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鼻咽拭子中鼻病毒三種檢測方法比較分析

2023-05-30 03:32:08郝丹鳳陳堅(jiān)張梓祺董學(xué)妍林源吉余道軍
浙江臨床醫(yī)學(xué) 2023年4期
關(guān)鍵詞:檢測方法

郝丹鳳 陳堅(jiān) 張梓祺 董學(xué)妍 林源吉 余道軍

鼻病毒(Human Rhinovirus,HRV)屬于小核糖核酸病毒科腸道病毒屬,是一組單正鏈的小分子RNA 病毒。HRV 的主要傳染源是患者及病毒攜帶者,經(jīng)過呼吸道傳播,可通過手到鼻或飛沫直接傳播。主要發(fā)生在早春和氣溫突然下降時(shí)節(jié),尤其在人群擁擠及空氣不流通的地方易傳播[1-2]。在呼吸道疾病中HRV 感染可以和其他病毒、細(xì)菌一起引發(fā)雙重感染、多重感染或者混合感染[3-4]。HRV 的實(shí)驗(yàn)室檢測方法與其他呼吸道病毒類似,包括病毒的分離培養(yǎng)與鑒定、核酸測序法、免疫學(xué)檢測以及基于PCR 技術(shù)的病毒核酸檢測[5-6]。隨著對HRV 致病性認(rèn)識的加深和實(shí)驗(yàn)室檢測技術(shù)的發(fā)展,基于熒光定量PCR 技術(shù)的HRV 分子診斷試劑的研發(fā)受到重視。本研究選取鼻咽拭子標(biāo)本作為觀察對象,分別采用病毒分離培養(yǎng)、核酸測序以及熒光定量PCR 方法檢測HRV,對比分析三種方法的檢測性能,為基于熒光定量PCR 方法檢測HRV 分子診斷試劑研發(fā)提供臨床驗(yàn)證數(shù)據(jù)。

1 資料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)器材 HRV 核酸檢測試劑盒(PCR-熒光探針法,中山大學(xué)達(dá)安基因股份有限公司生產(chǎn),生產(chǎn)批號:ZC2021003);檢測設(shè)備:實(shí)時(shí)熒光定量PCR 儀(型號:7500;注冊證號:國械注進(jìn)20163220767);核酸提取試劑:核酸提取或純化試劑(備案號:粵穗械備20170583 號;批號:2021059);Hela 細(xì)胞(ATCC CCL-2),EMEM 培養(yǎng)基(ATCC 30-2002),胎牛血清(Gibco 10099141C);測序法所用儀器為ABI 3730 測序儀(Thermo Fisher ABI 3730XL)。

1.2 一般資料(1)入選依據(jù):本次臨床試驗(yàn)主要選取臨床確診或疑似為HRV 感染的病例,如呼吸道感染,包括肺炎、支氣管炎等患者(表現(xiàn)為發(fā)熱、流涕及鼻塞、咳嗽、喘息、氣促等局部呼吸道癥狀)。同時(shí),為考查HRV 核酸檢測試劑盒的臨床特異性,本次臨床試驗(yàn)還將納入部分臨床癥狀與HRV 感染相似,且臨床診斷為其它細(xì)菌或病毒感染(如呼吸道合胞病毒、甲型流感病毒、乙型流感病毒、副流感病毒、腺病毒、人博卡病毒、人偏肺病毒、人類冠狀病毒229E 型、人類冠狀病毒OC43 型、人類冠狀病毒NL63 型、人類冠狀病毒HKU1 型、肺炎衣原體、肺炎支原體、SARS 病毒、腸道病毒等)的病例。(2)入選標(biāo)準(zhǔn):①臨床疑似為HRV感染的病例,如呼吸道感染病例,包括肺炎、支氣管炎等;②臨床癥狀與HRV 感染相似,且臨床診斷為其它細(xì)菌或病毒感染的病例;③取樣后封裝保存的鼻咽拭子或≥1mL 的樣本保存液;④性別、年齡不限。(3)排除標(biāo)準(zhǔn):①樣本量不足以檢測者;②不符合入選標(biāo)準(zhǔn)者。(4)剔除標(biāo)準(zhǔn):①登記表記錄核心信息不完整的病例;②樣本因收集或保存不當(dāng)不能用于檢測者或檢測失敗者。

1.3 標(biāo)本采集方法 本次臨床試驗(yàn)中所使用的樣本均為人鼻咽拭子樣本。樣本采集方法為使用棉拭子輕柔轉(zhuǎn)動(dòng)、緩慢插入受試者鼻孔至顎部,停留片刻后緩慢轉(zhuǎn)動(dòng)退出,將鼻咽拭子置入無菌采樣管,共采集2 根拭子。核酸提取前,加滅菌生理鹽水1.5 mL 至無菌采樣管,1根拭子放入生理鹽水管用于熒光探針法,充分震蕩搖勻,擠干棉拭子,立即離心或置4℃冰箱過夜;另1 根拭子放入病毒保存管中(內(nèi)含3 mL 病毒保存液),用于病毒分離培養(yǎng)。所采集的標(biāo)本可立即用于測試,或長期保存于(-70±5)℃,也可以保存于(-20±5)℃待測,保存期為6 個(gè)月,標(biāo)本避免反復(fù)凍融。以上鼻咽拭子樣本采集已獲得倫理委員會(huì)批準(zhǔn)豁免簽訂受試者知情同意書。

1.4 試驗(yàn)方法(1)PCR-熒光探針法(熒光定量PCR 法):編盲樣本按照說明書及樣本操作規(guī)程進(jìn)行預(yù)處理即核酸提取,可馬上進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn),或保存于(-20±5)℃待用(7 d 內(nèi)使用)。提取后的樣本按照HRV 核酸檢測試劑盒說明書進(jìn)行檢測,若檢測結(jié)果不符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則按說明書要求進(jìn)行復(fù)檢,若復(fù)檢仍不符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則剔除該樣本;若結(jié)果符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則認(rèn)為結(jié)果可信。(2)病毒分離培養(yǎng)鑒定:按照病毒分離培養(yǎng)鑒定操作規(guī)程進(jìn)行病毒分離培養(yǎng)。若檢測結(jié)果不符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則進(jìn)行復(fù)檢,若復(fù)檢仍不符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則剔除該樣本;若結(jié)果符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則認(rèn)為結(jié)果可信。(3)測序法:按照病毒核酸測序法(Sanger 測序方法)進(jìn)行操作。若檢測結(jié)果不符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則進(jìn)行復(fù)檢,若復(fù)檢仍不符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則剔除該樣本;若結(jié)果符合質(zhì)量控制標(biāo)準(zhǔn),則認(rèn)為結(jié)果可信。

1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 試驗(yàn)結(jié)果統(tǒng)計(jì)分析選用符合方案數(shù)據(jù),即所有符合試驗(yàn)方案要求的受試者樣本數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,主要采用四格表整理試驗(yàn)數(shù)據(jù)。考核試劑和核酸測序法對比采用Kappa 一致性檢驗(yàn),P≤0.01 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。試驗(yàn)真實(shí)性評價(jià):陽性符合率、陰性符合率、總符合率、Kappa 值等指標(biāo)計(jì)算。

2 結(jié)果

2.1 樣本入組情況 本次試驗(yàn)共隨機(jī)篩選鼻咽拭子樣本220 例,根據(jù)排除標(biāo)準(zhǔn)和剔除標(biāo)準(zhǔn),最終入組樣本220 例,均為新鮮樣本。樣本年齡范圍為7 d~87 歲(見表1),其中男103 例(占比46.82%),女117 例(占比53.18%)。本研究主要依據(jù)臨床背景信息選取疑似為HRV 感染的病例,同時(shí)還納入了少量易混淆的其它病原體感染病例對PCR-熒光探針法的檢測性能進(jìn)行驗(yàn)證。上述入組樣本的臨床背景信息主要包括:發(fā)熱130例,肺炎13 例,喘息性支氣管肺炎6 例,支氣管肺炎23 例,吸入性肺炎1 例,肺部感染4 例,支氣管炎7例,急性毛細(xì)支氣管炎4 例,急性支氣管炎2 例,哮喘性支氣管炎3 例,呼吸道感染2 例,急性上呼吸道感染11 例,急性扁桃體炎6 例,急性化膿性扁桃體炎3 例,急性喉氣管炎2 例,支氣管擴(kuò)張伴感染1 例,支氣管哮喘1 例,咳嗽1 例及其它相關(guān)癥狀,部分樣本存在多病癥交叉情況。

表1 年齡占比分層圖

2.2 三種方法HRV 檢出率 本次試驗(yàn)共檢測鼻咽拭子樣本220 例,病毒分離培養(yǎng)檢測陽性樣本為20 例、陰性樣本為200 例;核酸測序法檢測陽性樣本為32 例、陰性樣本為188 例;PCR-熒光探針法試劑檢測結(jié)果為陽性的樣本為35 例、陰性樣本為185 例。

2.3 PCR-熒光探針法與病毒分離培養(yǎng)鑒定結(jié)果分析 根據(jù)病毒分離培養(yǎng)檢測結(jié)果,將220 例鼻咽拭子樣本研究對象分為陽性組和陰性組,將PCR-熒光探針法檢測結(jié)果與其進(jìn)行比較評價(jià)(見表2),兩者檢測陰陽性結(jié)果不一致樣本15 例。使用SPSS22.0 軟件進(jìn)行kappa檢 驗(yàn),kappa=0.692(95%CI:0.549~0.835),P<0.001。α=0.05 檢驗(yàn)水準(zhǔn)下,PCR-熒光探針法與病毒分離培養(yǎng)檢測結(jié)果的一致性一般。

表2 檢測結(jié)果統(tǒng)計(jì)四格表(n)

2.4 PCR-熒光探針法與測序結(jié)果分析 根據(jù)核酸測序法檢測結(jié)果,將220 例鼻咽拭子樣本研究對象分為陽性組和陰性組,將PCR-熒光探針法檢測結(jié)果與其進(jìn)行比較評價(jià)(見表3),兩者檢測陰陽性結(jié)果不一致樣本3例。使用SPSS22.0 軟件進(jìn)行kappa 檢驗(yàn),kappa=0.947(95%CI 0.888~1.006),P<0.001。α=0.05 檢驗(yàn)水準(zhǔn)下,PCR-熒光探針法與核酸測序法檢測結(jié)果的一致性好。

表3 檢測結(jié)果統(tǒng)計(jì)四格表(n)

3 討論

隨著臨床上對HRV 致病性、傳染性及流行病學(xué)研究的深入,HRV 實(shí)驗(yàn)室檢測也隨之得到重視。本次臨床試驗(yàn)采用病毒分離培養(yǎng)鑒定方法作為第一種實(shí)驗(yàn)室檢測方法,采用測序法作為第二種HRV 核酸檢測方法,將PCR-熒光探針法檢測結(jié)果分別與兩種方法檢測結(jié)果進(jìn)行比較分析,用以評價(jià)PCR-熒光探針法的臨床應(yīng)用性能。

本次臨床試驗(yàn)隨機(jī)篩選樣本220 例,樣本類型均為鼻咽拭子,均為新鮮樣本。其中病毒分離培養(yǎng)和PCR-熒光探針法陰陽性檢測結(jié)果不一致的樣本15 例,核酸測序法2 和PCR-熒光探針法陰陽性檢測結(jié)果不一致的樣本為3 例,PCR-熒光探針法與核酸測序法2 檢測結(jié)果一致性較好(kappa=0.947,P<0.001)。

在PCR 法用于病毒檢測前,病毒分離培養(yǎng)是作為病毒檢測的金標(biāo)準(zhǔn),病毒的分離與鑒定對監(jiān)測流行病的新動(dòng)向、研究新疾病、新病毒以及疫苗的研發(fā)都有重要作用。病毒分離法是一種傳統(tǒng)的檢測技術(shù),其優(yōu)點(diǎn)是可靠,缺點(diǎn)是操作繁瑣,部分標(biāo)本中病毒量少或活性低,產(chǎn)生細(xì)胞病變慢,常需盲傳2~3 代,若作病毒型別鑒定,實(shí)驗(yàn)周期更長,現(xiàn)已較少用于臨床[7]。對病毒分離培養(yǎng)和PCR-熒光探針法15 例檢測結(jié)果不一致的樣本進(jìn)行分析,可能是樣本HRV 載量較低,未達(dá)到能使細(xì)胞出現(xiàn)CPE 病變的最低濃度,而PCR-熒光探針法的檢測靈敏度較病毒分離培養(yǎng)鑒定方法靈敏度高,從而導(dǎo)致PCR-熒光探針法檢測結(jié)果陽性而病毒分離培養(yǎng)檢測結(jié)果陰性。

Sanger 測序法采用的是直接測序法,是一代測序法的經(jīng)典代表,發(fā)展較為成熟,測序片斷較長,成本較低,但是只能測序,無法準(zhǔn)確定量,同時(shí)操作耗時(shí)、煩瑣、通量受局限,在臨床應(yīng)用不方便[8]。對Sanger 測序法和PCR-熒光探針法3 例不一致的樣本進(jìn)行分析,可能是PCR-熒光探針法和測序方法的檢測靶標(biāo)區(qū)域不同,兩者引物的檢測性能存在差異;另外,PCR-熒光探針法檢測靈敏度較測序方法靈敏度高,也可能導(dǎo)致低濃度樣本PCR-熒光探針法檢測結(jié)果為陽性而測序方法檢測結(jié)果為陰性。

實(shí)時(shí)熒光定量PCR 技術(shù)(PCR-熒光探針)的出現(xiàn),實(shí)現(xiàn)了PCR 從定性到定量的巨大飛躍,為樣品中靶標(biāo)序列或基因片段的精確定量提供了一種簡單而又方便的方法[9]。PCR-熒光探針技術(shù)以其操作簡便、檢測速度快、靈敏度高、同源分析特異性強(qiáng)、全封閉反應(yīng)等優(yōu)點(diǎn)成為了分子生物學(xué)研究中的重要工具[10],目前許多診斷應(yīng)用也相繼被開發(fā)。本研究通過三種方法同時(shí)檢測鼻咽拭子中的HRV,試驗(yàn)結(jié)果表明PCR-熒光探針法可靠、準(zhǔn)確、安全、簡便、穩(wěn)定,具有較高的臨床應(yīng)用價(jià)值。

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