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AA-CYP表氧化酶代謝產物對胰島β細胞增殖和細胞周期的影響

2023-01-14 03:21:34玉斯日古楞白兆星吳貞思陳彥汝么宏強
中國獸醫雜志 2022年11期
關鍵詞:糖尿病檢測

玉斯日古楞,白兆星,吳貞思,陳彥汝,么宏強

(1.內蒙古農業大學獸醫學院,內蒙古 呼和浩特 010011 ; 2. 農業農村部動物疾病臨床診療技術重點實驗室,內蒙古 呼和浩特 010011)

花生四烯酸(Arachidonic acid,AA)是一種人體必需脂肪酸,也是一種多不飽和脂肪酸,是在生物體內分布最廣、含量最豐富的一種脂肪酸。在心血管系統中,細胞色素P450(Cytochrome P450,CYP)是代謝AA的主要酶類。AA經過細胞色素P450表氧化酶途徑生成環氧二十碳三烯酸(Epoxyeicosatrienoic acids,EETs)和20-羥基二十碳四烯酸(20-hydroeicosatetraenoic acid,20-HETE),這些代謝產物具有較強的生物活性[1-4]。

隨著人們生活水平的提高,糖尿病的發病率越來越高,糖尿病所導致的心腦血管系統和腎臟等并發癥也明顯增多。糖尿病的主要病理生理問題是胰島素抵抗和胰島β細胞損傷[5]。研究發現,EETs與糖尿病的發生有密切關系,在防治糖尿病過程中具有重要作用[6]。20-HETE在糖尿病、心血管疾病、腫瘤等疾病的發生發展進程中也具有非常重要的作用[6-8]。有研究表明,11,12-EET和14,15-EET有很強的促進有絲分裂作用,它們可以有效促進腎臟內皮細胞的有絲分裂[9-10]。那么,EETs和20-HETE是否具有促進胰島β細胞增殖的作用?目前尚無定論。因此,本試驗將探討EETs和20-HETE對胰島β細胞增殖和細胞周期的影響。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 細胞來源 胰島β細胞:MIN6小鼠胰島β細胞(hz10123),購自上海滬震生物科技有限公司。

1.1.2 主要試劑 PBS(10010023)、青霉素-鏈霉素(15140122)、DMEM培養基(11995065)、胰酶-EDTA溶液(25200056)和胎牛血清(10270106),均購自Gibco公司;20-HETE、11,12-EET(ab141537)、14,15-EET(ab141538)、LY 294002和PI3-kinase抑制劑(ab120243),均購自Abcam公司;20-Hydroxy(H3023),購自Sigma公司;HRP標記羊抗小鼠二抗(BA1051),購自武漢博士德生物工程有限公司。

1.1.3 主要儀器 流式細胞分析儀,購自Beckman公司;微量移液器,購自Eppendorf公司;二氧化碳(CO2)培養箱(3111)和離心機(MICROCL 17),均購自Thermo公司;生物安全柜(BS-1300IIA2),購自蘇州安泰空氣技術有限公司;倒置熒光顯微鏡(CKX41),購自OLYMPUS公司。

1.2 試驗方法

1.2.1 細胞培養及傳代 MIN6細胞采用胰酶消化、PBS清洗后,加入培養液制成細胞懸液。取適量細胞懸液進行臺盼藍染色,在倒置顯微鏡下計數活細胞并計算細胞密度。取2×106個細胞,加10 mL新鮮DMEM培養基至10 cm培養皿中,于37 ℃、5% CO2培養箱中培養。待細胞密度達到90%以上時,進行試驗,其余細胞凍存備用。

1.2.2 CCK-8試驗檢測細胞增殖 將細胞接種到96孔板上,每孔的細胞數量調整到約2×104個。培養12 h后將細胞分組處理(表1),即分別加入不同濃度EETs或不同濃度比的20-HETE/EETs(1∶10和1∶20),每組3個重復。在不同時間點(培養12、24 h和48 h)收取細胞樣品,采用CCK-8方法檢測細胞的增殖情況,測定OD450 nm值,以明確EETs和20-HETE/EETs對β細胞增殖的影響是否具有時間和濃度依賴性。

表1 細胞分組和處理Table 1 Cell grouping and treatment

1.2.3 流式細胞術檢測細胞周期 將細胞接種到6孔板上,每孔的細胞數量約3×105個,培養12 h后分組處理細胞(表2)。繼續培養12 h后,胰蛋白酶消化、收集細胞,PBS清洗2次,使用預冷的75%酒精4 ℃固定過夜。離心去上清,PBS清洗、重懸,加入終濃度為50 μg/mL的RNase,37 ℃消化30 min后,加入碘化丙啶(PI)染色液避光放置20 min,最后上流式細胞儀檢測細胞周期。用CellQuest軟件、ModFit軟件分析試驗結果,統計分析各組細胞周期的分布。

表2 細胞分組和處理Table 2 Cell grouping and treatment

1.2.4 Western blot檢測細胞增殖相關信號轉導通路 為探索EETs和20-HETE/EETs對胰島β細胞增殖影響的信號轉導機制,采用信號轉導通路抑制劑干預處理β細胞增殖(表3),即給予β細胞EETs和20-HETE/EETs刺激的同時,給予PI3K/AKT信號轉導通路的抑制劑(LY294002,終濃度為15 mmol/L),孵育24 h后,收集細胞,提取蛋白,BCA法測定蛋白濃度。蛋白變性10 min,按配方配制SDS-PAGE膠,電泳,轉PVDF模,室溫封閉2 h,加一抗4 ℃孵育過夜;次日加二抗于搖床上室溫孵育2 h。加ECL化學發光混合液,曝光顯影,使用Image J軟件分析蛋白質條帶的灰度值,統計分析蛋白表達量。

表3 細胞分組和處理Table 3 Cell grouping and treatment

1.2.5 數據統計處理 應用SPSS 19.0軟件進行統計學分析,每個試驗重復3次,數據以“平均值±標準差”方式表示,單因素多組之間比較采用One-way ANOVA,之后組間比較采用t檢驗,以P<0.01表示差異極顯著,P<0.05表示差異顯著。

2 結果

2.1 對細胞增殖的影響 胰島β細胞經過傳代、計數、分組,用EETs和20-HETE/EETs分別處理,12、24 h和48 h時進行CCK-8檢測。結果如圖1所示,在12、24 h和48 h時,與空白組(B組)相比較,溶劑組(C組)對胰島β細胞增殖的影響均不顯著(P>0.05),說明溶劑對胰島β細胞增殖無影響。與空白組(B組)相比較,在12 h和24 h時,濃度為100 nmol/L的14,15-EET(E組)對胰島β細胞增殖具有極顯著促進作用(P<0.01),其中12 h時差異最大(圖1A);在48 h時,各組間沒有明顯差異性(P>0.05)(圖1C)。

圖1 胰島β細胞的增殖情況Fig.1 Cell proliferation of pancreatic β cellsA:12 h; B:24 h; C:48 h與空白組(B組)比較,*:P<0.05,**:P<0.01;下同Compared with the blank group(group B),*:P<0.05,**:P<0.01. The same as below

2.2 對細胞周期的影響 流式細胞術檢測結果如圖2所示,與空白組(A組)比較,濃度為100 nmol/L的11,12-EET處理組(C組)胰島β細胞中G0/G1期細胞由(51.27±1.48)%減少至(42.57±1.06)%;而S期細胞由(28.81±1.89)%升高至(33.17±1.42)%;G2/M期細胞由(19.92±0.64)%升高至(24.26±0.83)%,兩組間均差異顯著(P<0.05);濃度為100 nmol/L的14,15-EET處理組(D組)胰島β細胞中G0/G1期細胞由(51.27±1.48)%減少至(44.92±1.85)%,兩組間差異顯著(P<0.05);S期細胞由(28.81±1.89)%升高至(29.01±1.87)%,但差異不顯著(P>0.05);G2/M期細胞由(19.92±0.64)%升高至(26.07±1.03)%,兩組間差異顯著(P<0.05)。

2.3 影響細胞增殖的機制 細胞使用不同濃度EETs、20-HETE/EETs和抑制劑LY294002處理后,采集細胞、提取蛋白,采用Western blot檢測AKT磷酸化水平和PI3K活化狀況。結果如圖3所示,與空白組(A組)相比較,EETs處理組(C組和D組)的PI3K表達水平顯著上升(P<0.05),當20-HETE/EETs 聯合處理(E組和F組)時,PI3K表達水平顯著降低(P<0.05);與未加LY294002組(C組和D組)相比較,LY294002處理組(H組和I組)極顯著抑制了PI3K表達水平(P<0.01)。PI3K蛋白表達量在11,12-EET組(C組)和14,15-EET組(D組)之間無明顯差異(P>0.05)。

3 討論

糖尿病的發病率逐年增多,尤其是2型糖尿病的患病率逐漸提高,成為繼腫瘤、心腦血管疾病之后的又一個嚴重危害健康的慢性非傳染性疾病[11],其主要病理生理特點是胰島β細胞功能衰竭[11-12]。因此,β細胞損傷和功能障礙是糖尿病發生發展的主要原因。也就是說,避免β細胞損失和功能失調是改善糖尿病發展的有效方法[13-14]。研究證明,EETs不僅可以促進大鼠胰島素的釋放,還可以促進腎臟內皮細胞增殖和再生[9,15-16]。此外,研究還發現,11,12-EET和14,15-EET有很強的促進有絲分裂作用,可有效促進腎臟內皮細胞的有絲分裂[9-10]。20-HETE能夠調控體內不同的生理作用,在糖尿病、心血管疾病和腫瘤等疾病的進程中也具有重要作用[5]。研究發現,在糖尿病腎病大鼠的腎小球中,CYP4A的表達和20-HETE的產生會明顯減少,并且糖尿病大鼠的腎臟受損時,其20-HETE含量會明顯減少[6]。可見,EETs和20-HETE均與糖尿病的發生有密切聯系,但對它們的具體作用及其機制尚未深入研究。EETs和20-HETE是否可以促進胰島β細胞的增殖,是否可以保護胰島β細胞,使其免受損傷或功能失調,從而改善糖尿病的發生發展?目前尚未定論。

圖2 EETs和20-HETE對胰島β細胞細胞周期的影響Fig.2 Effect of EETs and 20-HETE on the cell cycle of pancreatic β cellsA:空白組(A組)流式細胞檢測細胞DNA直方圖; B:11,12-EET組(C組)流式細胞檢測細胞DNA直方圖; C:EETs和20-HETE作用后胰島β細胞細胞周期的變化A:DNA histogram in control group (group A) detected by flow cytometry; B:DNA histogram in 11,12-EET group (group C) detected by flow cytometry; C:Effects of EETs and 20-HETE on cell cycle of pancreatic β cells

圖3 EETs、20-HETE/EETs和LY294002處理后PI3K/AKT蛋白的表達水平Fig.3 Expression levels of PI3K/AKT protein after EETs,20-HETE/EETs and LY294002 treatmentA:Western blot 結果; B:PI3K蛋白表達水平的比較[與空白組(A組)比較,*:P<0.05; 與未加LY294002組(C組和D組)比較,#:P<0.05,##: P<0.01]A:Western blot results; B:Comparison of PI3K protein expression levels[Compared with the blank group (group A),*:P<0.05; Compared with the non-adding LY294002 groups (group C and D),#:P<0.05,##:P<0.01]

因此,本試驗通過CCK-8方法檢測EETs和20-HETE對胰島β細胞增殖的影響。試驗結果顯示,在干預12 h和24 h時,濃度為100 nmol/L的14,15-EET對胰島β細胞的增殖具有極顯著促進作用,在12 h時其促進作用最顯著。但是,以不同比例聯合使用EETs和20-HETE時,對胰島β細胞的增殖無顯著影響。此結果表明,在一定范圍內,14,15-EET的作用具有時間和濃度依賴性,這與Xu等[6]的研究結果一致。綜上所述,使用14,15-EET干預胰島β細胞12 h時,細胞增殖可以達到高峰,且其促增殖的最佳濃度為100 nmol/L。但聯合使用EETs和20-HETE時,14,15-EET未能顯示出上述促增殖的作用。

為進一步探討EETs和20-HETE影響胰島β細胞增殖的可能機制,本試驗還應用流式細胞術和Western blot方法分別觀察細胞周期的變化和PI3K/AKT信號轉導通路的激活情況。細胞周期的G1期為DNA合成前期,此期為過渡至S期做準備;S期為DNA合成期,可反映細胞的分裂活力,增殖旺盛的細胞處于S期的比例較高;G2期為DNA合成后期,M期為有絲分裂期,(S+G2M)%為增殖指數,代表了細胞中增殖細胞的數量,在一定程度上可反映細胞的增殖狀態。本試驗的流式細胞術結果顯示,11,12-EET和14,15-EET處理組(C組和D組)的G0/G1期細胞減少,S期與G2/M期細胞增多,說明EETs可能促使靜止態的G1期細胞活躍,并向S期轉變,使DNA合成量增加,從而促進細胞的增殖。此試驗結果進一步驗證EETs能夠使胰島β細胞處于增殖狀態。Western blot試驗結果顯示,與空白組(A組)相比較,EETs處理組(C組和D組)的PI3K表達水平顯著上升,但20-HETE和EETs 聯合使用時(E組和F組),PI3K表達水平反而顯著降低;與未加LY294002組(C組和D組)相比較,當使用PI3K/AKT信號轉導通路抑制劑(LY294002)干預11,12-EET和14,15-EET處理組細胞后,顯著抑制了PI3K活化狀況。此結果提示,EETs能夠促進胰島β細胞的增殖,其分子機制可能是EETs激活了PI3K/AKT信號轉導通路,與既往研究結論[5]相一致;同時,本試驗結果也進一步說明20-HETE和EETs的聯合使用對胰島β細胞的增殖沒有促進作用。

綜上所述,本試驗證實EETs可促進小鼠胰島β細胞的增殖(14,15-EET的作用更加顯著),其機制可能是EETs激活了PI3K/AKT信號轉導通路,使胰島β細胞處于增殖狀態,且其促進作用具有時間和濃度依賴性。但是,20-HETE和EETs的聯合使用,未顯示出促胰島β細胞增殖的作用,其機制有待于進一步深入研究。

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