藻土和香芹酚在D/C復(fù)合體中的相對(duì)含量分別按公式(1)、(2)計(jì)算。
1.3.2 D/C復(fù)合體的表征
1.3.2.1 外觀觀察
使用數(shù)碼相機(jī)拍攝硅藻土負(fù)載香芹酚前后的照片,觀察它們的顏色變化。
1.3.2.2 掃描電子顯微鏡觀察
將硅藻土和經(jīng)過(guò)40 ℃干燥12 h后的D/C復(fù)合體用導(dǎo)電樹脂固定在青銅樁上,在離子濺射鍍膜機(jī)上濺射金2 min,再利用SU-1510型掃描電子顯微鏡在20 kV下進(jìn)行拍照觀察。
1.3.2.3 紅外光譜測(cè)定
采用溴化鉀壓片法,利用Nicolet iS10型傅里葉變換紅外光譜儀對(duì)香芹酚、硅藻土和D/C復(fù)合體進(jìn)行分析。分辨率為4 cm-1,測(cè)量記錄的波數(shù)范圍為650~4 000 cm-1,平均掃描32 次。
1.3.2.4 粒徑測(cè)定
采用Rise-2006激光粒度分析儀測(cè)定硅藻土負(fù)載香芹酚前后的粒徑。
1.3.3 明膠基抗菌復(fù)合膜的制備
根據(jù)文獻(xiàn)[19]的方法制備明膠基復(fù)合膜,具體步驟如下:首先稱取10 g明膠與2.5 g甘油,添加100 mL蒸餾水,在60 ℃恒溫水浴中磁力攪拌50 min后形成膜液;繼續(xù)冷卻攪拌降溫至40 ℃后,向膜液加入一定量D/C復(fù)合體,持續(xù)攪拌10 min,用膠頭滴管吸出多余氣泡;將膜液倒入自制230 mm×230 mm塑料成膜板,流延均勻后置于常溫環(huán)境(25 ℃)下進(jìn)行自然風(fēng)干,1 d后揭膜;將薄膜置于溫度(23±2)℃、相對(duì)濕度(55±5)% 的恒溫恒濕箱中平衡24 h得到成品。
在制備含D/C復(fù)合體的復(fù)合膜時(shí),復(fù)合體添加量分別為膠干質(zhì)量的0%、10%、20%、30%,分別記作空白組G-K、G-D/C1、G-D/C2、G-D/C3。在明膠膜中分別單獨(dú)添加與G-D/C3組等添加量的香芹酚和硅藻土制備復(fù)合膜作為對(duì)照,記作G-C和G-D。
1.3.4 明膠基抗菌復(fù)合膜的表征
1.3.4.1 掃描電子顯微鏡觀察
采用SU-1510型掃描電子顯微鏡觀察G-K、G-C、G-D/C3薄膜樣品截面以及表面的微觀形貌,加速電壓15 kV。
1.3.4.2 紅外光譜測(cè)定
從各組分薄膜上剪取一小塊樣品,利用Nicolet iS10型傅里葉變換紅外光譜儀在ATR模式下直接測(cè)定,掃描范圍650~4 000 cm-1、分辨率2.0 cm-1、累加32 次。
1.3.4.3 厚度測(cè)定
根據(jù)GB/T 6672—2001《塑料薄膜和薄片厚度測(cè)定 機(jī)械測(cè)量法》,用螺旋測(cè)微器在被測(cè)膜上隨機(jī)取點(diǎn),測(cè)量5 次取平均值,以μm為單位。
1.3.4.4 色澤測(cè)定
薄膜顏色由CM2300D型色差儀測(cè)定薄膜的顏色指數(shù)(L、a、b)。L值代表亮度;a值代表紅綠色度,正值表示紅色程度,負(fù)值表示綠色程度;b值代表黃藍(lán)色度,正值表示黃色程度,負(fù)值表示藍(lán)色程度。總色差值(ΔE)按公式(3)計(jì)算。
式中:L*、a*、b*為標(biāo)準(zhǔn)白色板的色澤指數(shù)(L*=99.76、a*=-0.02、b*=-0.40)。
1.3.4.5 透光率測(cè)定
參照GB/T 2410—2008《透明塑料透光率和霧度的測(cè)定》,將膜裁成正方形(50 mm×50 mm),采用WGW型光電霧度儀測(cè)定入射光通量(T1)和通過(guò)試樣的總透射光通量(T2),每組5 個(gè)平行,取平均值,按照公式(4)計(jì)算透光率(TS)。
1.3.4.6 力學(xué)性能的表征
參照GB/T 1040.1—2018《塑料 拉伸性能的測(cè)定第1部分:總則》,將薄膜剪成70 mm×15 mm尺寸的樣條,采用HD-A821-1型電子拉力試驗(yàn)機(jī)測(cè)定樣品的拉伸強(qiáng)度(tensile strength,TS)和斷裂伸長(zhǎng)率(elongation at break,EAB),設(shè)置初始間距為40 mm,拉伸速率為60 mm/min,測(cè)3 次取其平均值。
1.3.4.7 含水率和水溶性的測(cè)定
根據(jù)文獻(xiàn)[20]的方法測(cè)定薄膜含水率和水溶性,將膜樣(20 mm×20 mm)在室溫下稱質(zhì)量(m0/g),然后在105 ℃條件下干燥至恒質(zhì)量(m1/g)。將干燥后樣品放入裝有50 mL蒸餾水的離心管中,于25 ℃條件下浸泡24 h,并定時(shí)攪動(dòng)。將未溶解的膜取出,用濾紙吸干膜表面水分,于105 ℃干燥至恒質(zhì)量(m2/g)。根據(jù)公式(5)、(6)分別計(jì)算含水率和水溶性。
1.3.4.8 水蒸氣透過(guò)率測(cè)定
根據(jù)GB/T 1037—2021《塑料薄膜與薄片水蒸氣透過(guò)性能測(cè)定 杯式增重與減重法》,并略作修改后測(cè)定水蒸氣透過(guò)率。將4 mm×4 mm的薄膜預(yù)先放置在含直徑27.5 mm填充硅膠(相對(duì)濕度0%)的離心管口,并用橡膠圈密封,以確保濕度只通過(guò)薄膜遷移。將離心管儲(chǔ)存在一個(gè)含有飽和KNO3溶液的干燥器中,控制溫度為40 ℃、相對(duì)濕度為90%。每12 h檢測(cè)離心管質(zhì)量增加情況,連續(xù)測(cè)定7 d。所有分析均重復(fù)3 次,根據(jù)公式(7)計(jì)算水蒸氣透過(guò)率(water vapor permeation,WVP)。
式中:Δm表示每12 h的質(zhì)量差/g;d為樣品平均厚度/cm;A為離心管管口面積/cm2;Δt為測(cè)量間隔時(shí)間/s;ΔP為40 ℃下純水通過(guò)樣品的水蒸氣壓差/Pa。
1.3.4.9 氧氣透過(guò)率測(cè)定
根據(jù)文獻(xiàn)[21]的方法測(cè)定薄膜的氧氣透過(guò)率,取3 g脫氧劑加入到50 mL離心管,用薄膜封口后稱初始質(zhì)量(m1/g),然后將離心管放入盛有飽和氯化鋇溶液(相對(duì)濕度85%)的干燥器中48 h后稱質(zhì)量(m2/g)。每組測(cè)試重復(fù)3 次求平均值,根據(jù)公式(8)計(jì)算氧氣透過(guò)率(oxygen permeability,OP)。
式中:t為測(cè)定時(shí)間/h;A為離心管管口面積/m2。
1.3.4.10 抗氧化性測(cè)定
根據(jù)文獻(xiàn)[22]的方法測(cè)定DPPH自由基清除率。取25 mg膜樣于5 mL無(wú)水乙醇中浸泡過(guò)夜得到提取液。將每份提取液(0.1 mL)與3.9 mL 0.01 mmol/L DPPH溶液混合,劇烈搖晃后,在環(huán)境溫度下黑暗中靜置30 min,然后使用Varioskan Flash型全波長(zhǎng)功能酶標(biāo)儀在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。用無(wú)水乙醇代替提取液制備對(duì)照樣品。每組樣品3 個(gè)平行。DPPH自由基清除率按公式(9)計(jì)算。
式中:Aα為對(duì)照樣品的吸光度;Aβ為測(cè)試樣品的吸光度。
1.3.4.11 抗菌性測(cè)定
參考文獻(xiàn)[17]采用瓊脂抑菌圈擴(kuò)散法測(cè)定薄膜的抗菌性能。選用2 種細(xì)菌(大腸桿菌、金黃色葡萄球菌)作為測(cè)試菌種涂布于LB培養(yǎng)基上,將各明膠薄膜裁剪為直徑為15 mm的圓形膜樣品,浸入戊二醛中交聯(lián)1 min后,在去離子水中浸泡30 s,用濾紙吸干多余水分,將膜片貼附于培養(yǎng)基表面,在37 ℃培養(yǎng)24 h后,拍照并測(cè)量抑菌圈直徑。
1.3.4.12 香芹酚的釋放率測(cè)定
根據(jù)文獻(xiàn)[23]的方法測(cè)定香芹酚的釋放率。對(duì)復(fù)合膜中香芹酚在4 ℃、相對(duì)濕度50%條件下貯藏18 d過(guò)程中的釋放率進(jìn)行測(cè)定。首先,將薄膜裁剪成20 mm×20 mm正方形片,稱質(zhì)量后加入裝有20 mL 95%乙醇溶液的60 mL封頂瓶中。室溫25 ℃下振蕩提取12 h,取0.1 mL提取液,進(jìn)行梯度稀釋,利用VarioskanFlash型多模酶標(biāo)儀測(cè)定提取液在282 nm波長(zhǎng)處的吸光度。將不同質(zhì)量濃度香芹酚溶解在95%乙醇溶液制備標(biāo)準(zhǔn)品并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程確定香芹酚質(zhì)量濃度。按公式(10)計(jì)算香芹酚的釋放率。
式中:ρ為釋放達(dá)到終點(diǎn)時(shí)香芹酚的質(zhì)量濃度/(mg/mL);ρt為測(cè)試樣品t時(shí)間點(diǎn)釋放出的香芹酚質(zhì)量濃度/(mg/mL)。
采用SPSS 27.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差,使用方差分析和鄧肯多重范圍檢驗(yàn)對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行顯著性分析(P<0.05),以O(shè)rigin 2017軟件繪圖。
如圖1A所示,數(shù)碼照片顯示硅藻土為白色無(wú)機(jī)黏土,而負(fù)載香芹酚后,所得復(fù)合體粉末變?yōu)榈S色,Lei Hong等[24]通過(guò)坡縷石負(fù)載生姜精油前后的顏色變化確定了精油的成功負(fù)載;此外,掃描電子顯微鏡結(jié)果直接證實(shí)負(fù)載香芹酚后,硅藻土的多孔結(jié)構(gòu)被吸入孔洞的香芹酚完全覆蓋。由圖1B粒徑分布曲線可以看出,硅藻土、D/C復(fù)合體兩組樣品均為單峰分布,平均粒徑約在30 μm左右;而相對(duì)于硅藻土,復(fù)合體由于負(fù)載香芹酚后平均粒徑略微增加且分布略微變寬。上述表征結(jié)果共同說(shuō)明多孔性的硅藻土成功負(fù)載了香芹酚。并由公式(1)、(2)計(jì)算出硅藻土和香芹酚在復(fù)合體中的相對(duì)含量分別約為32.56%和67.44%。

圖1 硅藻土和D/C復(fù)合體的結(jié)構(gòu)表征Fig. 1 Structural characterization of diatomite and D/C complex
如圖1C所示,香芹酚的特征吸收峰分別由在3 373 cm-1處和2 959 cm-1處羥基(—OH)和甲基(—CH3)的伸縮振動(dòng)引起;1 250~1 750 cm-1區(qū)域出現(xiàn)的吸收峰與C—C鍵伸縮、—OH鍵彎曲和C—O鍵伸縮有關(guān);811 cm-1處的吸收峰可能歸因于芳香族—OH的伸縮振動(dòng)[25]。硅藻土的特征峰分別是在1 085 cm-1處硅氧烷(—Si—O—Si)的強(qiáng)吸收峰,以及在794 cm-1處SiO—H鍵的振動(dòng)峰,以上這些特征峰的出現(xiàn)表明硅藻土主要由SiO2組成[26]。對(duì)于D/C復(fù)合體,香芹酚和硅藻土的主要特征吸收峰均有出現(xiàn),說(shuō)明兩者之間未發(fā)生化學(xué)反應(yīng)。與香芹酚的紅外光譜比較,D/C復(fù)合體紅外光譜在3 100~3 600 cm-1之間的吸收峰(與O—H伸縮振動(dòng)有關(guān))變寬且強(qiáng)度降低,并向更高的波數(shù)轉(zhuǎn)移,表明游離O—H鍵伸縮程度減弱。這可能是由于香芹酚與硅藻土表面羥基之間的氫鍵發(fā)生相互作用從而使兩者的界面結(jié)合能力提高[27],機(jī)理如圖1D所示。
2.2.1 薄膜微觀結(jié)構(gòu)分析
由圖2可知,G-K膜的截面和表面均連續(xù)、光滑且致密,無(wú)明顯缺陷,證實(shí)明膠基質(zhì)成膜性良好。而加入香芹酚后,G-C膜的表面與G-K膜相比變化不大,但橫截面明顯變得粗糙且厚度增大。這是由于香芹酚的增塑作用增加了明膠基質(zhì)分子鏈之間的距離,從而使膜結(jié)構(gòu)的致密性減弱[28-29]。當(dāng)加入D/C復(fù)合體后,G-D/C3薄膜的厚度進(jìn)一步增大,同時(shí)因?yàn)閺?fù)合體中的硅藻土密度較大,在溶液成膜干燥時(shí)容易沉積在下表面[17],因此表面更為粗糙。此外,D/C復(fù)合體中香芹酚的酚羥基可與明膠基質(zhì)中的羥基、羧基和氨基等極性基團(tuán)發(fā)生氫鍵等相互作用,提升了復(fù)合體與明膠基質(zhì)之間的界面相容性[30-31],所以兩者結(jié)合較為緊密,并未出現(xiàn)明顯的界面分離。

圖2 G-K(A)、G-C(B)、G-D/C3(C)膜截面和表面的掃描電子顯微鏡圖Fig. 2 SEM images of cross-section and surface of G-K (A), G-C (B)and G-D/C3 (C) films
2.2.2 薄膜紅外光譜分析
如圖3A所示,純明膠薄膜3 296 cm-1處的峰對(duì)應(yīng)N—H拉伸和O—H拉伸,2 931 cm-1處的峰對(duì)應(yīng)C—H拉伸振動(dòng)[32];在大約1 634、1 549 cm-1和1 240 cm-1處的峰分別對(duì)應(yīng)酰胺I帶的C=O拉伸、酰胺II帶的N—H變形和C—H拉伸,以及蛋白質(zhì)中酰胺III帶的C—H和N—H基團(tuán)在平面上的振動(dòng)[33]。摻入硅藻土和香芹酚,G-D/C3薄膜在3 000~3 600 cm-1處的頻帶強(qiáng)度明顯下降。此外,與G-K膜相比,G-D/C3膜的光譜中有明顯的酰胺I帶(1 690~1 630 cm-1)和酰胺II帶(1 655~1 590 cm-1)。由此可見(jiàn),明膠基復(fù)合膜的帶位和強(qiáng)度發(fā)生了一些變化,但并未有新峰的產(chǎn)生,表明D/C復(fù)合體與明膠基質(zhì)之間沒(méi)有化學(xué)相互作用,只有物理分子間的相互作用[20]。這種作用可能是硅藻土對(duì)香芹酚的物理吸附和攜帶作用,以及蛋白基質(zhì)極性基團(tuán)與D/C復(fù)合體中香芹酚的酚羥基之間的氫鍵相互作用[31]。

圖3 復(fù)合膜的傅里葉變換紅外光譜(A)和表觀形貌(B)Fig. 3 Fourier transform infrared spectra (A) and apparent images (B)of the composite films
2.2.3 薄膜的厚度、色澤、透光率
由表1可知,G-K膜的厚度僅為84.67 μm,而復(fù)合膜的厚度隨著D/C復(fù)合體添加量的增加而顯著上升(P<0.05),膜的厚度主要取決于成膜液中非溶劑成分的含量。如圖3B所示,明膠薄膜本身成淡黃色,隨著D/C復(fù)合體添加量的增加,薄膜黃色逐漸加深,這是由于香芹酚作為添加物質(zhì)其顏色偏淡黃色,從而導(dǎo)致膜的a值降低、b值增大。此外,復(fù)合膜中硅藻土為白色粉末狀黏土,因此添加硅藻土的復(fù)合膜與G-K相比ΔE降低。復(fù)合膜的透過(guò)率同樣隨著薄膜復(fù)合體的添加量增加而顯著降低(P<0.05),特別是相比于G-K膜,G-D/C3膜的透光率降低了近20%。這是由于硅藻土本身作為無(wú)機(jī)物質(zhì),具有不透明性,在膜中會(huì)阻礙光線的透過(guò)。Akyuz等[34]發(fā)現(xiàn)在殼聚糖薄膜中添加硅藻土同樣會(huì)顯著改善薄膜的光阻隔性能。同時(shí),溶質(zhì)的量增加導(dǎo)致膜厚度變大,也會(huì)進(jìn)一步阻礙光線的透過(guò)。

表1 復(fù)合膜的厚度、色澤和透光率Table 1 Thickness, color difference and transmittance of the composite films
2.2.4 薄膜力學(xué)性能的表征
由圖4可知,可以觀察到G-C、G-D膜TS均較低。在復(fù)合薄膜中,隨D/C復(fù)合體添加量的增加,TS呈現(xiàn)逐漸降低的趨勢(shì),由17.66 MPa(G-K)下降到了13.01 MPa(G-D/C3)。TS降低一方面是因?yàn)楸∧ぶ邢闱鄯拥膿]發(fā)會(huì)致使薄膜出現(xiàn)孔洞結(jié)構(gòu),從而破環(huán)薄膜本身完整結(jié)構(gòu)[35];另一方面,過(guò)多的復(fù)合體則可能會(huì)導(dǎo)致其在膜中的分散性降低,使顆粒發(fā)生團(tuán)聚,造成顆粒尺寸增大和周邊區(qū)域的應(yīng)力集中[36]。此外,G-C膜相比于G-D膜EAB顯著增加,因?yàn)橄闱鄯拥拇嬖跁?huì)對(duì)明膠薄膜產(chǎn)生增塑作用,降低明膠單體之間的相互作用,阻礙聚合物的鏈-鏈相互作用[37]。最終在復(fù)合膜中,EAB由G-K薄膜組的61.06%提升至G-D/C3薄膜組的80.45%。在D/C添加量為20%時(shí),復(fù)合膜具備優(yōu)異的力學(xué)性能,其TS為15.13 MPa,EAB為67.43%。總地來(lái)說(shuō),由于香芹酚的增塑作用,D/C復(fù)合體的加入可一定程度改善明膠膜的EAB。

圖4 復(fù)合膜的力學(xué)性能Fig. 4 Mechanical properties of the composite films
2.2.5 含水率、水溶性、水蒸氣透過(guò)率和氧氣透過(guò)率
由表2可知,復(fù)合膜的含水率和水溶性隨著D/C復(fù)合體添加量的增加而顯著降低,這歸因于D/C復(fù)合體中硅藻土作為無(wú)機(jī)填料不溶于水,增加了復(fù)合膜中不溶物質(zhì)的量。此外,香芹酚作為一種疏水性化合物,它的存在也有助于明膠膜的疏水性提升[34,38]。Hosseini等[28]將百里香、丁香、肉桂精油添加至殼聚糖中制備抗菌復(fù)合膜并測(cè)定其含水率和溶解度,也得到了類似的結(jié)果。然而值得注意的是,僅含有香芹酚的G-C膜水溶性最高,這可能是由于G-C膜中的香芹酚容易從明膠基質(zhì)遷移到浸泡的水中而損失[39]。

表2 復(fù)合膜的含水率、水溶性、WVP和OPTable 2 Water content, solubility, water vapor permeability and oxygen permeability of the composite films
G-C薄膜的WVP相較于G-K顯著增加。復(fù)合體中香芹酚的存在對(duì)明膠膜產(chǎn)生了一定的增塑作用,降低了明膠膜網(wǎng)絡(luò)內(nèi)的內(nèi)聚力,從而導(dǎo)致WVP增加[7]。Kavoosi等[7]同樣發(fā)現(xiàn)在明膠膜中添加香芹酚可導(dǎo)致WVP的增加。G-D膜的WVP最高,為1.93×10-12g/(cm·s·Pa)。這是由于硅藻土顆粒的高孔隙率和聚集性,有利于水分子通過(guò)硅藻土內(nèi)部孔隙和聚合物基體界面區(qū)域的擴(kuò)散[40-41]。結(jié)果表明,D/C復(fù)合體的加入會(huì)降低復(fù)合膜含水率和水溶性,但使其WVP增大。
食品在保存過(guò)程中的氧滲透性是影響食品保質(zhì)期的一個(gè)重要因素[21]。如表2所示,G-C薄膜的OP相較于G-K有所增加,這是因?yàn)橄闱鄯拥脑鏊茏饔脤?dǎo)致明膠基質(zhì)分子間距增大,進(jìn)而使膜的連續(xù)性和緊密結(jié)構(gòu)受到影響;此外,隨著D/C復(fù)合體添加量的增加,復(fù)合膜的OP也呈現(xiàn)逐漸增大的趨勢(shì),這是因?yàn)閺?fù)合體中多孔性硅藻土的存在同樣會(huì)破壞明膠基質(zhì)致密完整的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),進(jìn)而促進(jìn)空氣中氧分子的通過(guò),造成復(fù)合膜的OP增大。說(shuō)明與G-K相比,復(fù)合膜的阻隔性能有所降低。
2.2.6 薄膜的抗氧化性和抗菌特性
2.2.6.1 抗氧化性
在明膠基質(zhì)當(dāng)中添加抗氧化活性物質(zhì)能夠有效抑制食品的氧化反應(yīng)進(jìn)而延長(zhǎng)食品貨架期[42]。如圖5所示,G-K、G-D均具有一定DPPH自由基清除效果,這是由于硅藻土本身并不具有抗氧化活性,但明膠中多肽具有一定的抗氧化活性[22,43]。而G-C與G-D/C3均表現(xiàn)出最高的DPPH自由基清除率,且二者無(wú)顯著性差異(P>0.05)。當(dāng)D/C復(fù)合體在明膠中添加量達(dá)到20%時(shí),DPPH自由基清除率為56.33%。這是因?yàn)橄闱鄯泳哂休^強(qiáng)的抗氧化活性,它的抗氧化能力除了取決于其環(huán)的空間位阻效應(yīng)和電子效應(yīng)外,還與羥基的存在有關(guān),羥基能夠提供氫原子與氧原子結(jié)合[44]。因此,可以發(fā)現(xiàn)隨著復(fù)合體添加量的增加,復(fù)合的DPPH自由基清除率顯著提升(P<0.05)。
2.2.6.2 抗菌性
如圖6所示,由于明膠本身不具有抗菌活性,G-K組并未產(chǎn)生抑菌圈。隨著加入復(fù)合體的添加量增加,復(fù)合膜樣片周圍透明的抑菌圈逐漸增大,說(shuō)明復(fù)合膜具有較好的抑菌活性。當(dāng)D/C復(fù)合體在明膠膜中添加量達(dá)到20%時(shí),薄膜對(duì)金黃色葡萄球菌和大腸桿菌抑菌圈直徑可分別達(dá)到39.40 mm和23.70 mm(表3)。這主要?dú)w因于D/C復(fù)合體中香芹酚能快速提高細(xì)菌細(xì)胞膜通透性及滲透壓,造成胞內(nèi)物質(zhì)外泄,并且進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部的酚類物質(zhì)可改變細(xì)菌酶系統(tǒng),導(dǎo)致微生物死亡[45-46]。此外,復(fù)合膜對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌性要強(qiáng)于對(duì)大腸桿菌的抑菌性。這是因?yàn)楦锾m氏陰性菌細(xì)胞壁通常會(huì)多一層脂蛋白層或磷脂層和脂多糖層,限制了酚類物質(zhì)與細(xì)菌內(nèi)部蛋白結(jié)合[45]。對(duì)比G-D/C3與G-C兩組,雖然它們含有等量的香芹酚,但G-D/C3的抑菌效果要略差于G-C。這可能與香芹酚被硅藻土負(fù)載后,在D/C復(fù)合體的釋放速率較為緩慢有關(guān),后續(xù)實(shí)驗(yàn)將進(jìn)一步證實(shí)此推測(cè)。總地來(lái)說(shuō),D/C復(fù)合體的加入成功賦予明膠復(fù)合膜優(yōu)異抗菌活性。

表3 復(fù)合薄膜對(duì)金黃色葡萄球菌和大腸桿菌的抑菌圈直徑Table 3 Inhibition zone diameters of the composite films against S. aureus and E. coli

圖6 復(fù)合膜的抑菌性能Fig. 6 Antibacterial activities of the composite films
2.2.7 復(fù)合膜的香芹酚緩釋性能
2.2.7.1 G-D/C3和G-C薄膜貯藏過(guò)程中香芹酚的釋放率
香芹酚在薄膜放置過(guò)程中會(huì)因揮發(fā)而損失,導(dǎo)致復(fù)合膜的抗菌時(shí)效受到影響。由圖7可知,隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng),精油香芹酚在G-D/C3復(fù)合膜中的釋放率始終低于G-C薄膜。G-C復(fù)合薄膜中香芹酚在第14天左右便釋放完全,而G-D/C3薄膜中香芹酚在第18天才完全釋放,比前者延遲了4 d。這是由于在G-D/C3復(fù)合膜中,香芹酚的釋放可分為兩個(gè)階段:第一個(gè)階段為游離精油的揮發(fā)釋放(與G-C組相似);第二階段為負(fù)載在硅藻土內(nèi)部精油的遷移揮發(fā)[18]。添加D/C復(fù)合體后,硅藻土的吸附負(fù)載能夠減緩香芹酚釋放的速率,有效降低其在明膠復(fù)合膜成膜和儲(chǔ)存過(guò)程的損失,有利于延長(zhǎng)復(fù)合膜的抗菌活性時(shí)效[47]。

圖7 G-D/C3和G-C膜中香芹酚的釋放率Fig. 7 Carvacrol release from G-D/C3 and G-C films
2.2.7.2 G-D/C3和G-C薄膜的抑菌性
基于上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果,進(jìn)一步測(cè)定了G-D/C3和G-C兩組復(fù)合膜對(duì)金黃色葡萄球菌連續(xù)培養(yǎng)5 d過(guò)程中抑菌圈直徑的變化,結(jié)果如圖8所示。隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),兩組抑菌圈直徑均有所減小,這與香芹酚的揮發(fā)損失有關(guān)。放置4 d后,G-D/C3薄膜抑菌圈直徑在不再縮小;而G-C薄膜抑菌圈直徑仍在不斷縮小。印證了G-D/C3薄膜中香芹酚釋放更為緩慢的結(jié)論。同時(shí),可以發(fā)現(xiàn)在4 d后G-C膜周圍出現(xiàn)多個(gè)單菌落,而G-D/C3膜中并未觀察到有類似明顯的變化。在貯藏結(jié)束時(shí),G-D/C3薄膜抑菌圈直徑由0 d時(shí)的45 mm最終降低至37 mm,變化率為17.8%;而G-C薄膜抑菌圈直徑由0 d時(shí)的59 mm最終降低至44 mm,變化率為25.4%。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果均有效證明了G-D/C3薄膜相較于G-C薄膜具有更加長(zhǎng)效的抑菌效果。

圖8 貯藏5 d過(guò)程中G-D/C3和G-C膜對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌圈直徑變化Fig. 8 Change in inhibition zone diameter of G-D/C3 and G-C films against S. aureus during storage for up to five days
本研究利用多孔性的硅藻土負(fù)載易揮發(fā)的香芹酚制備D/C復(fù)合體,并將其加入到明膠膜溶液中,利用流延成膜法制得活性復(fù)合膜,探究了不同D/C復(fù)合體添加量對(duì)復(fù)合膜結(jié)構(gòu)與性能的影響。通過(guò)掃描電子顯微鏡觀察和傅里葉變換紅外光譜分析證實(shí)了香芹酚成功物理吸附在硅藻土內(nèi)部孔洞與表面,且兩者之間可能存在氫鍵等相互作用而有效結(jié)合。D/C復(fù)合體的加入顯著改善了明膠基復(fù)合膜的光阻隔性能、水不溶性和EAB,但同時(shí)也會(huì)使TS、WVP和OP有所降低。更為重要的是,D/C復(fù)合體的加入賦予了明膠膜良好的抗氧化性和抑菌性能。此外,與含等量香芹酚的G-C膜相比,硅藻土的負(fù)載可以使G-D/C膜中香芹酚具有更緩慢的釋放速率,有利于延長(zhǎng)復(fù)合膜的抗菌時(shí)效。本實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果能夠?yàn)橐詿o(wú)機(jī)硅藻土負(fù)載植物精油制備新型緩釋抗菌明膠基復(fù)合膜的研發(fā)及其在食品包裝方面的應(yīng)用提供一定參考。