任文娟 趙曉燕
三七主要用于活血化瘀、消腫止痛等,近來發現其主要藥效成分三七總皂苷(panax notoginseng saponins,PNS)用于心腦血管疾病的治療。 血栓通是中藥三七的提取物,其主要成分為三七總皂苷,三七總皂苷中含多種單體皂苷成份。 血栓通注射液具有改善腦供血,增加腦灌注,抑制血小板聚集,降低血黏度等多種作用。 目前,血栓通注射液治療腦卒中意見不統一。 有學者認為,血栓通注射液有助于腦卒中的恢復,如Meng LP 等[1]發現PNS 可通過miR-155 調控炎癥因子的表達,減輕SH-SY5Y 細胞缺血再灌注損傷。 但還有一些學者對血栓通注射液的細胞保護作用持有相反意見,比如聶亞雄等[2]發現血栓通注射液治療超早期大量腦出血時,可加劇早期腦水腫,引起大鼠神經功能缺損計分增加。 在哺乳動物中,存在三個高度保守的Hedgehog同源基因:SonicHedgehog(Shh)、Indian Hedgehog(Ihh)和Desert Hedgehog(Dhh),它們分別編碼Shh、Ihh 和Dhh 蛋白。 Shh 蛋白是一種細胞外的配體,Shh 通路上的啟動蛋白。 細胞處于靜止狀態時,Shh蛋白與7 次跨膜受體Smo 蛋白結合,抑制Smo 活性,從而抑制其下游的反應。 當Shh 激活時,Shh 結合到12 次跨膜受體Ptch 蛋白上,解除Ptch 對 Smo的抑制作用,從而激活下游的Gli 家族蛋白,調節細胞周期進程、對抗凋亡、神經發生、細胞增殖和自我更新,參與損傷組織修復[3-4]。 近年來,Shh 通路在神經系統研究也頗多,如Jin 等[5]人發現Shh 激動劑激活Shh 通路可改善局灶性皮質缺血性損傷導致的行為缺陷。
本實驗運用神經母細胞瘤細胞(SY5Y)及小鼠大腦皮層神經元,進行AAPH 氧化應激損傷,并將神經元進行氧糖剝奪(oxygen glucose deprivation,OGD)處理,模擬體外腦卒中,觀察神經元氧化應激損傷及缺血缺氧的作用及對Hedgohog-Patched-Smoothened 信號通路的影響,探究血栓通注射液對腦卒中神經元的作用及可能機制。
美國癌癥研究所(institute of cancer research,ICR)SPF 級孕15 ~17 天小鼠,購自北京維通利華實驗動物有限公司[許可證編號:SCXK(京)2012-0001]。 SC8 細胞、cyclopamine 為陳偉導師饋贈;感受態細胞為北京天壇醫院李昊文老師饋贈。
血栓通注射液為北京天壇醫院杜萬良老師饋贈,產自廣西梧州制藥公司。 TRIzol 試劑購自美國Invitrogen 公司;胰蛋白酶、DMEM 培養基、MEM 培養基、馬血清(horse serum,HS)、胎牛血清(foetal bovine serum,FBS)購自美國 Gibco 公司;臺盼藍、DNA 酶I 購自美國Sigma 公司;CCK-8 試劑盒購自日本同仁化學研究所,SAG 購自Santa Cruz Biotechnology。
1.3.1 孕15 ~17 天小鼠胎鼠皮層神經元細胞原代培養 培養板的預處理:25 cm 細胞培養瓶或96孔細胞培養板,加入0.1g/L 多聚-L-賴氨酸包被2小時。 以三蒸水沖洗干燥后待用;孕15 ~17 天ICR 小鼠,常規麻醉消毒,剪開腹部皮膚及腹膜,取出胎鼠,放入預冷的DMEM 基礎培養基中;將其放置于解剖顯微鏡下緩慢剝離胎鼠的頭部皮膚與顱骨,暴露兩側大腦半球,用解剖鑷小心分離并取出雙側皮層,輕輕剔除血管和腦膜組織,置于含預冷DMEM 基礎培養基的6 cm 的培養皿中;將上述組織塊移入至15 mL 離心管中,用1 mL 槍輕輕吹打使皮層成碎片,1500 r/分鐘,離心5 分鐘;去上清,加5 mL 0.25%胰蛋白酶和100 μL DNA 酶 I,在37℃水浴箱中作用15 ~20 分鐘,其間振蕩2 ~3次,當消化液混濁、不含有組織塊時,加含10%FBS和10%HS 的DMEM/F12 培養基終止;將細胞懸液用70 目細胞篩過濾后,1500 r/分鐘,離心5 分鐘;棄上清,沉淀物中加入神經元接種培養基,臺盼藍染色,細胞計數板計數,以1×105/mL 的密度將細胞種植于培養板中,然后置于37℃、5% 的CO2培養箱中培養;4 小時細胞貼壁后,換神經元維持培養基,以后每周2 ~3次半量換液。
1.3.2 SY5Y 細胞培養 SY5Y 細胞置于含10%胎牛血清的DMEM/F12 培養基中,在37℃、5% CO2的恒溫培養箱中培養,每隔2 ~3 天傳代1 次。
1.3.3 SC8 細胞培養 SC8 細胞是U2OS 細胞穩定轉染的βarr2-GFP 和 Smothened-633(Smo-633)的細胞系。 SC8 細胞置于含10%胎牛血清和抗生素(含100 U/mL 青霉素和 100 mg/mL 鏈霉素)的 MEM 培養基中,在37℃、5% CO2 的恒溫培養箱中培養,每隔2 ~3 天傳代1 次。
1.4.1 原代神經元細胞存活率 原代神經元細胞以1×105/mL 的密度接種于96 孔板,每孔100 μL,培養7 天進行實驗,顯微鏡下觀察神經元之間形成神經網絡。 實驗分為對照組、AAPH 組和AAPH+血栓通注射液組。 AAPH 組AAPH 濃度為20 mmol/L;AAPH+血栓通注射液組AAPH 濃度為20 mmol/L,血栓通注射液濃度分別為 0.125、0.25、0.5、1、2 mg/mL;對照組加同等體積的正常培養基,每組3 個復孔。 置入 37℃、5%CO2培養箱培養4 小時后,每孔加10 μL CCK-8 試劑,在 37℃孵育4 小時,用酶標儀在450 nm 波長處檢測每孔的光密度,3 個復孔取平均值,計算細胞存活率。 實驗重復3 次。 細胞存活率=[(As-Ab)/(Ac-Ab)]×100%[注:As:實驗孔(含有細胞的培養基、CCK-8);Ac:對照孔(含有細胞的培養基、CCK-8);Ab:空白孔(不含細胞和CCK-8)]。 實驗分為對照組、OGD 組和血栓通注射液組,對照組神經元培養基換成含糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2孵箱中常氧培養,OGD 組神經元培養基換成無糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 血栓通注射液組,培養基換成含 0.25、0.5、1、2 mg/mL 血栓通注射液的無糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 培養20 小時后,CCK-8 檢測原代神經元存活率,檢測方法同上。
1.4.2 SY5Y 細胞存活率 收集對數期生長的SY5Y 細胞接種于 96 孔板,100 μL/孔(約 2×105/mL),置 37℃,5% CO2細胞培養箱培養過夜。 將SY5Y 細胞分為對照組、AAPH 組和AAPH+血栓通注射液組。 AAPH 組 AAPH 濃度為 20 mmol/L。AAPH+血栓通注射液組AAPH 濃度為20 mmol/L,血栓通注射液濃度分別為0.015625、0.03125、0.0625、0.125、0.25、0.5、 1、2 mg/mL。 對照組加同等體積的正常培養基,每組3 個復孔。 置入37℃、5%CO2培養箱培養6 小時后,CCK-8 檢測SY5Y 細胞存活率,檢測方法同原代神經元的檢測。
原代神經元細胞以1×105/mL 的密度接種于6孔板上,每孔2 mL,培養至第7 天進行實驗。 實驗分為對照組、SAG 組、cyclopamine 組、血栓通注射液組、SAG+cyclopamine 組和SAG+血栓通注射液組。對照組神經元培養基換成無糖Earle's 緩沖液,于37℃ 、5%CO2低氧孵箱中 1% O2培養。 SAG 組,培養基換成含 0.05、0.1、0.25 μmmol/L SAG 的無糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 cyclopamine 組,培養基換成含 2 μmmol/L cyclopamine 的無糖 Earle's 緩沖液,于 37℃、5%CO2低氧孵箱中1% O2培養。 血栓通注射液組,培養基換成含 0.5、1、2 mg/mL 血栓通注射液的無糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 SAG+cyclopamine 組,換成同時含 0.05、0.1 μmmol/LSAG 和含 2 μmmol/L cyclopamine 的無糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 SAG+血栓通注射液組,換成同時含0.05、0.1 μmmol/L SAG 和含 2 mg/mL 血栓通注射液的無糖Earle's 緩沖液,于 37℃、5% CO2低氧孵箱中1%O2培養。 Trizol 法提取 RNA,用實時定量 PCR 儀檢測神經元中Gli1 的表達。
將 SC8 細胞分為 4 組:對照組、SAG 組、cyclopamine組和血栓通注射液組。 對照組將培養基換成無糖Earle's 緩沖液,于 37℃、5%CO2低氧孵箱中 1%O2培養。 SAG 組,培養基換成含 0.25 μmmol/L SAG 的無糖 Earle's 緩沖液,于 37℃ 、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 cyclopamine 組,培養基換成含2 μmmol/L cyclopamine 的無糖 Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中 1%O2培養。 血栓通注射液組,培養基換成含2 mg/mL 血栓通注射液的無糖Earle's 緩沖液,于37℃、5%CO2低氧孵箱中1%O2培養。 20 小時后,隨機選取多個視野,激光共聚焦顯微鏡觀察SC8 細胞中βarr2-GFP 的分布情況。
所有數據采用SPSS17.0 軟件進行分析處理。本研究計量資料經檢驗均符合正態分布且方差齊,以均數±標準差()表示,數據采用t檢驗,組間比較用配對t檢驗,P<0.05 表示差異有統計學意義。
AAPH 作為一個氧自由基誘發劑,可誘導氧化應激反應。 當20 mmol/L AAPH 作用SY5Y 細胞6小時后,與對照組相比,SY5Y 細胞存活率下降,差異有統計學意義(P<0.01)。 血栓通注射液作用后,加重了AAPH 造成的SY5Y 細胞的損傷,其中血栓通注射液濃度為 0.015625、0.03125、0.0625、0.125 mg/mL 時,細胞存活率與AAPH 組比較無統計學意義(P>0.05)。 當血栓通注射液濃度為0.25、0.5、1、2 mg/mL 時,細胞存活率下降,與 AAPH 組比較有統計學差異(P<0.01)。 見表1。
表1 不同濃度血栓通注射液對AAPH 造成SY5Y 細胞損傷的影響()

表1 不同濃度血栓通注射液對AAPH 造成SY5Y 細胞損傷的影響()
注: 與對照組比較,aP<0.01;與AAPH 組比較,bP<0.01。
組別 n 細胞存活率(%)3 1.00±0.03 AAPH 組 3 0.52±0.04a AAPH+血栓通注射液(0.015625 mg/mL)組 3 0.50±0.07 AAPH+血栓通注射液(0.03125 mg/mL)組 3 0.46±0.05 AAPH+血栓通注射液(0.0625 mg/mL)組 3 0.48±0.04 AAPH+血栓通注射液(0.125 mg/mL)組 3 0.43±0.08 AAPH+血栓通注射液(0.25 mg/mL)組 3 0.32±0.03b AAPH+血栓通注射液(0.5 mg/mL)組 3 0.29±0.03b AAPH+血栓通注射液(1 mg/mL)組 3 0.22±0.06b AAPH+血栓通注射液(2 mg/mL)組 3 0.14±0.02對照組b
當20 mmol/L AAPH 作用神經元4 小時后,與正常對照組相比,神經元存活率下降,差異有統計學意義(P<0.01)。 血栓通注射液作用后,加重AAPH 造成神經元損傷,其中血栓通注射液濃度為0.125、0.25、0.5 mg/mL 時,神經元存活率與 AAPH組比較無統計學意義(P>0.05)。 當血栓通注射液濃度為1、2 mg/mL 時,神經元存活率下降至(0.29±0.06)、(0.16±0.06),與 AAPH 組比較有統計學差異(P<0.01)。 見表 2。
表2 不同濃度血栓通注射液對AAPH造成神經元損傷的影響()

表2 不同濃度血栓通注射液對AAPH造成神經元損傷的影響()
注: 與對照組比較,aP<0.01;與AAPH 組比較,bP<0.05,cP<0.01。
組別 n 細胞存活率(%)3 1.00±0.02 AAPH 組 3 0.40±0.07a AAPH+血栓通注射液(0.125 mg/mL)組 3 0.43±0.08 AAPH+血栓通注射液(0.25 mg/mL)組 3 0.45±0.05 AAPH+血栓通注射液(0.5 mg/mL)組 3 0.41±0.04 AAPH+血栓通注射液(1 mg/mL)組 3 0.29±0.06b AAPH+血栓通注射液(2 mg/mL)組 3 0.16±0.06對照組c
神經元的存活率降至(0.76±0.03), 較對照組明顯下降(P<0.01)。 血栓通注射液作用后,加重了神經元的損傷,當血栓通注射液濃度為0.5、1、2 mg/mL時,神經元的存活率分別為(0.67±0.02)、(0.57±0.03)、(0.53±0.04),與 OGD 組相比均有統計學差異(P<0.01)。 PSN 可加重低氧條件下神經元的損傷,且呈劑量依賴性,隨著血栓通注射液濃度的增加,神經元的存活率降低更加明顯。 見表3。
表3 不同濃度下血栓通注射液對低氧條件下神經元存活率的影響()

表3 不同濃度下血栓通注射液對低氧條件下神經元存活率的影響()
注: 與對照組比較,aP<0.01;與OGD 組比較,bP<0.01。
組別 n 細胞存活率(%)3 1.00±0.02 OGD 組 3 0.76±0.03a OGD+血栓通注射液(0.25 mg/mL)組 3 0.72±0.03 OGD+血栓通注射液(0.5 mg/mL)組 3 0.67±0.02b OGD+血栓通注射液(1 mg/mL)組 3 0.57±0.03b OGD+血栓通注射液(2 mg/mL)組 3 0.53±0.04對照組b
在低氧環境中,0.25 μmmol/L SAG 可使 Gli1表達明顯升高(P<0.01),與對照組比較增加(3.56±0.65 ) 倍。 Hedgehog 通 路 的 抑 制 劑cyclopamine可使Gli1 表達量下降,當cyclopamine 濃度為 2 μmmol/L 時,Gli1 表達量下降至(0.14±0.03)倍。 同樣發現 0.5、1、2 mg/mL 血栓通注射液也可抑制 Gli1 的表達,Gli1 表達量分別下降至(0.30±0.08)、(0.16±0.04)、(0.15±0.03)倍,與cyclopamine 作用一致。 見表 4。
表4 不同濃度血栓通注射液對低氧條件下神經元Gli1 的表達的影響()

表4 不同濃度血栓通注射液對低氧條件下神經元Gli1 的表達的影響()
注: 與對照組比較,aP<0.01。
3 1.00±0.04 SAG 組 3 3.56±0.65a Cyclopamine 組 3 0.14±0.03a血栓通注射液(0.5 mg/mL)組 3 0.30±0.08a血栓通注射液(1 mg/mL)組 3 0.16±0.04a血栓通注射液(2 mg/mL)組 3 0.15±0.03水平對照組組別 n Gli1 a
0.05 和 0.1 μmmol/L SAG 均可增加 Gli1 的表達,分別為(3.09±0.31)倍和(5.75±0.68)倍(P均<0.01),0.1 μmmol/L SAG 組 Gli1 增加更明顯。 2 mg/mL 血 栓 通 注 射 液 和 2 μ mmol/L cyclopamine 均可降低Gli1 的表達,分別降至(0.19±0.06)倍和(0.08±0.01)倍(P均<0.01),結果與前面實驗結果一致。 然而,當SAG 和血栓通注射液或cyclopamine 同時作用神經元時,發現血栓通注射液可抑制SAG 誘導的的Gli1 表達增加,血栓通注射液使0.1 μmmol/L SAG 組 Gli1 增加(5.75±0.68)倍降至增加(2.56±0.35)倍,使 0.05 μmmol/L SAG 組Gli1 增加(3.09±0.31)倍降至增加(1.7±0.21)倍(P均<0.01),作用與 cyclopamine 相似。 見表 5。
表5 血栓通注射液對低氧條件下SAG 導致的Gli1 表達升高的影響()

表5 血栓通注射液對低氧條件下SAG 導致的Gli1 表達升高的影響()
注: 與對照組比較,a P<0.01;與 SAG(0.1 μmmol/L)組比較,bP<0.01;與 SAG(0.05 μmmol/L)組比較,cP<0.01。
3 1.00±0.04 Cyclopamine 組 3 0.08±0.01a血栓通注射液組 3 0.19±0.06a SAG(0.1 μmmol/L)組 3 5.75±0.68a SAG(0.1 μmmol/L)組+Cyclopamine 組 3 2.23±0.38b SAG(0.1 μmmol/L)組+血栓通注射液組 3 2.56±0.35b SAG(0.05 μmmol/L)組 3 3.09±0.31a SAG(0.05 μmmol/L)組+Cyclopamine 組 3 1.95±0.23c SAG(0.05 μmmol/L)組+血栓通注射液組 3 1.71±0.21水平對照組組別 n Gli1 c
根據激光共聚焦顯微鏡觀察SC8 細胞中βarr2-GFP 的分布情況,判斷血栓通注射液對Smothened(Smo)的作用。 對照組βarr2-GFP 呈點狀聚集分布在細胞質(圖 1A)。 當 2 μmmol/L cyclopamine 作用SC8 細胞時,βarr2-GFP 的分布發生變化,在細胞質呈現均勻分布(圖1B)。 2 mg/mL 血栓通注射液處理SC8 細胞,βarr2-GFP 仍呈點狀聚集分布在細胞質(圖1C)。

圖1 激光共聚焦顯微鏡觀察SC8細胞中βarr2-GFP 的分布情況
腦卒中是由腦血管病變引起的腦部疾病的總稱,故又稱為“腦血管病”。 腦缺血再灌注損傷是腦卒中很重要的病理生理過程,再灌注損傷主要是通過引起自由基過度產生及其“瀑布式”連鎖反應等一系列氧化應激變化,導致細胞內大分子如核酸、脂質、蛋白質等的氧化損傷,從而引起神經細胞死亡[6-7]。
AAPH 作為一個氧自由基引發劑,可以誘導細胞內氧化損傷,產生各種病理變化,在氧化應激疾病模型中廣泛應用[8-9]。 目前研究腦卒中的方法主要有體內大腦中動脈阻塞(middle cerebral artery occlusion, MCAO)和體外 OGD[10-11]。 如 MO ZT[11]以PC12 細胞OGD 為模型,模擬腦卒中,并探索石菖蒲提取物β-細辛腦對細胞自噬的作用等。 本研究以AAPH 作用造成氧化應激損傷及OGD 處理模擬體外缺血性腦卒中狀態。 AAPH 可造成SY5Y 細胞及神經元損傷;神經元經OGD 處理20 小時后,神經元的存活率較正常對照組明顯下降(P<0.01)。 這與缺血性腦卒中后神經細胞受損結果一致。
課題組還發現,血栓通注射液可加重AAPH造成的SY5Y 細胞及神經元細胞損傷;且血栓通注射液降低低氧條件下神經元的存活率,當血栓通注射液 濃度為 0.5、1、 2 mg/mL 時,與 OGD 組相比各組均(P<0.01),且呈劑量依賴性。 血栓通注射液是中藥血栓通的主要成分,血栓通的主要成分為血栓通注射液,包含人參皂苷Rg1、人參皂苷Rb1、三七皂苷 R1 等。 在 MCAO 造成的大鼠腦梗死模型中,血栓通注射液能明顯改善腦功能,改善腦血管滲漏,減少腦組織內炎性細胞浸潤,對大鼠腦微血管內皮細胞進行OGD 處理,發現血栓通注射液可降低TNF-α、IL-8 及RIG-I 受體通路調控的下游細胞因子水平,血栓通注射液可能是通過RIG-I 信號通路發揮腦缺血時抗炎作用[12]。 HU SN 等[13]發現三七皂苷可通過激活PI3K/Akt/Nrf2通路,從而保護腦微血管內皮細胞因缺血再灌注誘導的血腦屏障破壞。 但是,部分學者對血栓通注射液的細胞保護作用持有相反意見。 在探索血栓通注射液對腦出血大鼠腦水腫超早期影響的研究[2]中發現,較腦出血模型組,血栓通注射液可加重大鼠神經缺損癥狀,增加腦含水量及鈉離子含量,說明血栓通注射液治療超早期腦出血,可加劇腦水腫,加重大鼠神經功能缺損癥狀。 LI SY等[14]研究發現,人參皂苷Rd 本身對BASMCs 細胞無毒性作用,但可加重H2O2造成BASMCs 細胞存活率的下降,并且呈現濃度依賴性。 H2O2作用BASMCs 細胞后,早期凋亡率為(20.9±3.8)%,10 μmmol/L人參皂苷 Rd 預處理 30 分鐘,細胞凋亡率下降到(31.5±3.6)%,人參皂苷可加重H2O2造成的促凋亡蛋白Bax 的增加,抗凋亡蛋白Bcl-2的降低和Bcl-2/Bax 比率的降低,增加細胞色素C的釋放和caspase-9/caspase-3 激活,并降低線粒體膜電位的穩定性。
近年來,Shh 通路在缺血性腦病的研究中越來越多。 Shh 通路通過上調緊密連接(TJ)蛋白促進血腦屏障完整性,對卒中后血腦屏障破壞產生保護作用[15]。 ZHANG J 等[16]發現 SD 大鼠經過 MCAO后,立即給予側腦室注射 Shh 通路抑制劑cyclopamine,24 小時后與對照組比較,cyclopamine組Gli1、Ptch1 與SOD1 表達下降,梗死面積增加,腦水腫明顯,神經行為缺損加重。 這些數據表明,抑制Shh 通路后,加重腦卒中的神經損傷。 在本實驗中,發現血栓通注射液可以抑制神經元OGD 后Gli1 的表達。 SAG 是 Shh 通路 Smo 的激活劑,可使 Gli1 表達升高,cyclopamine 是Smo 的抑制劑,可使Gli1 表達下降,因此選用SAG 和cyclopamine 作為本實驗的陽性對照藥物。 神經元經過OGD 處理后,0.25 μmmol/L SAG 可使 Gli1 表達明顯升高(P<0.01),2 μmmol/L cyclopamine 可使 Gli1 表達量下降,0.5、1、2 mg/mL血栓通注射液也可抑制Gli1 的表達,與cyclopamine作用一致。 并且,經過進一步研究,課題組發現血栓通注射液可抑制 SAG 導致的 Gli1 的升高。 當SAG 和血栓通注射液或cyclopamine同時作用神經元時,發現血栓通注射液可抑制SAG 誘導的的Gli1 表達增加,作用與cyclopamine 相似。
Smo 受體激動劑具有保護神經和促進缺血性腦損傷后再生的作用[17]。 Smo 激活后對G 蛋白偶聯受體(G protein coupled receptor,GPCR)信號通路有重要作用,它可以磷酸化GPCR,招募βarr2 蛋白聚集,發揮內吞作用[18]。 在正常情況下,βarr2 均勻分布于細胞質中,當 Smo 或者 Smo-633 過表達時,βarr2 在細胞質中發生點狀聚集,經過cyclopamine處理后,βarr2 又重新均勻分布于細胞質中[18]。 課題組發現,SC8 細胞中由于Smo-633 過表達,βarr2-GFP 呈點狀聚集分布在細胞質,給予cyclopamine 處理,發現βarr2-GFP 均勻分布于細胞質中,與之前研究相似。 為了驗證血栓通注射液是否通過Smo 抑制Gli1 的降低,故用血栓通注射液作用SC8 細胞,發現血栓通注射液組,βarr2-GFP 呈點狀聚集分布在細胞質,說明血栓通注射液不能抑制Smo,可能抑制Smo 下游信號分子。
綜上所述,血栓通注射液加重體外低氧后神經元的損傷,可能通過抑制Hedgehog 通路發揮作用,血栓通注射液抑制低氧條件SAG 導致的Gli1 表達升高,而不影響Smo,說明其可能通過抑制Smo 下游因子來抑制Gli 的表達。 因此,中藥血栓通注射液應用于腦血管病的治療時要“辨證論治”,依據中醫理論和中藥藥理學辨證選藥,科學、規范、系統地治療腦血管病。 本實驗亦有不足之處,體外低氧狀態模擬腦卒中有一定的局限性,需進一步的驗證。