羧甲基纖維素誘導提高羅倫隱球酵母對采后砂糖橘抗青霉、綠霉病的生防效果

馬電通，呂鶴飛，常雪苗，黃二賓，杜嶸宇，田登娟，王 芳,2，鄧 佳,3,*

（1.西南林業大學林學院，云南 昆明 650224；2.西南林業大學 西南地區生物多樣性保育國家林業和草原局重點實驗室，云南 昆明 650224；3.西南林業大學 西南山地森林資源保育與利用教育部重點實驗室，云南 昆明 650224）

砂糖橘（Citrus reticulatacv. Shatangju）又名十月橘、冰糖橘等，原產于廣東四會，是蕓香科柑橘屬植物，砂糖橘果實顏色橙黃、皮薄、易剝離，其果肉具有爽脆、汁多、清甜等特點[1]，砂糖橘果實含有多種對人體有益的營養物質，如蛋白質、VC、可溶性固形物、礦質元素（Ca、Mg、Na、K）和微量元素（Fe、Mn、Cu、Zn）等[2]。但柑橘屬植物果實在采后運輸貯藏過程中容易發生青霉、綠霉病害[3]，其中以意大利青霉（Penicillium italicum）、擴展青霉（Penicillium expansum）和指狀青霉（Penicillium digitatum）引起的柑橘青霉、綠霉病是柑橘類果實貯藏運輸過程中為最嚴重、發生率最高的病害[4]。目前，柑橘類果實采后的貯藏保鮮方式主要為化學殺菌劑[5-6]，但化學殺菌劑具有毒性、抗藥性、危害人類健康和污染生存環境等缺點[7]，因此需尋找新的防治方法來代替化學殺菌劑的使用，從而達到安全、高效和大量應用的防治目的。拮抗酵母作為生物防治手段中的一種，因具有不產生毒素、安全系數高、可與化學物質配合使用等多種優點[8-9]，被應用于采后果品貯藏病害的防治。但拮抗酵母單獨作用于果實，其拮抗效力不及化學殺菌劑[10]，研究表明，通過添加糖類保護劑可以有效提高酵母的存活率、耐受性和抗逆性，從而保證其生防效力，如Zhao Lina等[11]研究發現，使用0.5%海藻糖誘導培養Pichia caribbica酵母處理采后草莓，可顯著降低草莓接種灰霉病的發病率，增強草莓多酚氧化酶（polyphenoloxidase，PPO）、過氧化物酶（peroxidase，POD）和β-1,3-葡聚糖酶（β-1,3-glucanase，GLU）等防御酶的活力，從而表現出較好的生防效力；閆巖等[3]研究發現，1.2%幾丁質誘導漢遜德巴利酵母（Debaryomyces hansenii）（107CFU/mL）處理砂糖橘果實，能夠降低對砂糖橘果實接種指狀青霉（P. dititatum）的發病率和腐爛指數，還提高了果實體內GLU活力。

羧甲基纖維素（carboxymethyl cellulose，CMC）是纖維素的羧甲基化衍生物，是一種多糖類物質，呈白色或淡黃色纖維狀粉末狀，無臭、無味，在食品中具有廣泛的用途，常作為食品的添加劑和果蔬的保鮮劑[12-13]。在果實應用方面，張方艷等[14]研究發現，獼猴桃果實經不同濃度CMC浸泡處理后，均能降低果實的腐敗率和質量損失率，其還能使獼猴桃果實營養質量保持在較高水平；張晶琳等[15]研究發現，將CMC作為涂膜材料用于柑橘果實，能保持柑橘果實營養質量、減少果實表面氣孔數量及開孔率，降低果實營養消耗及其質量損失率。但CMC能否用作生防酵母菌的保護劑，其對酵母生防效力是否有誘導增效作用還不清楚。因此，本實驗采用CMC作為糖保護劑誘導培養羅倫隱球酵母（Cryptococcus laurentii），研究CMC誘導酵母對采后砂糖橘果實青霉、綠霉病害的生防效果，并探究其對果實的誘導抗病生理，以期為提高酵母對果品采后病害的生防效力提供新思路和方法。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

砂糖橘（Citrus reticulatacv. Shatangju）購于昆明市白龍村菜市場。從中挑選出飽滿圓潤、無機械傷、大小均一、無病蟲害、成熟度一致的果實；用蒸餾水洗凈并用體積分數75%乙醇溶液擦拭后放置于塑料筐，于室溫下保存備用。

C. laurentii（ATCC18803）購于廣東微生物研究所。用YM液體培養基進行培養，使用濃度為1×107CFU/mL（血球計數板計數），備用。P. expansum（引起青霉病）和P. digitatum（引起綠霉病）為前期分離自采后葡萄柚發病果實，保存于實驗室，使用馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養基（potato dextrose agar，PDA）于28 ℃培養，使用時，將病原菌孢子濃度調至1×105CFU/mL（血球計數板計數），備用。

CMC 上海騰準生物科技有限公司；蛋白胨、麥芽浸粉 北京奧博星生物技術有限責任公司；葡萄糖天津市科密歐化學試劑有限公司；酵母粉 美國賽默飛世爾科技公司；瓊脂 上海致化化學科技有限公司；3,5-二硝基水楊酸 成都市科龍化工試劑廠；苯酚西隴化工股份有限公司；酚酞、亞硫酸鈉、草酸、氫氧化鈉、甲醇、酒石酸鉀鈉 天津市風船化學試劑科技有限公司；鹽酸 云南楊林汕滇藥業有限公司；2,6-二氯酚靛酚鈉 北京博奧拓達科技有限公司。

1.2 儀器與設備

CP214電子天平 蘇州賽恩斯儀器有限公司；SW-CJ-2FD超凈工作臺 蘇州安泰空氣技術有限公司；MIKRO 220R冷凍型臺式高速離心機 廣東市華粵儀器有限公司；HH-B11-BS-II恒溫培養箱 上海躍進醫療器械有限公司；TS-2102C恒溫搖床 上海天呈實驗儀器制造有限公司；702型超低溫冰箱 美國賽默飛世爾科技公司；70型離子交換純水器 上海南華醫療器械；LDZX-50KBS立式壓力蒸汽滅菌器 上海申安醫療器械廠；UV6100紫外-可見分光亮度計 上海美譜達儀器有限公司；AF103商用制冰機 美國斯科茨曼公司；YS100型電子顯微鏡 日本Nikon公司；Brix手持袖珍數顯折射儀 日本Atago公司。

1.3 方法

1.3.1 培養基配制

YM液體培養基：蛋白胨5.0 g、葡萄糖10.0 g、酵母粉3.0 g、麥芽浸粉3.0 g溶于1 L去離子水，pH值自然；121 ℃滅菌21 min。自然冷卻后，備用。

PDA培養基：土豆200.0 g、瓊脂20.0 g、葡萄糖20.0 g溶于1 L去離子水，pH值自然；121 ℃滅菌21 min，趁熱倒于平皿中，自然冷卻后，備用。

1.3.2 CMC誘導培養時間對C. laurentii抑制砂糖橘青霉、綠霉病效果分析

參照王蕓[16]的實驗方法略作修改，將處理好的砂糖橘置于超凈工作臺，并分為兩組。第一組：在果實赤道部位用已消毒的打孔釘等距均勻地打3 個孔（直徑4 mm、深約5 mm），每個孔打入20 μL誘導酵母液，分別為添加0.5%（質量分數，下同）CMC誘導培養24、48 h和72 h的C. laurentii菌懸液（0.5% CMC-C. laurentii，CMC誘導濃度選擇參照本課題組前期實驗結果[17]及未發表研究結果），2 h后，分別向每個孔中，再打入20 μLP. expansum孢子懸浮液；第二組：果實回接處理同上，再接種20 μLP. digitatum孢子懸浮液。不同誘導時間的誘導酵母液處理重復3 次，整個實驗重復2 次，共36 個果實。果實接種完畢后，置于塑料筐室溫條件（25 ℃、相對濕度80%）保存，每天觀察果實病斑直徑和發病率，至果實病斑相接即停止觀察。采用十字交叉法測量果實病斑直徑/cm。發病率按下式計算。

1.3.3 CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實抗青霉、綠霉病效果分析

參照1.3.2節的操作方法略作修改，把已處理好的砂糖橘果實分別打孔，每個孔分別打入20 μL以下溶液，對照組（CK）：無菌水；處理組1（C. laurentii）：未添加CMC，培養72 h的C. laurentii菌懸液；處理組2（0.5% CMC-C. laurentii）：添加0.5% CMC，培養72 h的C. laurentii菌懸液。2 h后，把上述3 種處理果實分別均勻分為兩組：第一組分別再向每個孔中回接20 μLP. expansum孢子懸浮液；第二組回接20 μLP. digitatum孢子懸浮液。每個處理分別用3 個果實，每個果實打3 個孔，整個實驗重復2 次，共24 個果實。果實接種完畢后，置于塑料筐室溫條件（25 ℃、相對濕度80%）保存，每天觀察果實發病率和病斑直徑，至CK組全部發病即停止觀察。發病率計算和病斑直徑測量同1.3.2節。

1.3.4 砂糖橘果實抗病酶活力和抗性物質含量的測定

參照1.3.2節的操作方法略作修改，把已消毒處理的果實分為3 組，分別于下列溶液中浸泡3 min；CK組：無菌水；處理組1（C. laurentii）：未添加CMC培養72 h的C. laurentii菌懸液；處理組2（0.5% CMC-C. laurentii）：0.5% CMC培養72 h的C. laurentii菌懸液。每組處理5 個果實，重復3 次，共45 個果實。在處理后每隔一天對果皮、果肉分別取樣，置于-80 ℃冰箱保存待測，果皮用于抗病防御酶活力和抗性物質含量測定（第2、4、6、8天取樣），果肉用于果實營養品質指標測定（第0、8天取樣）。

防御酶活力測定：β-1,3-葡聚糖酶（β-1,3-glucanase，GLU）、幾丁質酶（chitinase，CHI）、苯丙氨酸酶（phenylalanine ammonia lyase，PAL）和多酚氧化酶（polyphenoloxidase，PPO）采用相應試劑盒進行測定，以每分鐘每克組織在每1 mL反應體系中于相應波長下吸光度變化1為一個酶活力單位。

抗性物質含量測定：總酚含量和類黃酮含量參考曹建康等[18]的方法進行測定，單位為OD280nm/g、OD325nm/g。

1.3.5 砂糖橘果實營養品質指標的測定

如1.3.4節所述，不同組（CK、C. laurentii、0.5%CMC-C. laurentii）處理果實于浸泡處理后第0、8天取果肉進行果實營養質量測定分析，參考曹建康等[18]的實驗方法測定如下指標：可溶性固形物質量分數（soluble solid content，SSC）使用Brix手持袖珍數顯折射儀進行測定；可滴定酸（titrate acid，TA）質量分數使用NaOH滴定法進行測定；抗壞血酸（ascorbic acid，ASA）質量分數采用2,6-二氯酚靛酚滴定法進行測定；還原糖質量分數使用3,5-二硝基水楊酸法進行測定。

1.4 數據處理與分析

以上實驗指標測定重復3 次。采用Excel 2010軟件進行數據統計，并使用Origin 2019軟件進行圖表繪制，采用SPSS 20.0軟件對數據進行單因素方差分析和鄧肯氏多重比較，P＜0.05為差異顯著。

2 結果與分析

2.1 CMC誘導培養時間對C. laurentii抑制砂糖橘青霉、綠霉病效果的影響

由圖1可知，經CMC誘導培養不同時間的C. laurentii處理后，采后砂糖橘青霉、綠霉病的發病率和病斑直徑隨著培養時間的延長均明顯降低。誘導培養72 hC. laurentii的生防效力最佳，處理后果實P. digitatum和P. expansum的發病率均為55.56%（圖1A），對應果實病斑直徑僅為2.51 cm和2.07 cm，顯著低于其他誘導培養時間處理組（P＜0.05）（圖1B）。

圖1 不同誘導時間0.5% CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實青霉、綠霉病發病率（A）和病斑直徑（B）的影響Fig. 1 Effect of different induction times of C. laurentii with 0.5%CMC on the incidence (A) and lesion diameter (B) of P. digitatum and P. expansum in ‘Shatangju’ mandarin fruit

2.2 CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實抗青霉、綠霉病效果的影響

實驗結果表明，果實接種兩種病原菌后均于第2天開始發病，但0.5% CMC-C. laurentii處理果實第2天未發病（表1）。處理第4天，CK組處理果實P. digitatum、P. expansum發病率均為100%，0.5% CMC-C. laurentii處理的兩種病原菌果實發病率均為55.56%，顯著低于其他處理組（P＜0.05）。0.5% CMC-C. laurentii處理對果實病斑直徑的抑制效果也很明顯。實驗結果顯示，貯藏時間為第5天時，0.5% CMC誘導C. laurentii對于砂糖橘果實的青霉、綠霉病病斑直徑的抑制效果顯著優于未誘導的C. laurentii處理組，較C. laurentii處理組P. digitatum、P. expansum病斑直徑減小了52.23%和33.91%。

表1 CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實發病率和病斑直徑的影響Table 1 Effect of CMC-induced C. laurentii culture on the incidence and lesion diameter of ‘Shatangju’ mandarin fruit

2.3 CMC-C. laurentii處理誘導對砂糖橘果實抗病酶活力和抗性物質含量的影響

2.3.1 果實抗病酶活力的變化

由圖2A可知，砂糖橘果皮PPO活力在貯藏期間總體呈波動上升趨勢。酵母處理砂糖橘果皮PPO活力呈穩定緩慢上升情況。貯藏前期C. laurentii處理果皮PPO活力高于0.5% CMC-C. laurentii處理，于貯藏第6天差異顯著（P＜0.05）。隨貯藏時間延長，0.5% CMC-C. laurentii處理誘導促進果皮PPO活力增加，貯藏第8天，0.5% CMC-C. laurentii處理組PPO活力分別是CK組C. laurentii處理組的1.53 倍和1.12 倍（P＜0.05）。

如圖2B所示，在貯藏期間，采后砂糖橘果皮PAL活力整體維持相對平穩趨勢。C. laurentii處理果皮PAL活力在貯藏前期（2～4 d）顯著高于其他處理組（P＜0.05）。相反，0.5% CMC-C. laurentii處理砂糖橘果皮PAL活力在貯藏早期相對較低，隨貯藏時間延長，0.5% CMC-C. laurentii處理對果皮PAL誘導作用增加，貯藏后期該處理組果皮PAL活力顯著上升，貯藏第8天顯著高于其他處理組（P＜0.05）。

由圖2C可知，隨著貯藏時間的延長，砂糖橘果皮CHI活力總體呈先上升后下降的趨勢。貯藏期間（第2、4、6天）酵母誘導處理（C. laurentii處理）比CK組果皮CHI活力顯著提高（P＜0.05），其促進作用在貯藏前期比后期更明顯。0.5% CMC-C. laurentii處理在貯藏前期的誘導促進作用不明顯，但隨貯藏時間延長，貯藏第8天該處理組果皮的CHI活力顯著提升（P＜0.05），分別是CK組和C. laurentii處理組的1.68 倍和1.72 倍。

如圖2D所示，在貯藏期間，酵母誘導處理果皮的GLU活力呈持續上升趨勢。C. laurentii處理果皮貯藏第6、8天時GLU活力顯著高于CK組（P＜0.05）。0.5%CMC-C. laurentii浸泡處理果皮的GLU活力貯藏期間始終顯著高于CK組果實，貯藏第8天時，該處理組果皮GLU活力是CK組的5.18 倍。從圖中可看出，酵母處理均促進果皮GLU活力上升，相對未經CMC誘導培養的酵母處理果皮，其酶活力緩慢上升，0.5% CMC-C. laurentii處理果皮的GLU活力在貯藏第8天時急劇增加，是C. laurentiii處理的1.35 倍（P＜0.05）。

圖2 CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果皮PPO（A）、PAL（B）、CHI（C）和GLU（D）活力的影響Fig. 2 Effect of CMC-induced C. laurentii culture on the activities of PPO (A), PAL (B), CHI (C) and GLU (D) in the peel of ‘Shatangju’mandarin fruit

2.3.2 果實抗性物質含量變化

如圖3所示，在貯藏過程中，添加/未添加CMC培養C. laurentii誘導處理果皮總酚含量變化與類黃酮含量變化趨勢相似。如圖3A所示，C. laurentii誘導處理果皮的總酚含量在第6、8天時與CK組處理無顯著差異（P＞0.05）。0.5% CMC培養C. laurentii誘導處理果皮類黃酮含量呈上升趨勢（圖3B），在貯藏第4、6、8天時顯著高于其他處理組（P＜0.05）。

圖3 CMC-C. laurentii不同處理對砂糖橘果皮總酚含量（A）和類黃酮含量（B）的影響Fig. 3 Effect of CMC-induced C. laurentii culture on the contents of total phenols (A) and flavonoids (B) in the peel of ‘Shatangju’ mandarin fruit

2.4 CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實營養品質的影響

CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實營養品質的影響如表2所示，在貯藏第8天，0.5% CMC-C. laurentii處理一定程度抑制果實體內ASA質量分數和TA質量分數的下降，其中對TA的作用效果較其他組顯著（P＜0.05）。此外，C. laurentii不同處理能顯著抑制果實組織中SSC的升高（P＜0.05），另外，0.5%CMC-C. laurentii處理能維持果實在貯藏期間的還原糖質量分數，但與CK組差異不顯著（P＞0.05）。因此，該實驗結果表明，隨著貯藏時間的延長，經0.5% CMC-C.laurentii處理的砂糖橘果實在貯藏期間能夠保持較好品質，無負面影響。

表2 CMC-C. laurentii不同處理對砂糖橘果實品質的影響Table 2 Effect of CMC-induced C. laurentii culture on fruit quality of‘Shatangju’ mandarin after storage

3 討 論

采后青霉、綠霉病是柑橘類果實貯藏運輸中最容易發生的病害[19]。果實抗病效果最直觀的外在表現形式為果實發病率和病斑直徑的變化[20]。目前，有研究證實，添加外源多糖誘導培養可以顯著提高拮抗酵母的生防效力，如葡聚糖、海藻糖、殼聚糖、幾丁質等[11]。另外，添加幾丁質誘導培養Rhodosporidium paludigenum可提高酵母在梨、蘋果、櫻桃、西紅柿和柑橘果實采后對病害的生防效力，促進R. paludigenum酵母抗氧化能力，促進CHI等胞外水解酶分泌[21]。顧寧[22]研究發現，添加0.5%殼聚糖誘導培養酵母處理對采后草莓灰霉病的發生具有明顯抑制作用，通過轉錄組、蛋白質組學分析，推測殼聚糖誘導培養促進酵母生長繁殖、菌株活力及其在果實表面定植能力，從而提高酵母生防效果。本課題組利用轉錄組技術和生物信息學對0.5% CMC誘導培養24 h的C. laurentii的差異基因進行分析，結果表明，0.5% CMC誘導后酵母生長繁殖、能量供應等相關基因的表達量上調，促進酵母快速繁殖[17]。另外，Zhao Lina等[11]研究發現，使用0.5%海藻糖誘導培養Pichia carribbica處理采后草莓，防御酶（PPO、POD和GLU）活力得以升高，且對草莓灰霉病的發生有顯著的抑制作用，從而表現出一定的生防效力。在本實驗中，0.5% CMC-C. laurentii處理的砂糖橘果實接種P. expansum、P. digitatum病原菌后，果實發病率和病斑直徑顯著小于CK組和C. laurentii組（P＜0.05）。結果表明，添加CMC誘導培養C. laurentii，增加酵母的繁殖速率，便于其在傷口表面快速增殖，從而增強酵母的生防效力。

植物苯丙烷代謝是植物抗病防御體系形成的關鍵途徑之一。PAL作為植物苯丙烷代謝途徑中許多次生代謝物質，如黃酮類物質、酚類物質、木質素和水楊酸等合成途徑中的關鍵酶和限速酶，其活力的強弱直接與植物的抗病性能相關[23]。因此，在植物受到病原菌侵染后，其體內的PAL活力會升高，以此加強植物抵御對外界不良環境的影響。研究表明，PPO活力的提高能夠調控木質素的合成，木質素含量的上升能夠增強植物對病原菌的抗病能力，另外，PPO活力的提高還能夠促進酚類物質轉化為對病原菌更具毒性的醌類物質[24]，進而減弱病原菌對植物的毒害作用，提高其抗病能力。蔡亞文等[25]研究發現，Pichia galeiformis處理能夠一定程度控制李果實采后褐腐病，提高李果實抗病性，顯示出該菌株具有較強的生物防治潛力，其生防效力與誘導果實提高PAL、POD、C4H、4CL抗性酶活力、木質素、總酚、類黃酮等抗性物質含量呈正相關。Sun Cuicui等[26]將Meyerozyma guilliermondiiY-1和褪黑素復合接種于蘋果果實后，發現宿主的苯丙烷代謝相關酶（PAL、PPO）被啟動，促進抗性物質（木質素、總酚）積累，誘發宿主的防御系統，增強蘋果對灰霉病的抗性。本研究中，0.5% CMC-C. laurentii處理砂糖橘果實維持較高PAL、PPO活力及較高的總酚、類黃酮等抗性物質含量，從而增強砂糖橘對青霉、綠霉菌的抗病性。

GLU和CHI是植物體內兩種最重要的病程相關蛋白[27]，可分別降解病原真菌細胞壁的幾丁質和β-1,3-葡聚糖破壞病原菌的細胞結構，從而抑制病原菌的侵染、生長和繁殖[28-29]。酵母菌也能夠分泌胞外水解酶（GLU、CHI），完成對病原菌細胞壁的水解作用，進而提高拮抗酵母對病原菌的生防效力[21]。Lu Huangping等[30]研究發現，使用幾丁質誘導培養R. paludigenum，能夠有效抑制采后蘋果青霉病害的發生，這與提高蘋果中GLU、CHI活力相關。本課題組研究發現，采用C. laurentii、CMC殼聚糖復合處理有效降低葡萄柚果實綠霉病害發生，這與拮抗酵母、外源多糖協同誘導提高果實GLU、CHI活力有關[31]。本實驗研究發現，0.5% CMC-C. laurentii處理的果實GLU、CHI活力增強，有效抑制青霉、綠霉菌繁殖侵染。

本實驗發現，添加/未添加CMC培養C. laurentii處理，其影響采后果實防御酶活力、抗性物質含量的效果有所差異。未添加CMC培養C. laurentii在貯藏初期對果皮PPO、PAL、CHI活力及總酚、類黃酮含量的誘導作用明顯，之后整體呈下降趨勢，而添加CMC培養C. laurentii對果皮總酚、類黃酮含量的誘導效果變化趨勢則相反，隨貯藏時間延長，果皮PPO、PAL、CHI活力及總酚、類黃酮含量逐漸增加，貯藏第8天顯著高于C. laurentii組（P＜0.05）。上述現象的出現，推測可能是添加CMC培養對C. laurentii造成一定程度的誘導脅迫，使菌體處于緩沖適應期，期間菌體各種抗性能力較低，待適應脅迫條件后，菌體抗逆性增強，其生防效力也有所提升。本實驗中，C. laurentii在CMC誘導適應期間，仍表現出較強的生防效力，推測是CMC誘導培養提高C. laurentii繁殖速率，搶占營養和生存空間，抑制病原菌生長，從而有效控制病害發生，這與本課題組前期轉錄組學研究結果[17]一致，即0.5% CMC誘導培養使C. laurentii細胞能量代謝和生長、繁殖相關基因上調表達。

果實在采后仍進行著一系列復雜的代謝過程，果實中SSC以及TA、ASA、還原糖質量分數可以用來有效衡量果實采后營養品質[32]。大量研究表明，采用拮抗酵母有效控制采后果實貯藏病害發生的同時不會對果實的貯藏品質造成影響（如羅倫隱球酵母防治葡萄柚綠霉病[33]、季也蒙畢赤酵母防治枇杷炭疽病[34]、葡萄汁有孢漢遜酵母防治草莓灰霉病等[35]）。本研究表明，0.5% CMC-C. laurentii處理在貯藏期間能夠有效維持砂糖橘果實中TA、ASA和還原糖的質量分數，抑制了SSC減小。推測可能是0.5% CMC誘導C. laurentii處理使砂糖橘果皮表面形成多糖-酵母復合膜，抑制水分損失，減緩果實呼吸作用，從而降低果實內部營養物質的消耗，維持采后果實營養品質。

4 結 論

本實驗結果表明，0.5% CMC-C. laurentii處理能夠增強采后砂糖橘抗青霉、綠霉病效果，果實抗病防御酶PAL、PPO、GLU、CHI活力及抗性物質總酚、類黃酮含量得以提高，能強化果實自身抗病防御系統，抵御病原菌的入侵，進而增強果實采后抗病性。同時本研究表明，0.5% CMC-C. laurentii處理對砂糖橘果實貯藏品質無不利影響。綜上所述，添加CMC培養誘導能夠提高C. laurentii生防效力，增強C. laurentii處理砂糖橘果實抗青霉、綠霉病的能力，本研究對提高C. laurentii在果品采后生物防治的商業化應用方面具有一定的理論指導意義。