蛋白核小球藻的培養體系優化研究

于梟燕，陳 丹，邢向遠，趙國群，3，王 勇＊

（1.河北科技大學 食品與生物學院，河北 石家莊 050000；2.阿爾格河北生命科學有限公司，河北 辛集052360；3. 河北省發酵技術創新中心，河北 石家莊 050000）

蛋白核小球藻作為一種單細胞綠藻，又被簡稱為小球藻[1]。在農業上，因其可以改善土壤營養狀況，對作物果實提質增產，促進植物種子發芽[2]，小球藻作為綠色化生物肥料受到廣泛關注。此外，因小球藻可以吸附并排除毒素，可以抑制病原菌的生長繁殖。盡管小球藻的應用前景廣闊，目前，小球藻培養仍存在著培養周期長、藻體密度低的技術瓶頸，這進一步提高了生產成本，限制了藻體的高效規模化生產。

本研究聚焦于蛋白核小球藻的培養工藝優化，分析了培養基構成、培養體系的裝液量和接種量、培養基初始pH 等因素對蛋白核小球藻生長的作用影響，進一步優化了培養工藝，為小球藻的高效規模化生產提供了技術支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 藻株與培養基

蛋白核小球藻，由阿爾格河北生命科學有限公司提供。

藻體培養采用BG-11 培養基[3]。

1.1.2 實驗試劑

葡萄糖（分析純）購自天津市百世化工有限公司，乙二胺四乙酸二鈉（分析純）購自天津歐博凱化工有限公司，IAA（分析純）購自上海易恩化學技術有限公司，其它試劑均為市售分析純。

1.2 實驗方法

1.2.1 小球藻種子液的制備

將BG-11 培養基裝入250 mL 三角瓶內（裝液量100 mL），滅菌條件為121 ℃，保溫20 min。將適量蛋白核小球藻斜面培養物接入三角瓶，培養條件為28℃，光照強度2400 Lux，搖床轉速140 rpm。

1.2.2 小球藻培養條件

取小球藻種子液轉接入滅菌后的BG-11 培養基，接種率為10%，發酵培養條件為光照2400 Lux，光暗比24∶0，搖床轉速140 rpm，溫度28 ℃。

1.2.3 碳源對小球藻生長的影響

碳源分別采用等摩爾氮濃度（0.19 mmol/L）的葡萄糖、乙酸鈉、NaHCO3、Na2CO3。進一步采用濃度梯度為1.0～10.0 g/L 的葡萄糖，以確定葡萄糖濃度對小球藻生長的影響。光照培養時間為7 d。

1.2.4 氮源對小球藻生長的影響

在葡萄糖濃度為7.0 g/L 條件下，氮源分別采用等摩爾氮濃度（17.6 mmol/L） 的NH4H2PO4、NH4NO3、(NH4)2SO4、NH4Cl、尿素和NaNO3。進一步采用濃度梯度為0.3～3.0 g/L 的尿素，以確定尿素濃度對小球藻生長的影響。光照培養時間為7 d。

1.2.5 無機鹽對小球藻生長的影響

在7.0 g/L 葡萄糖和1.5 g/L 尿素條件下，采用濃度梯度為25.0～100.0 mg/L 的K2HPO4，光照培養時間為7 d。

在7.0 g/L 葡萄糖、1.5 g/L 尿素和0.075 g/L K2HPO4條件下，采用濃度梯度為35.0～1 000.0 mg/L的MgSO4，光照培養時間為7 d。

1.2.6 植物激素和維生素對小球藻生長的影響

在優化后培養基中分別添加濃度梯度為0.0～10.0 mg/L 的IAA；分別添加濃度梯度為0.0～100.0 μg/L的維生素B12；分別添加濃度梯度為0.0～1000.0 μg/L的生物素；光照培養7 d，以確定IAA、維生素B12及生物素對小球藻生長的影響。

1.2.7 接種量對小球藻生長的影響

當培養基組成為7.0 g/L 葡萄糖，1.5 g/L 尿素，0.075 g/LK2HPO4，0.15 g/LMgSO4，1.0 mg/LIAA，10 μg/L維生素B12和100 μg/L 生物素，其他成分不變時，采用接種量梯度為5～20%，光照培養7 d，以確定接種量對小球藻生長的影響。

1.2.8 培養基初始pH 與初始裝液量對小球藻生長的影響

當培養基組成為7.0 g/L 葡萄糖，1.5 g/L 尿素，0.075 g/L K2HPO4，0.15 g/L MgSO4，1.0 mg/L IAA，10 μg/L 維生素B12和100 μg/L 生物素，其他成分不變時，采用培養基初始pH 梯度為6.0～10.0，250 mL 三角瓶裝液量梯度為80～140 mL，光照培養7 d，以確定培養基初始pH 和裝液量對小球藻生長的影響。

1.2.9 蛋白核小球藻培養條件優化

基于接種量、培養基初始pH 及初始裝液量，開展3 因素3 水平的正交實驗，正交實驗設計見表1。

表1 正交實驗設計表

1.2.10 分析方法

小球藻的生長測定采用血球計數板計數法。將待測藻液搖勻，取8 μL 適當稀釋后藻液沿蓋玻片邊緣緩慢充滿計數室。靜置5 min，放在顯微鏡下進行計數。

2 結果與分析

2.1 碳源對小球藻生長的影響

如圖1（a）所示，當采用葡萄糖和乙酸鈉時，藻細胞密度分別達到了2.71×106和2.09×106個/mL。本研究結果與劉茜等[4]在碳源優化分析中所得結果一致。如圖1（b）所示，當將葡萄糖濃度從1.0 g/L 增加到7.0 g/L，藻細胞密度從2.9×106個/mL 提升到6.75×106個/mL。過高濃度的葡萄糖可能會對小球藻的生長產生抑制效應。

2.2 氮源對小球藻生長的影響

在采用不同氮源條件下（圖1（a）），尿素對小球藻生長促進最明顯，藻細胞密度達到了6.96×106個/mL。在無機氮源中，NaNO3為氮源時，小球藻細胞密度為6.48×106個/mL，略低于尿素條件。尿素作為小球藻的最適氮源這一結論也被葛珍珍等[5]研究報道。因此，本研究采用氮源為尿素。如圖1（b）所示，當尿素濃度由0.3 g/L 提升到1.5 g/L 時，小球藻細胞濃度逐漸增高，當尿素濃度為1.5 g/L 時，藻細胞密度達到7.33×106個/mL，比不添加尿素的對照組提高了34%。當尿素濃度超過1.5 g/L 時，小球藻生物量有所下降。因此，小球藻的最適尿素濃度為1.5 g/L。

2.3 無機鹽對小球藻生長的影響

磷通過作用于小球藻細胞膜、核酸、葉綠素等的合成對小球藻的生長及代謝產生影響[6]。如圖2 所示，當磷源濃度為75.0 mg/L 時，藻細胞密度最高，為7.43×106個/mL，比對照組提高了11.2%。但是當磷源濃度達到100.0 mg/L 時，蛋白核小球藻的生長受到一定抑制，藻細胞密度略有下降。已有研究表明，當磷源濃度低于70.0 mg/L，小球藻的生長速率和生物量與磷源含量呈正相關，且最適磷源濃度為70.0 mg/L[7]。本研究中小球藻最適磷濃度采用75.0 mg/L。

圖2 磷酸氫二鉀和硫酸鎂對小球藻生長的影響

鎂作為葉綠素和某些輔酶的主要構成成分，對小球藻的生長具有重要意義[8]。如圖2 所示，當MgSO4濃度在0～150 mg/L，小球藻細胞密度隨MgSO4濃度的增加而增加，小球藻最大藻體密度為7.88×106個/mL，比對照組提高了15.9%。當硫酸鎂濃度超過150 mg/L 時，小球藻的生長受到一定程度的抑制。本研究中小球藻的最適MgSO4濃度為150 mg/L。

2.4 植物激素和維生素對小球藻生長的影響

2.4.1 IAA 對小球藻生長的影響

IAA 濃度對小球藻生長的影響如圖3 所示，當IAA 濃度在0.05 mg/L～10 mg/L 時，對小球藻的生長均有促進作用。當IAA 濃度低于1.0 mg/L 時，小球藻的細胞密度隨著IAA 濃度的增加而增大，當IAA 濃度為1.0 mg/L 時，小球藻細胞密度最高達8.13×106個/mL，為對照組的1.07 倍。然而，當IAA 濃度大于1.0 mg/L 時，小球藻的生長受到一定抑制。本研究確定最適IAA 濃度為1.0 mg/L。

圖3 IAA、維生素B12 和維生素B7 對小球藻生長的影響

2.4.2 維生素B12對小球藻生長的影響

王士倫等[9]發現添加適量的維生素B12能夠促進小球藻的生長和葉綠素含量的提升。由圖3 可知，在維生素B12濃度為0～10 μg/L 時，蛋白核小球藻生物量隨著維生素B12濃度的增大而增加，小球藻細胞密度最高為9.73×106個/mL，比對照組提高了12%。當維生素B12濃度大于10 μg/L 時，其對小球藻的促進效果有所下降。本研究確定維生素B12最適添加量為10 μg/L。

2.4.3 生物素對小球藻生長的影響

生物素（也稱為Vitamin H 或B7）作為輔因子對生理代謝產生重要意義[10]。由圖3 可知，在生物素濃度為低于100 μg/L 時，蛋白核小球藻的生物量隨著生物素濃度的增加而增大，蛋白核小球藻的生物量最高為1.08×107個/mL，比對照組提高了15.6%。當生物素濃度超過100 μg/L 時，小球藻的生物長受抑制。本研究中生物素的最適添加量為100 μg/L。

2.5 接種量對小球藻生長的影響

由圖4 可知，當小球藻的接種量為5%時，藻細胞生長緩慢，生物量較其他接種組低。當接種量為10%時，小球藻的生物量最高，為1.04×107個/mL，比5%接種量組提高了14.7%。當接種量大于10%，小球藻的生物量隨接種量增大而逐漸降低。本研究中小球藻培養的最適接種量為10%。

圖4 接種量、培養基初始pH 及裝液量對小球藻生長的影響

2.6 培養基初始pH 及初始裝液量對小球藻生長的影響

如圖4 所示，當培養基初始pH 為7 時，小球藻生物量最高，為1.05×107個/mL。當pH 達到10 時，小球藻的生物量最低，較pH7 處理組下降了28.3%。隨著裝液量的增大，小球藻的細胞密度呈現先升高后降低的趨勢。當裝液量為100 mL 時，藻細胞密度達1.1×107個/mL。顯然，裝液量過大會造成限制氣體傳質，裝液量過低又會導致底物濃度受限。

2.7 蛋白核小球藻的培養條件優化

在以上基礎上，采用葡萄糖7.0 g/L、尿素1.5 g/L、K2HPO475 mg/L 及MgSO4150 mg/L，進行3 因素3 水平的正交優化實驗（表2）。

表2 正交實驗設計及結果

由表3 可知，培養基初始pH 和接種量對蛋白核小球藻細胞密度影響顯著。最優培養條件為接種量10%，培養基初始pH8，裝液量100 mL。最優條件下，蛋白核小球藻的生物量為1.16×107個/mL。

表3 方差分析表

2.8 小球藻在優化條件下的生長曲線

將小球藻的種子液接種至優化培養基中，在優化培養條件下進行發酵培養（圖5）。當培養時間為10d時，小球藻的藻細胞數達到峰值為1.37×107個/mL。培養時間超過10d 后，小球藻細胞密度達到穩定。魏東等[11]發現小球藻培養10 天后生長基本穩定，與本研究結果一致。因此，本研究中小球藻在優化條件下發酵周期為10d。

圖5 小球藻在優化條件下的生長曲線

3 結論

本研究確定了蛋白核小球藻培養的最適碳氮源及濃度，闡明了無機鹽、植物激素和微生素對微藻生長的影響。在優化培養基構成為葡萄糖7.0 g/L、尿素1.5 g/L、K2HPO475 mg/L、MgSO4150 mg/L，IAA 1 mg/L、維生素B1210 μg/L 和生物素100 μg/L 條件下，小球藻生物量達到1.08×107個/mL。確定了最佳培養條件為接種量10%，培養基初始pH8，裝液量100 mL。最佳條件下，蛋白核小球藻的生物量達到1.16×107個/mL，且在此條件下小球藻的發酵周期為10 d。