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黃精總皂苷的提取和含量測定方法研究*

2023-03-20 08:11:08戴萬生畢露露
云南中醫(yī)中藥雜志 2023年2期

戴萬生,畢露露,邱 斌,賀 森,顧 雯

(云南中醫(yī)藥大學(xué),云南 昆明 650500)

2020版《中國藥典》收載黃精的來源為百合科植物滇黃精PolygonatumkingianumColl.et Hemsl.、黃精PolygonatumsibiricumRed.或多花黃精PolygonatumcyrtonemaHua.的干燥根莖。主要含有多糖、甾體皂苷、三萜、生物堿、木脂素、黃酮、植物甾醇及揮發(fā)油等活性成分[1]。關(guān)于黃精及其炮制品的質(zhì)量評價(jià),主要以糖類和皂甙類成分為指標(biāo),《中國藥典》(2020版)以多糖為質(zhì)量評價(jià)指標(biāo)。總皂苷的測定以香草醛-高氯酸比色法較為常用[2-4],黃精總皂苷和皂苷元的含量測定亦有一些文獻(xiàn)報(bào)道[5-8],但方法不統(tǒng)一,結(jié)果和結(jié)論存在較大差異。本文以滇黃精及其炮制品為原料,對黃精總皂苷測定方法進(jìn)行研究,確立以總皂苷含量為指標(biāo)的黃精質(zhì)量評價(jià)方法,為黃精炮制工藝和質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的制定提供科學(xué)依據(jù)。

1 儀器和材料

BioMate 3S紫外可見分光光度計(jì)(美國),AR224CN電子天平(奧豪斯儀器(常州)有限公司),SK7210型超聲波清洗器(上海科導(dǎo)超聲儀器有限公司),DK-98-ⅡA恒溫水浴鍋(天津市泰斯特儀器有限公司),薯預(yù)皂苷元對照品(上海源葉生物科技有限公司),香蘭素(天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所),其余試劑均為分析純。

黃精(采自云南祿豐,經(jīng)邱斌教授鑒定為滇黃精PolygonatumkingianumColl.Et Hemsl.的根莖。)

2 實(shí)驗(yàn)方法與結(jié)果

2.1 樣品的炮制

2.1.1 生黃精 取鮮黃精,去除雜質(zhì),洗凈,置沸水中煮15 min,取出,放涼,切3~4 mm厚片,60 ℃干燥,得生黃精片,粉碎,過60目篩,備用。

2.1.2 蒸黃精 取鮮黃精,去除雜質(zhì),洗凈,置蒸制容器內(nèi)蒸,從已至子,取出,切3~4 mm厚片,60 ℃干燥,得蒸黃精,粉碎,過60目篩,備用。

2.1.3 酒黃精 取生黃精片,適宜的容器內(nèi),加20%黃酒及適量(100%)水拌勻,浸潤過夜,置蒸制容器內(nèi)蒸12 h,悶潤12 h,取出,60 ℃干燥,得酒黃精,粉碎,過60目篩,備用。每100kg黃精,用黃酒20 kg。

2.1.4 炙黃精 取生黃精片,置適宜的容器內(nèi),加入黑豆汁、蜂蜜、白酒及適量水(85%)拌勻,浸潤過夜,置蒸制容器內(nèi)蒸12 h,悶潤12 h,取出,60 ℃干燥,得炙黃精,粉碎,過60目篩,備用。每100kg黃精,用黑豆10 kg,蜂蜜5 kg,白酒5kg。。

2.1.5 九蒸九曬黃精 取鮮黃精,去除雜質(zhì),洗凈,置蒸制容器內(nèi)蒸4 h,取出,60 ℃干燥4h,如此反復(fù)九次,切3~4 mm厚片,取出,60 ℃干燥,得九蒸九曬黃精,粉碎,過60目篩,備用。

2.2 不同提取方法比較

2.2.1 正丁醇超聲提取法 取生、熟黃精粗粉(過60目篩)約1 g,精密稱定,置燒瓶中,加入15倍量水飽和正丁醇,浸泡30 min,60℃超聲提取50 min,提取2次,合并濾液,減壓濃縮回收溶劑至干,得黃精總皂苷粗提物。

2.2.2 乙醇超聲提取法 取樣品3份,以80%乙醇做提取溶液,按2.2.1方法操作,得黃精總皂苷粗提物后,一份留用;一份用正丁醇萃取純化,加水20 mL使其溶解,移入分液漏斗,加水飽和的正丁醇提取3次,每次15 mL,合并正丁醇液,減壓濃縮,回收正丁醇得純化黃精總皂苷粗提物;一份用硫酸水解純化,將其置圓底燒瓶內(nèi),加2%稀硫酸50 mL、石油醚(60~90 ℃)50 mL,于水浴上回流(80 ℃)4 h水解,傾出、冷卻、分層,取上層(石油醚溶液),回收石油醚至得水解后黃精總皂苷粗提物。

上述不同方法提取得到的粗提物,分別加甲醇適量溶解,轉(zhuǎn)移至25 mL量瓶中定容,搖勻,按照2.3.3項(xiàng)下操作測定總皂苷含量,結(jié)果見表1。

表1 黃精不同提取方法總皂苷(%)測定結(jié)果(n=3)

實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,不同方法提取對總皂苷的測定影響較大,正丁醇超聲提取法簡便和快捷,所以宜選用水飽和正丁醇超聲提取法。

2.3 總皂苷含量測定

2.3.1 對照品溶液的制備 精密稱取薯蕷皂苷元對照品2.50 mg,置 l0 mL容量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻,即得每1 mL含0.25 mg薯蕷皂苷元的對照品溶液,(4℃冷藏)備用。

2.3.2 測定波長的選擇 精密吸取對照品溶液0.2 mL,按照2.3.3項(xiàng)下操作,用紫外-可見分光光度計(jì)在400~700 nm范圍內(nèi)掃描,見圖1,結(jié)果顯示對照液在550 nm左右處有特征吸收波長,故將檢測波長定為550 nm。

圖1 薯蕷皂苷元對照品紫外掃描光譜圖

2.3.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線制備 精密吸取上述對照品溶液0.10,0.20,0.30,0.40,0.50,0.60 mL于10 mL具塞試管中,水浴揮盡溶劑,分別加入新配制的5 %香莢蘭醛冰醋酸溶0.20 mL,高氯酸1.0 mL,在70℃水浴中加熱15 min,冰水冷卻5 min,加5 mL冰醋酸,搖勻,放置15 min后,以試劑空白為對照,在波長550處測定其吸光值。以吸光度(A)為縱坐標(biāo),薯蕷皂苷元質(zhì)量(mg)為橫坐標(biāo)回歸處理,得回歸方程:Y=0.0232X-0.0015(R2=0.9985),結(jié)果表明薯蕷皂苷元在4.03~24.18 μg/mL范圍內(nèi)濃度與A呈良好的線性關(guān)系。

2.3.4 溫度對吸光度的影響 分別精密吸取對照品、蒸黃精供試品溶液0.2 mL,按照2.3.3項(xiàng)下操作,測定吸光值。結(jié)果見圖2,其他因素相同的條件下,吸光度隨溫度的升高而增大,溫度越高對吸光度的影響越大,但溫度過高試驗(yàn)的重復(fù)性差,溫度過低(<60 ℃)反應(yīng)不完全,故本法選用70 ℃。

圖2 溫度對吸光度的影響

2.3.5 加熱時(shí)間對吸光值的影響 分別精密吸取對照品、蒸黃精供試品溶液0.2 mL,在加熱溫度為70 ℃條件下,按照2.3.3項(xiàng)下操作測定不同加熱時(shí)間下供試品溶液的吸光值,結(jié)果見圖3,在其他因素一定的條件下,吸光度隨加熱時(shí)間的增加而增大,但時(shí)間過長試驗(yàn)的重復(fù)性差,故本法選用15 min。

圖3 加熱時(shí)間對吸光值的影響

2.3.6 精密度試驗(yàn) 精密吸取對照品溶液0.2 mL各5份,按照2.3.3項(xiàng)下操作測吸光度,結(jié)果見表2,RSD為1.27%,表明儀器精密度良好。

表2 精密度測定結(jié)果

2.3.7 穩(wěn)定性試驗(yàn) 精密吸取對照品溶液各0.2 mL,按照2.3.3項(xiàng)下操作測定測定不同時(shí)間(5~50 min)的吸光度A,結(jié)果見表3,圖4,表明樣品吸光度隨時(shí)間延長顯下降趨勢,顯色后15 min相對穩(wěn)定。

表3 穩(wěn)定性測定結(jié)果

圖4 穩(wěn)定性測定結(jié)果

2.3.8 重現(xiàn)性試驗(yàn) 取同一批制黃精粉末5份,按照2.3.3項(xiàng)下操作測定總皂苷的含量,結(jié)果見表4,RSD為1.68%,表明方法重現(xiàn)性良好。

表4 重現(xiàn)性測定結(jié)果(n=5)

2.3.9 加樣回收率試驗(yàn) 精密吸取已知總皂苷含量的供試品溶6份,分別精確加入薯蕷皂苷元對照品溶液,按照2.3.3項(xiàng)下操作測定總皂苷含量,計(jì)算結(jié)果見表5,平均回收率為100.02%,RSD為2.20%。

表5 黃精中總皂苷加樣回收率(n=6)

2.4 樣品測定 吸取一定量不同供試液,揮干溶劑,加入0.2 mL5%香草醛一冰醋酸溶液(新鮮配置),冰浴時(shí)加入1 mL高氯酸,搖勻,70℃水浴加熱15 min后,冰浴5 min,加入5 mL冰醋酸,搖勻,靜置15 min,于550nm波長處測定吸光度,計(jì)算總皂苷含量(%),結(jié)果見表6。

表6 樣品測定結(jié)果(n=3)

3 討論

不同方法制備供試品溶液(生品 炮制品)的比較結(jié)果表明,制備方法不同,所測出的黃精總皂苷含量有顯著差異,采用乙醇超聲提取后(1)甲醇直接溶解法,因含雜質(zhì)較多,其總皂苷含量測定結(jié)果遠(yuǎn)高于乙醇超聲提取后正丁醇萃取所得浸膏率,不符合總皂苷實(shí)際含量;(2)水解純化法由于硫酸的作用,部分總皂苷可能被破壞,含量偏低;(3)正丁醇萃取法使樣液得到了純化而不破壞皂苷,是較好的方法;水飽和正丁醇超聲提取法在有利于除去雜質(zhì)的同時(shí)更利于皂苷類成分的溶出,是測定黃精總皂苷含量時(shí)理想的提取方法。

水浴加熱溫度及時(shí)間對吸光值均有顯著的影響,且影響能力為:溫度>時(shí)間。故操作過程中需嚴(yán)格控制水浴加熱溫度及時(shí)間。加熱溫度過高、時(shí)間過長使得試驗(yàn)重復(fù)性差,可能跟某些成分發(fā)生其他一些復(fù)雜的化學(xué)反應(yīng)有關(guān)。

樣品含量測定結(jié)果表明,黃精經(jīng)過炮制后總皂苷含量增加,九蒸九曬黃精>炙黃精>酒黃精>蒸黃精>生黃精。制黃精水飽和正丁醇超聲提取液隨著蒸制時(shí)間的增加其顏色加深,其顏色深淺對吸光度是否有影響有待進(jìn)一步的研究。

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