紫花苜蓿MsCIPK2的克隆及功能分析

蘇倩，杜文宣，馬琳，夏亞迎，李雪，祁智，龐永珍

紫花苜蓿的克隆及功能分析

1中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所，北京 100193；2內蒙古大學生命科學學院，呼和浩特 010021

【目的】CIPK是植物響應逆境脅迫信號通路中一類重要的蛋白激酶，可與CBL形成CBL-CIPK復合物，啟動細胞內相關應答基因的表達而應對各種非生物脅迫。發掘并研究紫花苜蓿MsCIPK基因響應非生物脅迫的分子機理，有助于揭示紫花苜?？鼓嫔飳W基礎，為紫花苜?？鼓嬗N提供新的基因資源。【方法】通過PCR技術克隆，使用生物信息學工具分析基因序列，利用qRT-PCR技術分析，以及與其互作的4個CBL基因（、、和）在紫花苜蓿各組織中的表達水平，在煙草葉片表皮細胞中，瞬時表達pCAMBIA1302-GFP-MsCIPK2融合表達載體，通過激光共聚焦顯微鏡觀察進行亞細胞定位，利用酵母雙雜交技術分析MsCIPK2與4個MsCBLs蛋白互作情況，利用發根農桿菌誘導紫花苜蓿產生過量表達的毛狀根，利用qRT-PCR技術分析轉基因毛狀根株系中相關基因的表達水平?！窘Y果】通過PCR擴增獲得片段，該基因CDS為1 230 bp，編碼409個氨基酸，具有典型的CIPK家族的ATP結合位點、激活環、NAF motif和PPI motif等結構域。在紫花苜蓿根中表達量最高，在花中表達量最低。亞細胞定位結果顯示，MsCIPK2蛋白定位于內質網。酵母雙雜交試驗結果顯示，MsCIPK2蛋白與MsCBL2、MsCBL6、MsCBL7和MsCBL10蛋白具有相互作用，且與MsCBL10蛋白相互作用較強。、和在紫花苜蓿根中表達量最高，在莢中表達量最高。qRT-PCR結果表明，過量表達的毛狀根中響應非生物脅迫基因、、、、和的表達量均明顯上調。在200 mmol·L-1NaCl和20%PEG處理條件下，與對照相比，過量表達毛狀根的丙二醛含量降低，SOD活性、脯氨酸含量和可溶性糖含量增高?！窘Y論】紫花苜蓿MsCIPK2與MsCBLs蛋白互作，主要在根中表達并響應鹽和干旱脅迫，過量表達可以提高紫花苜蓿的耐鹽性和耐旱性，可作為提高紫花苜?？鼓嬗N的候選基因。

紫花苜蓿；CBL-相互作用蛋白激酶；類鈣調神經磷酸酶B；非生物脅迫

0 引言

【研究意義】紫花苜蓿（L）是豆科苜蓿屬草本植物，是世界上最重要、種植面積最廣的豆科栽培牧草。近年來，隨著中國農業產業結構的調整和畜牧業的發展[1]，苜蓿種植面積逐年擴大，并逐步向規?；⒓s化方向發展[2]，逐步形成了寧夏河套灌區、甘肅河西走廊、內蒙古科爾沁草地等十萬畝以上優質苜蓿種植基地[2]。雖然如此，苜蓿產業供給矛盾仍然突出，僅內蒙古年供需缺口達到3 000萬t[3]。隨著國人對高質量牛羊肉和牛奶的需求，優質苜蓿需求量將逐年增長。而苜蓿在生長過程中遇到的非生物脅迫（干旱、鹽堿、極端溫度等）[4]，嚴重影響了產量和品質[5-6]。因此，挖掘紫花苜?？鼓嫦嚓P基因，改善紫花苜蓿的抗逆性，對提高紫花苜蓿的產量和品質具有重要意義。【前人研究進展】CIPK是一種特異的絲氨酸-蘇氨酸激酶家族蛋白，最初由Shi等[7]和Johnson等[8]在擬南芥中對CBLs蛋白進行酵母雙雜交篩選時發現的。在野大麥（）中，是鹽和滲透脅迫耐受性的正調控因子。HbCIPK2主要定位于質膜和細胞核。啟動子的異源表達不僅回復了擬南芥突變體對鹽的敏感性，而且提高了野生型擬南芥的耐鹽性，并在萌發過程中表現出對滲透脅迫的耐受性。的表達有助于防止根系K+流失，減少地上部Na+積累，維持K+/Na+穩態，保護根細胞免于死亡[9]。在煙草中，過量表達鷹嘴豆（）提高了轉基因煙草的耐鹽性，表現為幼苗根系發達、基部生長素轉運增加以及對生長素的超敏性[10]。在鹽脅迫條件下，玉米的表達水平上調，過量表達玉米擬南芥中和的表達量上調，增強了轉基因擬南芥的耐鹽性[11]。干旱脅迫條件下，表達量上升，過量表達煙草提高了其抗旱性，并誘導了干旱脅迫相關基因的表達[12]。過量表達擬南芥在干旱脅迫下的存活率明顯高于野生型，并且與抗旱相關的生理指標，如過氧化物酶、超氧化物歧化酶活性高于野生型，丙二醛和脯氨酸含量低于野生型[13]。在水稻中，過量表達可以誘導干旱脅迫相關基因的表達，表達抑制的RNAi植株對干旱脅迫表現出高度敏感反應[14]。擬南芥在冷、鹽和ABA脅迫下的表達水平上調，突變體植株誘導逆境相關基因的表達和ABA響應基因的表達[15]。【本研究切入點】CIPK作為一類蛋白激酶，在植物逆境脅迫響應信號通路中發揮重要作用，其上游基因所編碼的類鈣調神經磷酸酶B是一類鈣感受器，可以感知細胞內鈣離子濃度在特定的時間變化，與Ca2+結合后激活其活性，CBL與CIPK蛋白的NAF結構域結合，形成CBLs-CIPKs復合物，啟動細胞內相關應答基因的表達來應對各種非生物脅迫。CIPK蛋白激酶作為Ca2+信號轉導過程中的重要因子，在脅迫網絡調控中起關鍵作用，但該家族蛋白在紫花苜蓿中的功能還不完全清楚。中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所牧草種質資源收集保護和利用團隊前期通過蒺藜苜蓿芯片數據庫篩選了一個受非生物脅迫誘導表達的MtCIPK基因，鑒定了該基因在紫花苜蓿中的同源基因，通過實時熒光定量PCR發現的表達水平受NaCl和PEG等非生物脅迫的誘導[16]?！緮M解決的關鍵問題】本研究以紫花苜蓿為研究對象，進一步揭示以為代表的CIPK基因家族在紫花苜蓿體內的生物學功能，有助于更好地改善紫花苜?？鼓嫘圆⒅笇ё匣ㄜ俎？鼓嬗N。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

試驗于2020年12月至2022年4月在中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所牧草種質資源收集保護和利用實驗室進行。紫花苜蓿中苜1號和本氏煙草植物材料、大腸桿菌菌株DH5α、農桿菌菌株GV3101和ARquaⅠ、酵母菌菌株AH109、植物表達載體pCAMBIA1302-GFP、酵母表達載體pGADT7-DEST和pGBKT7-DEST、內質網定位標簽（ER-marker）、增強熒光信號農桿菌P19均由中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所牧草種質資源收集保護和利用團隊提供。試驗引物由北京擎科生物科技有限公司合成。

1.2 DNA、RNA提取及cDNA合成

利用CTAB法提取紫花苜蓿DNA。取紫花苜蓿根、莖、葉、花和莢組織鮮樣，利用Eastep? Super總RNA提取試劑盒（上海普洛麥格生物科技有限公司）提取總RNA。利用FastKing一步法除基因組cDNA第一鏈合成預混試劑（天根生化科技（北京）有限公司），將紫花苜?？俁NA反轉錄成cDNA，并稀釋至10 ng·μL-1備用。

1.3 PCR和實時熒光定量PCR（qRT-PCR）

用于基因克隆的PCR體系（50 μL）：5 μL 10× Buffer、5 μL 2 mmol·L-1dNTP、2 μL 25 mmol·L-1MgSO4、1.5 μL正反向引物F/R（表1）、2 μL紫花苜蓿根cDNA、1 μL KOD-Plus（東洋紡生物科技有限公司）。用于菌落檢測的PCR體系（20 μL）：10 μL 2×Taq PCR StarMix（北京德益恒達生物科技有限公司）、0.5 μL正反向引物F/R、2 μL菌液。PCR擴增程序為94℃ 3 min，58℃ 30 s，72℃ 2 min，35個循環；72℃ 5 min。

實時熒光定量PCR使用ABI7500 Real-Time PCR system（美國ABI公司）進行擴增。20 μL體系：1 μL模板、0.5 μL正反向引物F/R（表1）、10 μL UltraSYBR Mixture（北京康為世紀生物科技有限公司）。qRT-PCR擴增程序為94℃ 60 s；94℃ 34 s，60℃ 34 s，40個循環。

1.4 MsCIPK2的克隆與序列分析

以紫花苜蓿cDNA為模板，引物為MsCIPK2-F/ MsCIPK2-R，利用KOD-Plus酶克隆目的基因。產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測，純化后連接pTOPO-TA載體（北京艾德萊生物科技有限公司），轉化大腸桿菌菌株DH5α，鑒定陽性單克隆，送至北京擎科生物科技有限公司測序。

將得到的序列使用ORF finder（https:// www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/）分析開放閱讀框；使用在線網站ProtScale進行蛋白疏水性分析。利用生物信息學網站ProtParam（https://web.expasy.org/ protparam/）預測蛋白質一級結構和NovoPro分析其二級結構。利用NCBI數據庫中BLAST工具檢索MsCIPK2同源蛋白序列，獲得的蛋白序列通過Jalview2.11.0軟件進行序列比對。

1.5 MsCIPK2蛋白的亞細胞定位

使用限制性內切酶Ⅰ和Ⅰ雙酶切pCAMBIA1302-GFP表達載體，通過SE無縫克隆試劑盒（美國CloneSmarter公司）連接基因與載體，經測序后獲得重組表達載體質粒。利用凍融法將重組質粒pCAMBIA1302-GFP-MsCIPK2和空載體轉入根癌農桿菌菌株GV3101。挑取陽性農桿菌菌落于LB液體培養基（含50 mg·L-1Kan+50 mg·L-1Rif）中培養，28℃，250 r/min避光培養至OD600約為0.8，4 700 r/min離心10 min收集菌液，使用乙酰丁香酮緩沖液重懸菌體，注射煙草葉片，48 h后將注射葉片剪下、裝片，在激光共聚焦/TIRF顯微鏡（Leica TCS SP8）下觀察熒光信號。

1.6 MsCBLs-MsCIPK2的酵母雙雜交試驗

使用RⅠ和Ⅰ雙酶切pGADT7-DEST（AD）和pGBKT7-DEST（BD）表達載體，通過SE無縫克隆試劑盒（美國CloneSmarter公司）連接基因與載體，產生分別含AD-MsCIPK2、BD-MsCBL2、BD-MsCBL6、BD-MsCBL7和BD-MsCBL10的表達載體，經測序后獲得重組表達載體質粒。將重組質粒共轉化于酵母感受態細胞AH109，并涂布于SD-Trp+ Leu二缺篩選培養基，獲得陽性轉化子后再通過濃度梯度稀釋涂布在SD-Trp+Leu+His培養基，確定蛋白之間的相互作用，最終在SD-Trp+Leu+His培養基中加入X-α-gal確認蛋白之間的互作。

表1 試驗所用引物序列

1.7 過表達MsCIPK2紫花苜蓿毛狀根的獲得及基因表達分析

使用限制性內切酶Ⅰ和Ⅰ雙酶切pCAMBIA1302-Flag表達載體，通過SE無縫克隆試劑盒連接基因與載體，經測序后獲得重組表達載體質粒。將重組質粒pCAMBIA1302-Flag-MsCIPK2和空載體轉入發根農桿菌ARquaⅠ，侵染紫花苜蓿下胚軸，在F培養基中培養一個月，更換添加5 mg·L-1Hyg的B5培養基（美國Phytotech有限公司），待毛狀根生長旺盛時，擴繁培養，待生長量達到試驗需求時，收集材料。

提取轉基因毛狀根DNA，通過PCR確認陽性轉基因毛狀根，從陽性毛狀根提取總RNA，反轉錄成cDNA，檢測在陽性毛狀根中的表達量，篩選出3個高表達的陽性毛狀根，以轉空載體毛狀根為對照，對這三個株系中的脅迫相關基因表達水平進行qRT-PCR分析，其中，（responsive to dehydration 2）和（cold regulated 47）是苜蓿響應干旱脅迫的相關基因[17]；（H+- ATPase）是細胞內離子穩態的核心調節基因[18]；（Δ1-Pyrroline-5-Carboxylate synthase）是編碼脯氨酸生物合成的關鍵酶基因，（oxygen binding protein）編碼的蛋白負責結合氧，對清除ROS、維持細胞ROS穩態起關鍵作用[9]；（high affinity K+transporter 5）是鹽脅迫下調控鉀的吸收、轉運和生理功能的關鍵基因。

1.8 過表達MsCIPK2毛狀根在脅迫條件下的生化指標測定

以Gamborg’s B5為基礎液體培養基（美國Phytotech有限公司），在液體中大量擴繁并培養對照和轉基因的紫花苜蓿毛狀根20 d，在液體培養基中添加NaCl和PEG6000終濃度分別為200 mmol·L-1和20%，置于人工智能溫室（光照：16 h光/8 h黑暗，溫度：25℃/23℃，光強400 μmoL·m-2·s-1），搖床100 r/min慢速培養，分別在處理0、6、12和24 h后收集材料，在液氮中磨成粉末。利用脯氨酸（Pro）含量檢測試劑盒、植物可溶性糖含量檢測試劑盒、丙二醛（malondialdehyde，MDA）含量檢測試劑盒以及超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）活性檢測試劑盒分別分析對照和轉基因毛狀根在2種處理條件下，不同時間點的生化指標。所有處理均設置3個生物學重復。

2 結果

2.1 MsCIPK2的生物信息學分析

根據紫花苜蓿的編碼序列，設計特異性引物MsCIPK2-F/MsCIPK2-R，采用PCR擴增目的基因，經凝膠電泳顯示，獲得一條單一清晰條帶，與目的基因（1 230 bp）大小一致。將目的片段連接至TA載體，使用引物M13-F/M13-R鑒定陽性克隆。將的陽性克隆菌液送至北京擎科生物科技有限公司進行測序。

將測序獲得的正確序列進行生物信息學分析。預測最長開放閱讀框編碼409個氨基酸。MsCIPK2為親水性蛋白，親水指數為-0.224（圖1-A）。MsCIPK2蛋白分子量為46.41 kD，等電點為8.99，不穩定系數為33.34，屬于穩定蛋白；MsCIPK2蛋白的α-螺旋占37.38%，不規則卷曲占34.52%，延伸鏈占19.52%，β-轉角占8.57%（圖1-B）；使用NCBI數據庫中BLAST工具檢索MsCIPK2同源蛋白序列，通過Jalview2.11.0軟件進行序列比對，并對MsCIPK2蛋白序列結構進行分析。結果顯示，MsCIPK2蛋白在4—13位為ATP結合位點，139—167位為激活環，285—294位為NAF motif，313—331位為PPI motif，與大部分豆科植物CIPK25蛋白相似度高（圖1-C）。

2.2 MsCIPK2的組織表達特異性分析

為了研究的表達模式，從紫花苜蓿根、莖、葉、花、莢中分別提取植物總RNA，并反轉錄成cDNA。利用實時熒光定量PCR進行的組織表達特異性分析。結果顯示，在根中的表達量最高，在莢和莖中次之，在花中的表達量最低，并且根中的相對表達量約為莢中表達量的8.9倍，是莖和葉中表達量的20倍（圖2）。

2.3 MsCIPK2蛋白的亞細胞定位

將pCAMBIA1302-GFP-MsCIPK2載體轉入農桿菌GV3101，注射煙草葉片，48 h后使用激光共聚焦顯微鏡觀察融合蛋白定位情況（圖3），在pCAMBIA1302-GFP空載體對照中，綠色熒光在細胞膜、細胞質、細胞核和內質網中均有分布，與內質網定位標簽（ER-mCherry）重疊；而pCAMBIA1302- GFP-MsCIPK2融合蛋白在煙草葉片內質網中出現GFP綠色熒光，具有明顯的內質網絲狀特征，且與ER-mCherry紅色熒光信號重合。表明MsCIPK2蛋白定位于細胞內質網上。

2.4 酵母雙雜交試驗

由于CIPK參與植物應對各種外部脅迫的響應過程大多與CBL相互作用發揮功能，所以利用生物信息學方法篩選了可能與CIPK互作的4個紫花苜蓿CBL基因（、、和），克隆這4個基因并利用酵母雙雜交技術分析這4個MsCBL與MsCIPK2之間的相互作用，研究MsCBL和MsCIPK2結合的特異性和作用強度，闡明CBL- CIPK復合體在逆境脅迫響應中發揮的功能機制。

將pGADT7-DEST-MsCIPK2和pGBKT7-DEST- MsCBLs載體共轉入酵母菌株AH109，涂布在SD-Trp+Leu二缺篩選培養基上，獲得陽性轉化子后再通過1﹕1、1﹕10、1﹕100、1﹕1 000及1﹕10 000梯度稀釋涂布在SD-Trp+Leu和SD-Trp+Leu+His篩選培養基上，30℃倒置培養7 d后觀察試驗結果。以常用并已驗證互作的擬南芥類黃酮途徑2個轉錄因子蛋白AtTT8+AtTT2為陽性對照，pGADT7+pGBKT7為陰性對照。如圖4所示，共表達菌株在SD-Trp+Leu篩選培養基上能穩定生長，即使在1﹕10 000稀釋條件下仍有陽性菌株生長，說明陽性菌株活力強，篩選濃度適當（圖4-左）。在SD-Trp+Leu+His篩選培養基上，與對照相比，MsCIPK2與MsCBL2、MsCBL6、MsCBL7和MsCBL10具有相互作用，且與MsCBL7相互作用較弱，而與MsCBL10相互作用較強（圖4-中）。3次重復結果一致，且互作結果在SD-Trp+Leu+ His+X-α-gal缺陷培養基上，經X-gal染色呈現藍色，進一步驗證了蛋白之間的互作（圖4-右）。

A：蛋白親疏水性預測；B：蛋白二級結構預測；C：MsCIPK2與不同物種CIPKs蛋白序列比對。TcCIPK25：可可樹，EOY29347.1；DzCIPK25：榴蓮，XP_022730333.1；HuCIPK25：哥倫比亞錦葵，XP_021276011.1；ApCIPK5：相思子，XP_027354272.1；MtCIPK25：蒺藜苜蓿，XP_003588823.1；TpCIPK25：紅車軸草，XP_045823300.1；CaCIPK25：鷹嘴豆，XP_004498818.1

2.5 MsCBLs的表達特性分析

為了進一步研究與MsCIPK2互作的4個MsCBL蛋白對應基因在紫花苜蓿中的表達部位，運用qRT-PCR分析它們在紫花苜蓿根、莖、葉、花、莢中的表達量。結果顯示，在根中的表達量最高，在花中的表達量最低，根中的相對表達量約為莢中表達量的2倍、莖中表達量的5倍（圖5-A）；在根中表達量最高，在莖、葉、花和莢中表達量極低，根中表達量為莖、葉、花和莢中表達量的25倍以上（圖5-B）；在莢中表達量最高，在花中表達量幾乎為零，在根、莖和葉中表達量相對較低（圖5-C）；在根中的表達量最高，在花中的表達量最低，根中的相對表達量約為莢中表達量的3.6倍、莖中表達量的21倍（圖5-D）。上述結果表明，和具有相似的組織表達譜，與的表達譜一致（圖2）。

2.6 轉基因MsCIPK2毛狀根中響應非生物脅迫基因的表達分析

毛狀根是通過發根農桿菌誘導植物轉化產生的，具有生長迅速、生產周期短，遺傳穩定性高等優點，可以短期內驗證基因在植物體內功能[19-20]。為了深入研究紫花苜蓿響應脅迫環境的分子機制，通過發根農桿菌誘導轉化產生26株轉基因毛狀根株系（圖6-A和圖6-B），通過PCR在DNA水平確認了部分轉基因陽性毛狀根（圖6-C），進而利用qRT-PCR技術檢測陽性毛狀根中的表達量（圖6-D），從中篩選表達量高的毛狀根用于后續試驗（代表性株系2-3、2-3和2-6）。

*表示P＜0.05差異顯著，**表示P＜0.01差異極顯著。下同

圖3 MsCIPK2蛋白亞細胞定位

運用實時熒光定量PCR技術分析6個脅迫相關基因在對照和轉基因毛狀根中的表達水平（圖7），在3個過表達毛狀根株系中的表達量是對照（CK）的2倍之多在3個過表達毛狀根株系中均上調，在株系2-6中的上調倍數是對照的13倍，在3個過表達毛狀根株系中均上調，在株系2-2中上調倍數是對照的121倍，表達量變化不明顯，在3個過表達毛狀根株系中均被誘導表達，在株系2-3和2-6中的表達量達到對照的80倍，在3個過表達毛狀根株系中均上調，其中，在株系2-6中的上調倍數是對照的98倍（圖7）。

圖5 4個MsCBLs基因的組織特異性表達

2.7 轉基因MsCIPK2毛狀根生理指標分析

檢測200 mmol·L-1NaCl和20% PEG6000脅迫下，轉基因毛狀根中丙二醛的含量、SOD的活性、脯氨酸含量和可溶性糖含量。結果顯示，轉基因毛狀根的相對丙二醛含量均低于對照（圖8-A和圖8-E)，表明轉基因紫花苜蓿毛狀根遭受的氧化損傷比對照毛狀根??；轉基因毛狀根的SOD活性均高于對照（圖8-B和圖8-F），表明轉基因毛狀根清除活性氧自由基（ROS）的能力增強。轉基因毛狀根的脯氨酸和可溶性糖這兩種化合物的含量也都明顯高于對照（圖8-C、圖8-D、圖8-G和圖8-H），說明它們合成了更多的代謝物以抵御逆境脅迫。

A、B：過量表達MsCIPK2的毛狀根轉化；C：過量表達MsCIPK2毛狀根的PCR鑒定；D：過量表達MsCIK2毛狀根中基因表達量檢測

圖7 過量表達MsCIPK2毛狀根中脅迫相關基因的表達水平

A：200 mmol·L-1 NaCl處理下MDA含量；B 200 mmol·L-1 NaCl處理下SOD活性；C：200 mmol·L-1 NaCl處理下脯氨酸含量；D：200 mmol·L-1 NaCl處理下可溶性糖含量；E：20% PEG處理下MDA含量；F：20% PEG處理下SOD活性；G：20% PEG處理下脯氨酸含量；H：20% PEG處理下可溶性糖含量

3 討論

紫花苜蓿是世界上重要的牧草之一，蛋白質含量豐富，飼喂價值高，但種植過程中遭受的各種逆境脅迫（鹽堿、干旱、低溫等），極大地降低了紫花苜蓿的產量和品質，造成農業經濟的損失。因此，提高紫花苜蓿耐鹽耐旱等非生物脅迫抗性具有十分重要的意義。CIPK作為鈣信號響應逆境途徑中的關鍵因子，在植物生長過程中發揮重要作用。

3.1 MsCIPK2的特征

本研究成功克隆了紫花苜蓿，并對其進行了生物信息學分析，發現序列特征符合大部分物種CIPK基因的共同特征，均具有ATP結合位點、激活環、NAF motif和PPI motif等特征結構域，屬于CIPK家族基因（圖1）。

不同的CIPK基因在植物中的表達模式不同，同一CIPK基因在植物不同組織器官、不同脅迫條件下表達模式也不同，而這種特異性表達暗示它們參與不同組織器官的生長發育，在不同的信號通路中發揮功能。番茄在各組織中特異性表達，葉中表達量最高，其次是莖和根，花和果中表達量較少。番茄可能通過調控根、莖和葉中應對非生物脅迫[21]。已經報道的紫花苜蓿在根、莖、葉、花和種子中均有表達，在根中表達量最高，葉中表達量次之，種子中表達量最低[22]。本研究在紫花苜蓿各組織中均有表達，但在根中表達量最高，在花中表達量最低，在生長期總體表達量呈現由根、莖、葉、花逐級遞減趨勢（圖2），說明和在不同的組織中發揮功能。

蛋白是基因發揮功能的直接執行者，解析蛋白在植物體內的定位是了解基因功能、蛋白調控以及蛋白之間互作的關鍵[23]。本研究通過融合GFP蛋白導入煙草葉片細胞，確定MsCIPK2定位在細胞內質網上（圖3）。前人研究表明，一個CIPK可以與多個CBL相互作用。本試驗利用酵母雙雜驗證了MsCIPK2與MsCBL2、MsCBL6、MsCBL7和MsCBL10具有相互作用，且與MsCBL10相互作用較強（圖4）。、、和的組織表達譜表明，與MsCIPK2相互作用較強的MsCBL10與其表達譜一致，在紫花苜蓿根中表達量最高，花中表達量最低（圖2和圖5）。在Held等[24]研究中，由AKT2YC和YN-CIPK6組裝形成的YFP熒光蛋白主要定位于內質網，同時證明了AKT2只與CIPK6特異性相互作用；該研究還利用酵母雙雜交篩選到CBL4與CIPK6特異性相互作用，并且證明了CBL4的豆蔻?；妥貦磅；碾p重脂質修飾介導了Ca2+-CBL4-CIPK6激活鉀離子通道蛋白AKT2，將CIPK6-AKT2從內質網膜轉到細胞質膜發揮功能。由此可以推測本研究定位于內質網紫花苜蓿MsCIPK2可能通過與其相互作用的MsCBL10調控下游靶蛋白在紫花苜蓿根中發揮功能。

3.2 MsCIPK2在非生物脅迫中的功能

為了進一步研究響應非生物脅迫的分子和生理機制，本研究利用發根農桿菌介導法獲得過量表達的轉基因毛狀根（圖6）。利用qRT-PCR技術分析過表達株系對逆境脅迫響應基因的表達量變化，結果顯示，轉基因毛狀根株系的逆境脅迫響應基因表達倍數均大于對照（圖7）。在非生物脅迫環境下，植物體細胞感知脅迫信號，調控相關基因，合成相應蛋白，相關生理代謝被改變，啟動各種防護機制抵御和適應逆境脅迫[25]。丙二醛是脂質過氧化的產物，是有毒氧產生的指標，與相對膜透性類似，對脅迫耐性同樣有負作用[26]。在脅迫條件下，超氧化物歧化酶（SOD）可以清除超氧陰離子自由基，較高的超氧化物歧化酶活性可以積極地提高植物的應激耐力[27]。脯氨酸和可溶性糖是高等植物中常見的2種重要的親和性滲透調節物質，它們被認為與抗逆性有關。本研究中檢測轉基因毛狀根根系中丙二醛含量、SOD活性、脯氨酸含量和可溶性糖含量均低于或高于對照（圖8）。對過量表達株系進行非生物脅迫響應基因相對表達量分析，對于了解基因在植物體內可能的分子機制、發揮作用的原理以及響應非生物脅迫的信號通路都具有重要非常重要的參考價值。玉米提高了脅迫應答基因的相對表達量，增強了轉基因植株的耐鹽性[28]。過表達大豆毛狀根可以提高鹽脅迫響應基因（和）和氧化脅迫響應基因（和）的相對表達水平[29]。過表達小麥提高了轉基因植株中干旱脅迫相關基因（、和）的相對表達水平，在擬南芥中過表達提高植物的抗旱性，與對照相比，過量表達擬南芥中丙二醛含量相對較低、抗氧化酶活性和脯氨酸含量相對較高[30]。過量表達轉基因煙草在低溫和鹽脅迫下表現出較高的葉綠素和可溶性糖含量、較高的過氧化氫酶活性、較低的過氧化氫和丙二醛含量[31]。因此，過量表達可能通過提高抗逆相關基因的表達水平，產生更多的抵御氧化脅迫的物質，從而提高紫花苜蓿的抗逆性。

綜上所述，在紫花苜蓿響應鹽和干旱脅迫信號通路中發揮重要功能，可作為紫花苜?？鼓嬗N的候選基因，為紫花苜?？鼓嬗N提供理論與實踐支撐。

4 結論

成功克隆，發現其在紫花苜蓿根中表達量最高，在花中表達量最低，蛋白定位于內質網，與MsCBL10具有較強的相互作用。過量表達提高轉基因紫花苜蓿毛狀根中響應非生物脅迫基因的表達水平；與對照相比，過量表達毛狀根丙二醛含量相對較低，POD活性、脯氨酸含量和可溶性糖含量相對較高，具有更高的耐鹽和耐旱性。

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Cloning and Functional Analyses ofin

1Institute of Animal Sciences, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100193;2School of Life Sciences, Inner Mongolia University, Hohhot 010021

【Objective】CIPKs are a group of important protein kinase involved in signaling pathway of plant in response to stress. They can form CBL-CIPK complex with CBL, to activate the expression of related responsive genes to cope with various abiotic stresses in cells. Exploration and study on the molecular mechanism ofgenes in alfalfa in response to abiotic stress will help to reveal the biological basis of stress resistance in alfalfa, and to provide new gene resources for alfalfa breeding with enhanced stress resistance. 【Method】Thegene was cloned by using PCR, the sequence was analyzed by bioinformatics tools, and the expression level of,,,andgenes in various tissues were analyzed by using qRT-PCR. The pCAMBIA1302-GFP-MsCIPK2 vector was transiently expressed in tobacco leaf epidermal cells, and the subcellular localization was observed under laser confocal microscope. Yeast two-hybrid assay was used to analyze interaction between MsCIPK2 and four MsCBLs proteins.was used to generate alfalfa hairy roots over-expressing. qRT-PCRs were used to analyze the expression levels of related genes in transgenic hairy root lines. 【Result】The coding sequence ofgene was obtained by using PCR, and it is 1 230 bp in length, encoding 409 amino acids. The deduced MsCIPK2 protein contained typical ATP binding site, activation loop, NAF motif and PPI motif as for the CIPK family genes. The expression level ofgene was the highest in roots, and the lowest in the flowers of alfalfa. Subcellular localization results showed that MsCIPK2 protein was localized in the endoplasmic reticulum. Yeast two-hybrid assays showed that MsCIPK2 protein interacted with MsCBL2, MsCBL6, MsCBL7 and MsCBL10 proteins, showing stronger interaction with MsCBL10 than with other MsCBLs. The expression levels of,, andwere the highest in roots of alfalfa, and the expression level ofwas the highest in pods. qRT-PCR results showed that the expression levels of abiotic stress-associated genes,,,,andwere significantly up-regulated in hairy roots over-expressing. Under the treatment of 200 mmol·L-1NaCl and 20% PEG, when compared with the control hairy root line, hairy roots over-expressinghad lower MDA content, and higher POD activity, proline content and soluble sugar content. 【Conclusion】MsCIPK2 can interact with CBL protein, and responded to salt and drought stress in roots of alfalfa. Over-expression ofcan improve salt and drought stress resistance in alfalfa, andcan be used as candidate gene for alfalfa breeding with improved abiotic stress resistance.

Alfalfa; CIPK; CBL; abiotic stress

10.3864/j.issn.0578-1752.2022.19.002

2022-04-21；

2022-06-02

國家自然科學基金（31901386，U1906201）、中國農業科學院科技創新工程項目（ASTIP-IAS10）

蘇倩，E-mail：2646335315@qq.com。通信作者龐永珍，E-mail：pangyongzhen@caas.cn。通信作者祁智，E-mail：qizhi@imu.edu.cn

（責任編輯 李莉）