武偉國,蔡子平,王國祥*,王波
1.甘肅省農業科學院 中藥材研究所/甘肅省中藥材種質改良與質量控制工程實驗室/甘肅省名貴中藥材馴化與種苗繁育工程中心,甘肅 蘭州 730070;
2.蘭州海關技術中心 食品安全實驗室,甘肅 蘭州 730000
當歸Angelica sinensis(Oliv.)Diels 為傘形科(Umbrelliferae)當歸屬多年生草本植物,以根入藥,味甘、辛,性溫,含藁本內酯、α-蒎烯等不飽和烴、醇、醚、醛、酮、酚、酸、酯、磷脂、多糖和氨基酸等多種成分,具有調血活血、調經止痛、潤腸通便等功效,為臨床使用頻率最高的中藥之一[1]。當歸在我國地理分布廣泛,具有岷歸、川歸和云歸等多個道地品種,主產區位于甘肅,約占全國產量的70%[2]。
當歸的形態變化特征與物質積累進程受遺傳特性、環境條件和栽培措施等因素的共同影響,而這方面的研究僅有少量文獻報道[3-6]。本研究旨在探討當歸形態特征與藥效成分含量變化、物質積累進程的關系,揭示當歸產量與品質形成機制,為當歸規范化種植提供參考。
樣品為2018 年甘肅省定西市岷縣閭井鎮農戶所育,經冬季窖藏后,于移栽前進行挑選,由甘肅省農業科學院中藥材研究所龔成文研究員鑒定為當歸Angelica sinensis(Oliv.)Diels 種苗。種苗根長(8.00±1.50)cm,根粗(4.50±0.50)mm,根鮮質量(0.50±0.10)g。藥材硫基長效配方肥購于甘肅施可豐生態科技有限公司,N、P2O5和K2O質量分數分別為20%、15%和10%。
Secura 224-ICN 型分析天平(德國賽多利斯公司);SP-756P 型紫外分光光度計(上海光譜儀器有限公司);1260 Infinity Ⅱ型高效液相色譜儀(美國安捷倫科技公司)。
對照品阿魏酸(批號:D0009741,純度≥99%)、Z-藁本內酯(批號:RFS-G01001909023,純度≥98%)均購于上海麥克林生化科技有限公司;甲醇為色譜純;其他試劑均為分析純。
移栽試驗于2019 年4 月至11 月進行,6 次重復,株行距7.5 cm×40.0 cm,小區面積11.5 m×4.0 m,種植于道地產區甘肅省定西市渭源縣會川鎮半陰坡村。各小區當歸的出苗率>80%,抽薹率<6%,且差異無統計學意義。試驗區海拔2500 m,氣候高寒陰濕,晝夜溫差大,年平均氣溫4.7 ℃,年平均降水量650 mm,無霜期130 d,土壤類型為黑壚土。試驗地土壤有機質質量分數37.1 g·kg-1、速效鉀質量分數215 mg·kg-1、速效磷質量分數59.6 mg·kg-1、堿解氮質量分數250 mg·kg-1,pH 為7.77,于移栽前基施1200 kg·hm-2藥材硫基長效配方肥。2019 年試驗區氣溫和10 cm深土壤地溫變化趨勢見圖1。

圖1 2019年當歸田間試驗試驗區氣溫和地溫變化趨勢
2019 年5 月30 日至11 月10 日,每個小區每隔20 d 挖取長勢均一的植株30 株,將莖葉與根部分離并清洗泥土后晾干,測定每個植株的葉數、株高、葉鮮質量、根長、根粗和根鮮質量形態性狀并取相應的平均值,葉片枯萎變干后不計入莖葉部分,株高以最大葉片葉基至葉片中心的距離為依據。自然陰干后測定30 株植株混合樣品的葉干質量和根干質量。
2019 年5 月30 日至11 月10 日,每個小區每隔20 d 挖取長勢均一的植株30 株,取根部洗滌干凈后帶回實驗室,自然陰干后粉碎(過60 目篩),測定30 株植株混合樣品的浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯質量分數。
2.3.1 浸出物與揮發油的測定 參照《中華人民共和國藥典》2020 年版方法,以70%乙醇為溶劑,采用熱浸法測定浸出物質量分數,采用水蒸氣蒸餾法測定揮發油質量分數[7]。
2.3.2 有機酸與多糖含量測定 于25 ℃以50%乙醇超聲輔助提取有機酸,以1 mol·L-1HCl酸化提取液至pH 為2 左右,以正丁醇萃取有機酸。移取有機酸提取液5 mL,以酚酞為指示劑,以0.1 mol·L-1NaOH 標準溶液滴定,以溶液由無色變為紅色時為滴定終點。以檸檬酸為基準計算有機酸質量分數。于70 ℃下采用蒸餾水浸提多糖,以Sevage試劑[三氯甲烷-正丁醇(4∶1)]脫蛋白。移取多糖提取液1 mL,依次加入6%苯酚1 mL、蒸餾水1 mL 和濃硫酸5 mL,靜置10 min 后,搖勻,室溫放置30 min,以純水樣品為空白對照,于485 nm 測定吸光度。以葡萄糖為基準計算多糖質量分數,標準曲線方程為Y=0.066 6X-0.030 0,r=0.999 9,Y表示485 nm 處的吸光度,X(mg·L-1)表示葡萄糖的質量濃度。
2.3.3 阿魏酸和Z-藁本內酯含量測定 采用高效液相色譜法測定阿魏酸和Z-藁本內酯的含量。
2.3.3.1 對照品溶液制備 精密稱取阿魏酸3.75 mg和Z-藁本內酯10.00 mg,以含5%甲酸的甲醇溶解后轉入50 mL量瓶中,定容至刻度,則得含75 mg·L-1阿魏酸和200 mg·L-1Z-藁本內酯的對照品溶液,使用時按所需倍數稀釋。
2.3.3.2 供試品溶液制備 取當歸粉末約0.5 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入70%甲醇20 mL,密塞,稱定質量,加熱回流30 min,放冷,再稱定質量,用70%甲醇補足減失的質量,搖勻,靜置,取上清液濾過,取續濾液,經0.45 μm 濾膜濾過,取續濾液,即得供試品溶液。
2.3.3.3 色譜條件 采用Agilent Extend C18色譜柱(250mm×4.6 mm,5μm);流動相0.1%甲酸甲醇溶液(A)-0.1%甲酸水溶液(B),梯度洗脫(0~3 min,10%~15%A;3~12 min,15%~45%A;12~30 min,45%~65%A;30~35 min,65%~80%A;35~40 min,80%~90%A,40~45 min,90%~10%A);柱溫為30 ℃;檢測波長為280 nm;流速為0.2 mL·min-1;進樣量為2μL。對照品溶液與供試品溶液的高效液相色譜圖見圖2。

圖2 對照品及當歸供試品溶液的高效液相色譜圖
2.3.3.4 檢出限與定量限 分別精密量取對照品溶液適量,以含5%甲酸的甲醇倍比稀釋,按2.3.3.3項下條件測定,以信噪比(S/N)≥3 計算檢出限,以S/N≥10 計算定量限。阿魏酸和Z-藁本內酯的檢出限分別為0.015、0.040 mg·L-1、阿魏酸和Z-藁本內酯的定量限分別為0.050、0.120 mg·L-1。
2.3.3.5 線性范圍 分別精密量取對照品溶液10、25、50、100、250 μL 并移入50 mL 量瓶中,以含5%甲酸的甲醇定容至刻度。按2.3.3.3 項下條件測定,對峰面積和對照品的質量濃度作回歸分析。結果表明,阿魏酸質量濃度在0.015 0~0.375 0 mg·L-1與峰面積線性關系良好,Z-藁本內酯質量濃度在0.040 0~1.000 0 mg·L-1與峰面積線性關系良好。阿魏酸的標準曲線方程為Y=21 255X-116.67(r=0.999 8);Z-藁本內酯的標準曲線方程為Y=9 800.7X+90.37(r=0.999 3)。
2.3.3.6 精密度試驗 精密量取對照品溶液適量,按2.3.3.3 項下條件連續測定6 次。阿魏酸和Z-藁本內酯質量分數的RSD 分別為2.18%和1.94%,表明儀器精密度良好。
2.3.3.7 穩定性試驗 精密量取供試品溶液適量,分別于室溫下放置4、8、12、16、18、24 h,按2.3.3.3項下條件測定。24 h內阿魏酸和Z-藁本內酯質量分數的RSD 分別為2.65%和2.78%,表明溶液穩定性良好。
2.3.3.8 重復性試驗 精密稱取當歸樣品粉末適量,共6 份,按2.3.3.2 項下方法制備供試品溶液,按2.3.3.3 項下條件測定。阿魏酸和Z-藁本內酯質量分數的RSD 分別為1.86%和2.15%,表明方法重復性良好。
2.3.3.9 加樣回收率試驗 精密稱取已知含量的當歸樣品粉末適量,共6 份,分別加入一定質量濃度的對照品溶液適量,按2.3.3.2 項下方法制備供試品溶液,按2.3.3.3 項下條件測定,計算加樣回收率,結果見表1。阿魏酸和Z-藁本內酯的回收率分別為98.93%和96.60%。

表1 當歸中阿魏酸和Z-藁本內酯的加樣回收率

公式(1)中,y0為偏移因子,A為面積因子,w為寬度因子,tc為中心因子;公式(2)中,k為飽和因子(容量因子),a為初始因子,b為速率因子。根據公式(2)的二階微分方程,可以將積累進程劃分為3 個階段,即起始期、指數期和穩定期,以d2y/d2t=0.01kb2對應的時間為起始期開始時間,以d2y/d2t=-0.01kb2對應的時間為穩定期結束時間,以d3y/d3t=0 對應的時間為指數期開始與結束時間[8]。
當歸葉數、株高、葉鮮質量、葉干質量和葉干物質質量分數的變化過程見圖3~4。由圖3 可知,當歸的葉數和株高隨時間均呈先遞增后遞減的變化趨勢,這與老葉枯萎新葉新生相關。葉數從40 d 的3 片升至120 d 的9 片,再降 至200 d 的2片。株高從40 d 的8.37 cm 升至140 d 的53.87 cm,再降至200 d 的32.48 cm。由圖4 可知,當歸的葉鮮質量和葉干質量隨時間均呈先遞增后遞減的變化趨勢。葉鮮質量從40 d的1.39 g升至140 d的165.90 g,再降至200 d 的31.49 g。葉干質量從40 d 的0.25 g升至140 d 的25.52 g,再降至200 d 的9.76 g。當歸的葉干物質質量分數隨時間呈先遞減后遞增的變化趨勢,從40 d的17.93%降至140 d的15.38%,再升至200 d的31.09%。

圖3 當歸葉數及株高的變化趨勢(, n=6)

圖4 當歸葉質量及干物質質量分數的變化趨勢(, n=6)
當歸根長、根粗、根鮮質量、根干質量和根干物質質量分數的變化過程見圖5~6。由圖5 可知,當歸的根長和根粗隨時間均呈遞增的變化趨勢。根長從40 d的9.11 cm 升至200 d 的35.41 cm。根粗從40 d 的4.93 mm 升至200 d 的32.09 mm。由圖6 可知,當歸的根鮮質量和根干質量隨時間均呈遞增的變化趨勢。根鮮質量從40 d 的0.68 g 升至200 d 的124.29 g。根干質量從40 d 的0.14 g 升至180 d 的38.30 g,再略微降至200 d 的38.01 g。當歸的根干物質質量分數隨時間呈先遞減后遞增再遞減的變化趨勢,從40 d的20.12%降至60 d的19.51%,再升至160 d的34.78%,再降至200 d 的30.54%。

圖5 當歸根長及根粗的變化趨勢(, n=6)

圖6 當歸根質量及干物質質量分數的變化趨勢(, n=6)
當歸莖葉與根部的鮮質量、干質量和干物質質量分數比例的變化過程見圖7。由圖7可知,當歸的根葉鮮質量比、干質量比隨時間呈先遞減后遞增的變化趨勢。根葉鮮質量比從40 d 的0.49 降至80 d 的0.18,再升至200 d 的4.05。根葉干質量比從40 d的0.55 降至60 d 的0.21,再升至200 d 的3.96。當歸的根葉干物質質量分數比隨時間呈先遞增后遞減的變化趨勢,從40 d 的1.13 升至140 d 的1.88,再降至200 d的0.98。

圖7 當歸根葉鮮質量比、干質量比和干物質質量分數比的變化趨勢(, n=6)
當歸浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯含量的變化過程見表2。
浸出物和揮發油是控制芳香類中草藥質量的重要指標[9]。由表2 可知,當歸的浸出物含量隨時間呈先遞增后遞減再遞增的變化趨勢。浸出物質量分數從40 d的40.33%升至200 d的58.83%。當歸的揮發油含量隨時間呈先遞增后遞減的變化趨勢。揮發油質量分數從40 d的0.49%升至180 d的1.66%,再降至200 d的1.26%。
表2 當歸浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯的質量分數(, n=6) %

表2 當歸浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯的質量分數(, n=6) %
注:同列不同小寫字母表示P<0.05。
當歸總有機酸主要包括丁二酸、壬二酸、癸二酸、茴香酸、肉蔻豆酸、樟腦酸、阿魏酸、煙酸、香草酸、正二十四酸、棕櫚酸等,具有很強的抗氧化活性和抗菌活性[10]。多糖作為一類生物大分子,具有廣泛的生物學活性。當歸多糖由葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖、木糖、葡萄糖醛酸和半乳糖醛酸等成分組成,對機體免疫系統、造血系統等有明顯作用,在抗腫瘤、抗放射性損傷上有良好療效[11-12]。由表1 可知,當歸的有機酸含量和多糖含量均隨時間呈遞增的變化趨勢。有機酸質量分數從40 d 的6.47%升至200 d 的11.39%。多糖質量分數從40 d的17.25%升至200 d的19.26%。
阿魏酸是當歸有機酸的代表成分,Z-藁本內酯是當歸中具有重要生理活性的成分[13],其常被作為當歸的藥效標志物。由表1 可知,當歸的阿魏酸含量和Z-藁本內酯含量均隨時間呈遞增的變化趨勢。阿魏酸質量分數從40 d 的0.050% 升至200 d 的0.081%。Z-藁本內酯質量分數從40 d 的0.31%升至200 d的1.13%。
莖葉生物量y(g)隨時間t(d)呈先增大后減小的趨勢,以高斯方程為模型進行擬合。根部生物量、浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯y(g)等隨時間t(d)均呈增大的趨勢,以邏輯斯蒂方程為模型進行擬合。
擬合方程及統計分析見表3。由表3 可見,對于莖葉生物量,R2>0.950 0,χ2(5)<χ20.01(5)=15.09(P<0.01),F(4,5)>F0.01(4,5)=11.39(P<0.01);對于根部生物量、浸出物、揮發油、阿魏酸和Z-藁本內酯,R2>0.950 0,χ2(6)<χ20.01(6)=16.81(P>0.01),F(3,6)>F0.01(3,6)=9.78(P<0.01),因此,擬合精度和擬合優度均很好。

表3 當歸生物量及藥效成分積累進程的擬合方程及統計分析(n=9)
時間分界及各時期的特征見表4。由表4 可知,浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯的積累進程的3 個階段與根部生物量有很高的重疊性。

表4 當歸生物量及藥效成分積累進程的時期劃分及各時期的特征
根據當歸莖葉及根部的生長狀況,當歸成藥期生長過程可初步劃分為5 個階段:出苗期(0~20 d,移栽至5 月中旬)、莖葉緩慢生長期(20~60 d,5 月中旬至6月中旬)、莖葉旺盛生長期(60~120 d,6月中旬至8月中旬)、根部旺盛生長期(120~160 d,8月中旬至9 月中旬)和根部穩定生長期(160~200 d,9 月中旬至11月中旬)。
生物量的積累與分配過程從表象上反映了植物的生長發育過程。0~20 d 期間,根部提供營養以供基芽生長,生物量有所消耗。20~60 d,莖葉及根部生物量的積累速度均較慢,這一階段主要發生不定根及側根的構建過程;60~120 d,莖葉生物量的積累速度較快,而根部生物量的積累速度較慢,這一階段莖葉的快速生長為光合作用創造條件。120~200 d,莖葉及根部生物量的積累發生2 次質變。在120 d 左右,根部生物量的積累速度超過莖葉生物量,這時氣溫開始<20 ℃。在150 d 左右,根部生物量超過莖葉生物量,實現了生物量主要分配區從莖葉到根部的過渡,這時氣溫開始<15 ℃。特別是在140 d左右,莖葉生物量的積累進入衰退期,這與老葉開始枯萎有關,在160 d左右,根部生物量的積累進入穩定期。
浸出物、揮發油、有機酸、多糖、阿魏酸和Z-藁本內酯的積累是當歸次生代謝過程的主要表現,在整個觀測期,其質量分數分別增加了18.50%、0.76%、2.02%、4.93%、0.03%和0.82%,且積累進程的3 個階段與根部生物量的重疊性很高,即其積累從屬于根部生物量。