洛絨鄧珠,藍 嵐,向 陽,潘 瑤,郝力力
(1.甘孜藏族自治州畜牧業科學研究所,四川 康定 626000;2.西南民族大學畜牧獸醫學院,四川 成都 610041;3.四川省鹽亭縣高端人才服務中心,四川 鹽亭 621600)
1.1 樣本采集 2021年3月~2021年8月,分別在爐霍縣雅德鄉、斯木鄉、仁達鄉、旦都鄉、泥巴鄉和宜木鄉6個鄉的416頭牦牛體表采集蜱。在各鄉選3~4個村,各村選2~4個農場,從每頭牦牛的體表采集5~6 只蜱。按照地點編號分別裝入采集管中,塞入潮濕脫脂棉,經形態學鑒定后將蜱浸于75%乙醇溶液,置4 ℃冰箱中保存待用。
1.2 主要試劑及儀器 試劑:組織基因組DNA提 取 試 劑 盒(EasyPure Genomic DNA Kit)、Trans 2K DNA Marker、1×TAE 溶液和瓊脂糖購自北京全式金公司,1.1×T3 Super PCR Mix購自北京擎科生物有限公司;引物合成與測序均由生工生物工程(成都)有限公司完成。儀器:德國徠卡體式顯微鏡(Leica S9D),多功能生物樣品均質器(Bertin Precelly 24),賽默飛微量離心機(Pico 17),德國耶拿Biometra TRIO 三槽PCR 儀(Biometra TRIO 48),北京六一儀器廠電泳儀(DYY-6C),全自動數碼凝膠圖像分析系統(Tanon 5200 Multi)。
1.3 蜱形態學鑒定 根據《中國畜禽寄生蟲形態分類圖譜》[1],在體視顯微鏡下觀察蜱形態特征并拍照保存。
1.4 DNA提取 取出保存在75%乙醇溶液中的蜱,用無菌去離子水沖洗3 次。待干燥后沿蜱縱向中軸線切為兩半,分別裝入兩支1.5 mL EP 管中,一支置于-80 ℃冰箱凍存,一支加入500 μL無菌水用多功能生物樣品均質器充分研磨。研磨程序如下:每管加入陶瓷珠(直徑0.5 mm 的20 珠和2 mm 的5 珠),5 500 g 研磨2 次,4 000 g 研磨1 次。取 研 磨 液200 μL,根 據EasyPure Genomic DNA Kit 試劑盒說明書提取蜱基因組DNA,-20 ℃保存備用。
1.5 PCR 檢測 參照Abdullah 等[2]報道的方法對蜱進行分子鑒定,引物信息見表1。PCR 擴增體系如下:模板1 μL,上游、下游引物各1 μL(10 μmol/L),2×Easy Taq PCR SuperMix 12.5 μL,ddH2O 9.5 μL,充分混勻。設陽性對照和陰性對照(去離子水)。蜱ITS2基因的擴增程序為:94 ℃預變性4 min;94 ℃變性15 s,55 ℃退火35 s,72 ℃延伸55 s,共40 個循環;72 ℃延伸8 min;16 ℃保溫。

表1 PCR引物
1.6 序列分析及統計分析 將全部陽性樣品送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序,使用DNAStar 軟件對所得全部序列進行拼接分析,在NCBI網站中使用BLAST比對,再使用MEGA 6.0軟件以Neighbor-Joining 法(Bootstrap 值為1 000)構建分子進化樹,并用SPSS 20.0 軟件對數據進行統計學分析(P<0.05 表示差異具有統計學意義)。
2.1 樣本采集數量及形態學鑒定 經初步鑒定,在爐霍縣的6 個采集點共鑒定出2 種蜱,即微小扇頭蜱與青海血蜱。其中,微小扇頭蜱791只,占96.5%,為優勢種;青海血蜱29只,占3.5%。在仁達鄉、斯木鄉、宜木鄉、泥巴鄉這4 個采集點只采集到微小扇頭蜱;在旦都鄉和雅德鄉則采集到這兩種蜱。結果詳見表2。
2.2 蜱的分子鑒定
2.2.1 蜱ITS2 基因擴增 以1.4 中提取的DNA為模板,采用常規PCR方法擴增蜱的ITS2基因片段,結果顯示在1 600 bp左右處出現條帶,與預期片段大小相符(圖1)。

圖1 蜱ITS2基因的PCR擴增結果(部分樣本)
2.2.2ITS2 基因遺傳進化分析 將測序所得的全部序列進行拼接、比對后共得到19條不同的序列,其中5 條為青海血蜱(H.qinghaiensisLuhuo 1-4),其余14 條為微小扇頭蜱(R.microplusLuhuo 1-14)。選取經BLAST比對后同源性最高的1~2條序列確定種,顯示為青海血蜱及微小扇頭蜱;在NCBI 中選取分離自不同地區的青海血蜱和微小扇頭蜱的ITS2基因序列,選取其他幾個種的血蜱和革蜱的ITS2基因序列作為參考序列,構建分子進化樹(如圖2和圖3所示)。本研究所得的5 條青海血蜱序列均與甘肅平涼(JQ737119)、青海省(JQ737115)H.qinghaiensis的親緣關系最近,并聚于一大支,相似性在97.4%~97.6%。

圖2 ITS2基因構建青海血蜱進化樹

圖3 ITS2基因構建微小扇頭蜱進化樹
R.microplusLuhuo1-14 的相似性在97.6%以上,其差異在0.1%~2.3%。進化分析顯示14 條序列均與微小扇頭蜱的親緣關系最近,聚于一支,相似性在99.2%~100%。其中,R.microplusLuhuo2 與貴州(JQ737125)分離到的微小扇頭蜱的親緣性最高,為100%;R.microplusLuhuo12 與湖南湘西(MK224585)分離到的微小扇頭蜱的同源性最低,為99.2%。
形態學鑒定要求鑒定人員的專業能力較強、工作經驗豐富,如蜱存在肢體不完整或外形極為相似的情況,則較難鑒定[3-4]。在寄生蟲的分子鑒定方法中,當前最為常用的是RCR 和DNA 測序。自2003 年Hebert 等提出DNA 分類學可用于物種鑒定以來,DNA 條形碼技術得到了迅速發展,目前已被廣泛應用于寄生蟲的鑒定[5-6]。
本研究僅鑒定出2 種蜱,即微小扇頭蜱和青海血蜱,這可能與本次收集蜱的方法、宿主及收集蜱的地理位置有關。本研究中微小扇頭蜱的占比高達96.5%,為爐霍縣半農牧地區的優勢蜱種,可能是體表采集這種方式及微小扇頭蜱本身的生活史導致的,因為它是典型的一宿主蜱,幼蟲、若蟲、成蟲各階段均在一個宿主上生長發育,只有飽血后的成蟲才會離開宿主,并且它的主要生活環境也是以農區為主。6個采樣點均屬于半農牧地區,地理位置均分布在鮮水河沿線兩岸,故農牧民的放牧區域主要集中于沿河流域的草地、農區等,此類地區均為蜱類適宜生存的地區。本研究中青海血蜱的占比較少,僅為3.5%,僅在雅德鄉、旦都鄉有檢出,這可能和采集方法、宿主有關系,因其為三宿主蜱,在幼蟲階段、若蟲階段、成蟲階段吸飽血后都會脫落,其生活史中九成時間都屬于非寄生階段。非寄生階段的蜱棲息于草原、森林等環境中。
本研究樣本僅在牦牛的體表采集,今后可以采用其他方法如布旗法,或者擴展被采集樣本的宿主種類,如犏牛、藏綿羊等,以進一步了解爐霍縣分布的蜱種類。另外,不同種類的蜱賴以生存的環境條件有所差異,如海拔高度、季節時間、植被類型等。爐霍縣境內平均海拔有3 860 m,而青海血蜱恰是在高山地區分布的高原特有種。
截至目前,共檢測出2 種蜱,證明爐霍縣至少存在微小扇頭蜱和青海血蜱。共采集到成蜱820 只,其中青海血蜱29 只,占3.5%;微小扇頭蜱791只,占96.5%,為優勢種。微小扇頭蜱為爐霍半農牧地區的優勢蜱種,在采樣的6 個半農牧鄉均有分布。青海血蜱僅存在于雅德鄉和旦都鄉。