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鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥氮吸收、代謝及根系發育的影響

2023-03-21 01:50:58張明輝時曼麗
江蘇農業科學 2023年4期
關鍵詞:效率

張明輝,時曼麗

(南陽市農業科學院,河南南陽 473000)

氮素是小麥生長發育過程中所需的最多的礦質元素之一,氮素對保證小麥產收、品質及成品風味具有至關重要的作用[1]。然而在小麥田間生產中,施氮量與產量間存在閾值,近年來,氮肥的過量施用已成為小麥可持續化生產的瓶頸問題,其在造成環境污染的同時伴隨著小麥生產成本的增加[2]。小麥根系的氮素攝取、同化能力與地上部氮素同化、轉運以及氨基酸、蛋白質的合成密切相關[3]。小麥對土壤氮的攝取能力一方面受土壤環境因素影響(例如土壤水分、氮濃度),另一方面取決于植物自身的基因差異[4]。一般而言,耐低氮、氮高效品種可通過調控根系構型、根系分泌物組成等策略增加植株對氮素的吸收量,且氮素代謝更旺盛、同化能力更強[5]。

鉬(Mo)是高等植物生長發育的必需微量元素之一。在我國由于對鉬的功能缺乏認識,缺Mo在酸性土壤中較為普遍,據相關報道大約4 450萬hm2的耕地處于輕度缺鉬狀態[12]。大量研究表明,Mo在植株光合作用、氮代謝、激素信號傳導和非生物脅迫中扮演重要作用,深刻影響著植物的生長發育和生理代謝過程[13]。此外,Mo也是鉬輔因子生物合成的必需金屬元素,鉬輔因子是相關酶促反應的重要元件,其可提高NR、NiR、GS等的活性,在氮素還原、同化及固定過程中發揮不可替代的作用[14]。以往的研究主要集中于植物對不同氮源的響應,但關于施Mo與不同氮源下對冬小麥氮代謝及同化的影響鮮有報道。基于此,本研究探索了Mo與氮形態對不同氮效率小麥葉片中氮代謝酶活性、氮轉運基因表達及氮同化產物的影響,以期為小麥的鉬肥施用提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 供試材料

試驗于2021年11月至2022年2月在南陽市農業科學院進行。供試小麥品種為周麥28、洛麥34,品種篩選結果表明周麥28、洛麥34分別為氮高效、氮低效基因型[15],兩者全生育期分別為231、230 d,來自河南省農業科學院經濟作物研究所。種子采用0.5%次氯酸鈉進行表面滅菌15 min,然后用去離子水沖洗數次并浸泡12 h,放置于鋪墊潤濕濾紙的培養皿中,于28 ℃培養箱中暗處理催芽24 h。

供試土壤取自河南省南陽市農業科學附近原始土,土壤類型為偏酸性沙壤土。土壤經風干后混勻過3 mm網篩,土壤pH值為6.54,土壤有機質含量為11.62 g/kg、全氮含量為0.89 g/kg、堿解氮含量為44.58 mg/kg、有效磷含量為13.52 mg/kg、速效鉀含量為62.96 mg/kg、有效鉬含量為 0.13 mg/kg。

1.2 試驗設計

盆栽裝置為黑色方形塑料盒(長×寬×高,20 cm×15 cm×15 cm),每盆裝2.5 kg土。每盆施1.2 g純磷,磷、鉀肥施用比例m(P2O5)∶m(K2O)=12 ∶8,相關氮磷鉀肥皆采用水溶方式提前施入,并保持土壤75%的持水量平衡1周。每盆播入小麥種子10粒,出苗后減至5株。于拔節—抽穗期(168 d)采用根施方式施入Mo溶液,1周后盆栽收獲。種植期間不定時加入無菌水,其他管理措施同小麥作物培育方法。

1.3 樣品采集及測定分析

小麥根系含氮同化物包含游離氨基酸、可溶性蛋白,游離氨基酸含量參照GB/T 30987—2020《植物中游離氨基酸的測定》借助Nano Drop 2000 UV-VIS紫外分光光度計(Thermo,Fisher,Waltham,MA,USA)采用茚三酮比色法測定。可溶性蛋白含量使用考馬斯亮藍G-250法,采用用分光光度計在 595 nm 處測定[18]。

1.3.2 小麥根系構型測定 用自來水輕輕沖洗根部以去除沙土,將植株根系漂浮在有機玻璃托盤約1 cm深度的水中,并使用臺式掃描儀(EPSON Perfection V800 Photo,Japan)進行掃描,使用WinRHIZO圖像分析系統測定根系總根長、表面積、平均直徑和根尖數。

1.3.3 小麥根系氮素轉運蛋白基因表達水平測定 采用TRIzol試劑盒(Invitrogen)對小麥根系進行總RNA提取,使用DNaseI-Verso cDNA合成試劑盒將RNA反轉構建cDNA。使用ReverTra Ace qPCR RT Kit從總RNA合成第一鏈cDNA。實時PCR采用SYBR Green mix與 7500快速實時PCR序列檢測系統上進行。以小麥TaActin為對照基因,相關氮代謝同化酶基因及氮轉運蛋白基因的引物序列見表1。熱曲線反應程序如下:95 ℃ 30 s、95 ℃ 10 s、60 ℃ 20 s、72 ℃ 30 s,40個循環。對熔化曲線進行分析,并進行瓊脂糖凝膠電泳以保證擴增子質量。具體反應體系、反應程序步驟參照Wang等的研究[19],采用2-ΔΔCT斷層掃描方法計算目標基因的相對轉錄豐度。

表1 氮代謝同化酶基因及氮轉運蛋白相關基因的qRT-PCR引物序列信息

1.4 數據處理與統計分析

采用Microsoft excel 2013進行數據整理,采用IBM SPSS 19.0軟件進行試驗數據統計分析(α=0.05),采用Origin 2021進行圖形繪制。

2 結果與分析

2.1 鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥根系氮組分含量的影響

由表2可知,單一硝態氮處理和硝銨組合處理下,周麥28、洛麥34均表現為亞硝態氮含量<銨態氮含量<硝態氮含量,而在單一銨態氮處理下2個基因型小麥均呈亞硝態氮含量<硝態氮含量<銨態氮含量。在單一硝態氮處理和硝銨組合處理供應條件下,與-Mo處理相比,+Mo處理均降低了2個基因型小麥的硝態氮含量,而周麥28比洛麥34變幅更大。然而,與硝態氮含量含量相比,Mo的施用增加了2個氮效率基因型冬小麥的亞硝態氮含量和銨態氮含量,這表明Mo在硝態氮同化途徑中起著重要作用。

表2 鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥葉片氮組分含量的影響 μmol/g

2.2 鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥根系氮代謝酶活性的影響

2.3 鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥氮同化物含量的影響

2.4 鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥根系構型的影響

2.5 鉬與氮形態對不同氮效率冬小麥氮轉運基因表達的影響

3 結論與討論

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