999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

腫瘤微環(huán)境中免疫細胞的代謝研究進展

2022-10-21 14:52:08林家俞秦潔潔蔣玲曦
關(guān)鍵詞:途徑環(huán)境功能

林家俞,秦潔潔,蔣玲曦

上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬瑞金醫(yī)院普外科胰腺疾病診療中心,上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院胰腺疾病研究所,上海 200025

腫瘤微環(huán)境是一個復(fù)雜的、具有高度異質(zhì)性的動態(tài)綜合系統(tǒng),主要由腫瘤細胞、腫瘤相關(guān)成纖維細胞(cancer-associated fibroblasts,CAFs)、腫瘤相關(guān)免疫細胞和微血管等成分組成。

多年的研究證明,代謝途徑對腫瘤微環(huán)境中腫瘤細胞的增殖、轉(zhuǎn)移與免疫逃逸具有重要作用[1]。在腫瘤發(fā)生與進展過程中,糖酵解的激活、脂質(zhì)代謝的增加、線粒體生物合成增強等代謝途徑重塑了局部腫瘤微環(huán)境,改變了腫瘤微環(huán)境中免疫細胞的代謝適應(yīng)性[2]。腫瘤微環(huán)境中細胞固有代謝紊亂共同導(dǎo)致營養(yǎng)物質(zhì)的消耗、環(huán)境pH酸化、缺氧及調(diào)節(jié)性代謝產(chǎn)物的產(chǎn)生,進而影響抗腫瘤免疫反應(yīng),強化腫瘤細胞對免疫治療的抵抗,促進免疫檢查點分子的過度表達和腫瘤轉(zhuǎn)移[3-4]。

腫瘤微環(huán)境中免疫細胞的代謝狀態(tài)是影響其發(fā)揮正常免疫應(yīng)答的關(guān)鍵因素,因此本綜述擬總結(jié)腫瘤微環(huán)境中主要免疫細胞的代謝途徑,概括參與腫瘤免疫反應(yīng)的免疫細胞的代謝特征,歸納免疫細胞代謝途徑改變的分子機制,以期為通過靶向免疫細胞代謝途徑提高腫瘤免疫療效提供新思路。

1 腫瘤免疫微環(huán)境

浸潤到腫瘤內(nèi)部的淋巴細胞介導(dǎo)了免疫抑制的腫瘤微環(huán)境,幫助腫瘤細胞實現(xiàn)免疫逃逸,促進腫瘤的惡性發(fā)展。腫瘤免疫微環(huán)境由一系列不同的細胞類型構(gòu)成(圖1),包括T 淋巴細胞、B 淋巴細胞、腫瘤相關(guān)巨噬細胞(tumor-associated macrophages,TAMs)、自然殺傷細胞(natural killer cells,NKs)、樹突狀細胞(dendritic cells,DCs)、腫瘤相關(guān)中性粒細胞(tumor-associated neutrophils,TANs)和髓源性抑制細胞(myeloid-derived suppressor cells,MDSCs)等。同時,免疫細胞代謝途徑的改變使其功能具有兩面性:一方面,浸潤至腫瘤內(nèi)部的免疫細胞在腫瘤入侵的初始階段發(fā)揮抗腫瘤作用;另一方面,在腫瘤進展過程中,部分免疫細胞逐漸轉(zhuǎn)變成促腫瘤表型,發(fā)揮免疫抑制功能,協(xié)助腫瘤免疫逃逸及遠處轉(zhuǎn)移[5]。

圖1 腫瘤免疫微環(huán)境主要的免疫細胞Fig 1 Main immune cells in tumor immune microenvironment

由癌細胞代謝異常釋放的各種生化分子重塑腫瘤微環(huán)境,影響免疫細胞的正常免疫反應(yīng)。代謝串擾是癌細胞在不利條件下維持生長的一種方式。癌細胞可通過釋放犬尿氨酸和乳酸等機制逃避細胞毒性T淋巴細胞介導(dǎo)的殺傷作用,從而增強調(diào)節(jié)性T細胞(regulatory T cells,Tregs)和MDSCs的免疫抑制功能[6]。此外,癌細胞通過對營養(yǎng)物質(zhì)的惡性競爭實現(xiàn)快速增長的目的,如:通過Warburg效應(yīng)滿足快速增殖的生物能量和生物合成需求[7]。因此,腫瘤細胞的代謝多樣性將腫瘤微環(huán)境塑造為一個酸性、缺氧、營養(yǎng)物質(zhì)匱乏的場所,進而影響免疫細胞的代謝途徑,限制免疫細胞的抗腫瘤效應(yīng)[8]。

2 固有免疫細胞代謝

2.1 TAMs

巨噬細胞是重要的固有免疫細胞,主要通過吞噬及消化細胞碎片和病原體,并激活其他免疫細胞對抗病原體入侵來發(fā)揮其功能。而浸潤在腫瘤組織中的TAMs 具有高度的可塑性和異質(zhì)性[9]。腫瘤早期,Toll 樣受體(toll-like receptors,TLR)激動劑等促炎細胞因子可促進TAM 向M1 型極化,M1 型巨噬細胞產(chǎn)生的一氧化氮(nitric oxide,NO) 和活性氧(reactive oxygen species,ROS)可顯著抑制腫瘤細胞增殖,殺死腫瘤細胞[10]。腫瘤進展期,白細胞介素-4(interleukin-4,IL-4)與集落刺激因子1(colony stimulating factor 1,CSF1)誘導(dǎo)TAMs向M2型極化,M2 型巨噬細胞分泌表皮細胞生長因子(epidermal growth factor,EGF)、基質(zhì)金屬蛋白 酶-9 (matrix metalloprotein 9,MMP-9)等蛋白抑制抗腫瘤效應(yīng),促進腫瘤的進展[11]。

2 種極化形式的巨噬細胞表現(xiàn)出不同的代謝模式。M1 型巨噬細胞激活后,主要依賴于糖酵解代謝途徑供能,并通過磷酸戊糖途徑(glycolysis pentose phosphate pathway,PPP)產(chǎn)生ROS,發(fā)揮抗腫瘤效應(yīng)[12-13]。腫瘤微環(huán)境缺氧環(huán)境可誘導(dǎo)M1 型巨噬細胞的 缺 氧 誘 導(dǎo) 因 子1α (hypoxia inducible-factor 1α,HIF1α)激活上調(diào),誘導(dǎo)糖酵解基因如葡萄糖轉(zhuǎn)運體1 (glucose transporter 1,GLUT1)、 己 糖 激 酶2(hexokinase 2,HK2)過度表達。同時,雷帕霉素靶蛋白信號(mechanistic target of rapamycin,mTOR)通過NOR 樣受體熱蛋白結(jié)構(gòu)域相關(guān)蛋白3(NODlike receptor thermal protein domain associated protein 3,NLRP3)炎癥小體以己糖激酶依賴性方式促使M1 型細胞完成糖酵解獲取能量[14]。此外,M1 型巨噬細胞還可通過核因子κB(nuclear factor κB,NFκB)途徑下調(diào)碳水化合物激酶樣蛋白(carbohydrate kinase-like protein,CARKL)增加PPP 的代謝水平,產(chǎn)生大量還原型輔酶Ⅱ(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADPH)。NADPH 不僅可用于維持其自身氧化還原的平衡以及生物合成代謝,還可進一步促進ROS和NO的產(chǎn)生[15]。

相反,腫瘤微環(huán)境中發(fā)揮免疫抑制功能的M2 型巨噬細胞依賴于氧化磷酸化 (oxidative phosphorylation,OXPHOS)代謝途徑供能[16]。而脂肪酸氧化(fatty acid oxidation,F(xiàn)AO)也是其供能途徑,該過程以低水平糖酵解為代價,高表達CD36,上調(diào)FAO 水平,從而促進線粒體OXPHOS 過程[17]。此外,M2 型細胞合成大量精氨酸酶(arginase,ARG)和吲哚胺2,3-雙加氧酶1(indoleamine 2,3-dioxygenase 1,IDO1),消耗精氨酸與色氨酸,導(dǎo)致免疫功能障礙[18]。腫瘤微環(huán)境中的細胞因子也可以影響TAMs的分化與功能。CSF1是TAMs發(fā)揮免疫抑制功能的一個重要細胞因子。腫瘤細胞在快速增殖過程中釋放大量的CSF1 至細胞外,CSF1 可與TAMs 上的受體結(jié)合,招募其至腫瘤細胞周圍,誘導(dǎo)其FAO水平上升,促使其極化為M2型巨噬細胞[19]。

2.2 TANs

中性粒細胞來源于髓系祖細胞,在骨髓中發(fā)育成熟后,在細胞因子IL-8的趨化下,其釋放至血液參與固有免疫,調(diào)節(jié)適應(yīng)性免疫。腫瘤微環(huán)境中,一方面在干擾素-β(interferon-β,IFN-β)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor,TNF-α)作用下,TANs 向具有高免疫活性的抗腫瘤N1 型極化,促進CD8+T 細胞活化;另一方面,轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)、IL-8 等促使TANs 向促腫瘤的N2 型極化。N2 型細胞釋放ARG1、組織蛋白酶、促血管生成細胞因子等,抑制腫瘤免疫,加快腫瘤進展。

TANs 依賴于糖酵解代謝途徑供能[20]。TANs 中GLUT1表達水平上調(diào),但在敲除GLUT1基因后,TANs 攝取葡萄糖的能力下降,存活率顯著降低[21]。PPP 所生成的NADPH 是NADPH 氧化酶的輔助因子,可以輔助TANs發(fā)揮抗腫瘤免疫功能。研究[22]表明,腫瘤細胞通過干細胞因子(stem cell factor,SCF)/c-Kit信號轉(zhuǎn)導(dǎo)誘導(dǎo)TANs產(chǎn)生氧化表型,增強其線粒體的OXPHOS功能,使得TANs即使在葡萄糖不足的條件下,也可通過FAO 來維持NADPH 的產(chǎn)生,維持ROS水平,發(fā)揮免疫抑制功能。

2.3 NKs

NKs作為人體抵抗腫瘤的第一道防線,可在靶細胞表面釋放穿孔素導(dǎo)致細胞穿孔,使顆粒酶b 進入腫瘤細胞誘導(dǎo)凋亡,從而非特異性殺傷腫瘤細胞。這個過程既不需要抗原致敏與抗體參與,也無組織相容性復(fù)合體(major histocompatibility complex,MHC)限制,并且還能通過分泌細胞因子,促進適應(yīng)性免疫細胞的抗腫瘤作用。

NKs 活化后,胞內(nèi)的固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白(sterol regulatory element- binding protein,SREBP)與雷帕霉素靶蛋白復(fù)合物1 (mechanistic target of rapamycin complex 1,mTORC1)表達上調(diào),增強有氧糖酵解與OXPHOS 代謝途徑水平[23]。轉(zhuǎn)錄因子c-Myc 可顯著提高NKs 的代謝水平;若c-Myc 蛋白缺陷,NKs將減少糖代謝關(guān)鍵酶和線粒體酶的表達,導(dǎo)致免疫功能發(fā)生障礙[24]。乳酸能干擾NKs 的代謝。乳酸在腫瘤微環(huán)境的積累使NKs 胞內(nèi)pH 降低,導(dǎo)致pH 依賴性線粒體的應(yīng)激反應(yīng)與代謝功能障礙,ROS不斷累積,促使NKs 發(fā)生凋亡[25]。過度脂質(zhì)代謝也會影響NKs 的正常功能。脂質(zhì)轉(zhuǎn)運蛋白表達上調(diào)導(dǎo)致細胞過度攝取脂肪酸,從而激活過氧化物酶體增殖激活受體(peroxisome proliferators-activated receptor,PPAR)-γ/PPAR-δ信號,抑制NKs的代謝活性并產(chǎn)生細胞毒性[26]。

2.4 DCs

DCs在固有免疫識別病原體、啟動適應(yīng)性免疫細胞活化中發(fā)揮關(guān)鍵作用。在腫瘤微環(huán)境中,DCs接收并整合由細胞因子、損傷相關(guān)分子模式(damageassociated molecular patterns,DAMPs) 等受體感知的環(huán)境信號,通過MHC 分子提呈抗原肽,進一步誘導(dǎo)T細胞活化和分化,啟動適應(yīng)性免疫反應(yīng),同時還可分泌細胞因子和生長因子,增強T 細胞、NKs等免疫細胞活性,建立完整的抗腫瘤免疫反應(yīng)。

不同時期的DCs 代謝狀態(tài)不一。未成熟的DCs主要依賴于OXPHOS 代謝途徑;當TLR 激活觸發(fā)DCs活化及發(fā)育成熟后,DCs的代謝途徑從OXPHOS轉(zhuǎn)變?yōu)樘墙徒?,以支持其代謝需求與抗原提呈功能[27]。 磷 酸 肌 醇 3- 激 酶- 蛋 白 激 酶 B(phosphatidylinositol 3 kinase-protein kinase B,PI3KAKT)、TANK 結(jié) 合 激 酶1 (tank binding kinase 1,TBK1)和κB 激酶ε 抑制劑(inhibitor of κB kinase ε,IKKε)通路信號驅(qū)動DCs 糖酵解代謝。隨著DCs 活化,一氧化氮合酶2(nitric oxide synthase 2,NOS2)誘導(dǎo)生成的NO降低OXPHOS代謝水平,阻止細胞色素C氧化酶活化,并激活PI3K-AKT途徑,抑制AMP依賴的蛋白激酶途徑(adenosine 5'-monophosphate activated protein kinase,AMPK)[28]。

細胞因子可調(diào)節(jié)DCs的生物學(xué)功能。腫瘤細胞通過大量釋放巨噬細胞清道夫受體1 (macrophage scavenger receptor 1,MSR1)等細胞因子,使得DCs胞內(nèi)脂質(zhì)異常積累,發(fā)生抗原提呈功能障礙,降低對T細胞的誘導(dǎo)活化功能[29]。而通過靶向MSR1、乙酰輔酶A 羧化酶(acetyl CoA carboxylase,ACC)或Xbox 結(jié)合蛋白1(X-box binding protein 1,XBP1)可調(diào)節(jié)DCs胞內(nèi)的脂質(zhì)積累,恢復(fù)DCs的免疫活性[30]。

2.5 MDSCs

MDSCs 是由未成熟的,無法分化為粒細胞、巨噬細胞和DCs的髓系祖細胞組成的免疫抑制性先天細胞群。生長因子如粒細胞集落刺激因子(granulocyte colony stimulating factor,G-CSF)和血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)可促進MDSCs 增殖,并抑制其最終分化成巨噬細胞、DCs或粒細胞;而促炎細胞因子如IL-4和IL-6則可促進MDSCs 的病理活化。MDSCs 通過釋放NO 與ROS,產(chǎn)生IL10、IFN-γ 等免疫調(diào)節(jié)細胞因子等方式抑制T細胞活性。

在缺氧、營養(yǎng)物質(zhì)匱乏的腫瘤微環(huán)境中,MDSCs 通過糖代謝與OXPHOS 代謝途徑適應(yīng)環(huán)境,維持免疫抑制作用[31]。研究[32]表明,腫瘤微環(huán)境中的糖酵解中間代謝物磷酸烯醇丙酮酸(phosphoenolpyruvate,PEP)可防止過量ROS 產(chǎn)生,保護MDSCs逃脫ROS誘導(dǎo)的細胞凋亡,促進MDSCs存活與分化。脂質(zhì)代謝可調(diào)節(jié)MDSCs 的免疫功能。腫瘤微環(huán)境中的乳酸增強了MDSCs 的由CD36 介導(dǎo)的脂質(zhì)攝取能力,使FAO 替代糖酵解成為MDSCs 的主要能量來源。CD36缺失或FAO抑制會破壞MDSCs免疫抑制功能,提高化學(xué)治療和免疫治療的效果,延緩腫瘤生長[33]。

3 適應(yīng)性免疫細胞代謝

3.1 T細胞

CD4+或CD8+T 細胞通過表達T 細胞受體(T cell receptor,TCR)α/β,識別腫瘤抗原和自身抗原,在癌癥或自身免疫性疾病的免疫反應(yīng)過程中發(fā)揮關(guān)鍵作用。經(jīng)同源抗原刺激后,初始CD8+T 細胞分化為細胞毒性效應(yīng)細胞和長期記憶細胞,初始CD4+T 細胞分化為輔助性T 細胞1(hepler T cell 1,Th1)、Th2、Th17、濾泡輔助性T 細胞(follicular helper T cell,Tfh)、Tregs 和長期記憶細胞。其中,Tregs 是一類以高表達叉頭框蛋白P3 (forkhead box protein P3,F(xiàn)OXP3)、CD25、CD4 為主要特征的免疫抑制性T 細胞。Tregs 常在腫瘤中積聚,通過脂質(zhì)代謝與OXPHOS 途徑為免疫反應(yīng)供能,維持腫瘤微環(huán)境的免疫抑制環(huán)境,促進腫瘤浸潤與轉(zhuǎn)移[34-35]。

在腫瘤免疫微環(huán)境中,一方面免疫受體、信號蛋白和轉(zhuǎn)錄因子等會促進T細胞的活化,另一方面代謝途徑改變會影響T細胞存活、增殖、分化、功能發(fā)揮等重要生物學(xué)過程[36]?;赥 細胞作為抗腫瘤免疫中的關(guān)鍵免疫細胞,下面從葡萄糖代謝、脂質(zhì)代謝、氨基酸代謝、線粒體調(diào)控4 個代謝途徑來闡述腫瘤微環(huán)境中T細胞的代謝特征。

3.1.1 葡萄糖代謝 TCR 識別腫瘤抗原后,在CD28介導(dǎo)的共刺激下,激活PI3K-AKT-mTOR 通路,上調(diào)HIF1α 和c-Myc 等轉(zhuǎn)錄因子的表達,增加GLUT1 蛋白、代謝酶和氨基酸轉(zhuǎn)運蛋白的表達,增強糖酵解與谷氨酰胺代謝水平[37-38]。在腫瘤微環(huán)境中,葡萄糖的匱乏抑制TCR 依賴性Ca2+和NFAT 信號的激活,使得CD8+T 細胞無法正常分化,從而導(dǎo)致抗腫瘤功能障礙[39]。而且,糖酵解的關(guān)鍵酶之一烯醇化酶-1(enolase-1,ENO-1)可調(diào)節(jié)FOXP3外顯子2 剪接變體的表達,誘導(dǎo)Tregs 分化與功能的發(fā)揮[40]。此外,乳酸是一個調(diào)節(jié)T細胞增殖、功能發(fā)揮等生物學(xué)行為的重要因素。乳酸通過阻止C-X-C 趨化因子受體3(C-X-C motif chemokine receptor 3,CXCR3)與其配體結(jié)合,抑制Th 細胞的功能,降低抗腫瘤免疫活性[41]。單羧酸轉(zhuǎn)運體(monocarboxylate transporter,MCT)是乳酸的轉(zhuǎn)運體,Tregs 可通過MCT1 攝取腫瘤微環(huán)境中的乳酸,將乳酸轉(zhuǎn)化為蘋果酸與檸檬酸后轉(zhuǎn)移至線粒體中參與三羧酸循環(huán)(tricarboxylic acid cycle,TCA),增強程序性死亡受體1(programmed cell death protein 1,PD-1)表達與Treg的免疫抑制功能,降低免疫治療效果[42-43]。

3.1.2 脂質(zhì)代謝 脂質(zhì)是一種不可或缺的營養(yǎng)物質(zhì)。調(diào)節(jié)細胞脂質(zhì)合成與膽固醇攝取的關(guān)鍵蛋白固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白1 (sterol regulatory element-binding protein,SREBP1)和SREBP2 在T 細胞的細胞膜合成過程中發(fā)揮重要作用。缺失SREBP1 與SREBP2 顯著抑制CD8+T 細胞的增殖、代謝與抗腫瘤活性[44]。此外, 乙酰輔酶A 乙酰轉(zhuǎn)移酶1 (acetyl-CoA acetyltransferase 1,ACAT1)是一種關(guān)鍵的膽固醇酯化酶,抑制ACAT1 的表達可降低CD8+T 細胞膽固醇酯化,增強TCR 的聚集和信號轉(zhuǎn)導(dǎo),提高T 細胞的增殖與抗腫瘤活性[45]。脂肪酸代謝可影響T 細胞的發(fā)育、分化和功能的發(fā)揮。CD36 是Tregs 中維持線粒體呼吸的一個關(guān)鍵因素。Tregs 高表達CD36,增強長鏈脂肪酸的攝取能力,維持PPAR-β 信號依賴性線粒體的適應(yīng)性[46]。mTORC1 信號通路可增強Tregs 中的脂質(zhì)和膽固醇代謝,提高Tregs 對細胞外游離脂肪酸的攝取, 上調(diào)誘導(dǎo)共刺激分子(inducible co-stimulator,ICOS)等細胞增殖和免疫抑制相關(guān)基因的表達,發(fā)揮免疫抑制功能[47]。腫瘤微環(huán)境中, 腫瘤細胞高表達的前列腺素E2(prostaglandin E2,PGE2)可增加Tregs 特異性轉(zhuǎn)錄因子FOXP3 的表達,促進初始T 細胞分化成Tregs,增強腫瘤免疫抑制作用[48]。

3.1.3 氨基酸代謝 氨基酸是細胞維持高代謝水平所必需的營養(yǎng)物質(zhì)之一。T 細胞依賴氨基酸代謝途徑合成自身所需蛋白質(zhì)與核苷酸。色氨酸是一種必需氨基酸,其在腫瘤微環(huán)境的濃度決定了T細胞的反應(yīng)強度和抗腫瘤效應(yīng)的有效性。腫瘤細胞高表達的IDO可降解色氨酸為犬尿氨酸,導(dǎo)致腫瘤微環(huán)境中色氨酸缺乏。一般性調(diào)控阻遏蛋白激酶2 (general control nonderepressible 2,GCN2)是一種應(yīng)激反應(yīng)激酶,參與調(diào)控多種生物學(xué)過程。色氨酸的缺失可激活CD8+T 細胞中的GCN2,下調(diào)CD3ζ 鏈,導(dǎo)致CD8+T細胞周期停滯和細胞毒效應(yīng)受損[49]。L-精氨酸是T細胞生命周期中所必需的一種氨基酸,不僅能誘導(dǎo)T細胞由糖酵解向OXPHOS 轉(zhuǎn)變,還能進一步促進T細胞存活與記憶T細胞產(chǎn)生[50]。甲硫氨酸也是調(diào)節(jié)T細胞功能的一種重要氨基酸。腫瘤細胞通過上調(diào)甲硫氨酸轉(zhuǎn)運蛋白的表達水平,增加甲硫氨酸的攝取能力,降低腫瘤微環(huán)境中的甲硫氨酸水平,減少甲基供體,從而影響CD8+T細胞組蛋白H3亞基第79位賴氨酸(H3K79)的甲基化程度,造成CD8+T 細胞的抗腫瘤功能障礙[51]。

3.1.4 線粒體調(diào)控 線粒體對T 細胞的調(diào)控至關(guān)重要。TCR 可增強線粒體的生物活性和代謝重構(gòu),這個過程是滿足T 細胞活化和代謝要求所必需的[52]。腫瘤微環(huán)境的缺氧環(huán)境可通過下調(diào)MYC表達水平來促進線粒體結(jié)構(gòu)損傷并減少ATP 的產(chǎn)生,從而誘導(dǎo)T細胞耗竭(T cell exhaustion,TExh),使CD8+T 細胞發(fā)生抗腫瘤功能障礙[53]。另外,在CD8+T 細胞由效應(yīng)性T細胞向記憶性T細胞轉(zhuǎn)化過程中,SENP1-Sirt3軸的激活可顯著降低CD8+T 細胞線粒體中的乙酰化水平,增加線粒體融合和OXPHOS 代謝水平,增強記憶性T 細胞的形成和與存活,促進抗腫瘤免疫活性[54]。過氧化物激活受體1α(PPAR γ coactivator-1α,PGC1α)是線粒體生物發(fā)生的關(guān)鍵調(diào)控因子。在免疫抑制微環(huán)境中,CD8+T 細胞內(nèi)線粒體處于功能抑制狀態(tài),而增強CD8+T 細胞中PGC1α 的表達,可促進CD8+T 細胞中線粒體的生物合成,挽救線粒體功能,逆轉(zhuǎn)線粒體功能抑制狀態(tài),增強抗腫瘤效應(yīng)[55]。

3.2 B細胞

近些年來,腫瘤微環(huán)境中T細胞的腫瘤免疫作用已被廣泛報道,但有關(guān)B 細胞的研究則較少。B 細胞在B 細胞受體(B cell receptor,BCR)的激活下活化為漿細胞,浸潤于腫瘤內(nèi)部,產(chǎn)生的大量細胞因子與抗體可通過驅(qū)動抗體依賴性細胞毒性(antibodydependent cell-mediated cytotoxicity,ADCC)和吞噬作用以及補體激活來發(fā)揮抗腫瘤免疫作用[56]。此外,B 細胞可促進腫瘤相關(guān)三級淋巴結(jié)構(gòu)(tertitary lymphoid structures,TLS)的形成。TLS 支持腫瘤特異性B細胞的進一步成熟和亞型轉(zhuǎn)換,促進腫瘤特異性T細胞反應(yīng)的進展[57]。

與T細胞類似,經(jīng)BCR刺激后,幼稚B細胞的葡萄糖攝取增加,而且位于生發(fā)中心的B細胞糖酵解活性明顯增強[58]。OXPHOS對B細胞的活化至關(guān)重要。雖然已有研究[59]表明活化的B 細胞會增加葡萄糖的攝取,以滿足自身需要,但在缺乏葡萄糖條件下,B細胞的生長與功能未受影響。而使用寡霉素抑制OXPHOS 代謝途徑將明顯抑制B 細胞的生長和分化。截至目前,對調(diào)控B細胞代謝的具體分子機制仍不清楚,還需進一步的研究。

4 基于免疫細胞代謝的藥物研究

在腫瘤免疫微環(huán)境影響下,免疫細胞自發(fā)產(chǎn)生耐受表型相關(guān)的代謝適應(yīng),如T細胞在腫瘤微環(huán)境中主要依賴有氧糖酵解和谷氨酰胺分解代謝來供能。抑制代謝適應(yīng)可提高免疫細胞的抗腫瘤效應(yīng),因此,基于腫瘤微環(huán)境的代謝特征,以糖酵解、氨基酸與脂質(zhì)代謝途徑為靶向的治療可恢復(fù)抗腫瘤免疫細胞的功能,增強抗腫瘤效應(yīng)。

腫瘤細胞在腫瘤微環(huán)境中通過糖酵解不斷積累乳酸,從而激活免疫細胞和內(nèi)皮細胞上的G蛋白偶聯(lián)受體81(G-protein-coupled receptor 81,GPR81),促進血管生成和腫瘤細胞的免疫逃逸[60]。MCT1與MCT4抑制劑可增加細胞內(nèi)乳酸水平,減少糖酵解,促進腫瘤細胞的死亡,并可增加T 細胞IL-2 和IFN-γ 分泌,表明MCT 抑制劑可降低腫瘤細胞增殖并促進T 細胞活化[61]。目前,MCT的抑制劑AZD3965正在進行Ⅰ期臨床試驗(NCT01791595),但在試驗中發(fā)現(xiàn),晚期腫瘤患者口服后,尿乳酸水平升高,并且出現(xiàn)劑量依賴性的可逆的視網(wǎng)膜功能障礙[62]。未來,AZD3965的臨床療效與安全性還需進一步的驗證。

氨基酸是細胞代謝過程中不可或缺的部分,其中谷氨酰胺可作為靶點調(diào)節(jié)腫瘤進展和免疫反應(yīng)。在乳腺癌模型中,應(yīng)用谷氨酰胺抑制劑JHU-083可降低腫瘤微環(huán)境中CSF 水平,減少MDSCs 的募集,并促進其向M1 型巨噬細胞轉(zhuǎn)化,減緩腫瘤生長,抑制腫瘤和MDSCs 的IDO 表達,導(dǎo)致犬尿氨酸水平下降[63]。在小鼠結(jié)直腸癌模型中,JHU-083 通過抑制谷氨酰胺代謝,提高CD8+T 細胞的活性,增強抗腫瘤免疫效應(yīng),誘導(dǎo)腫瘤消退,提高小鼠存活率[64]。目前,靶向谷氨酰胺代謝的DRP-104與靶向程序性死亡受體配體1(programmed death ligand 1,PD-L1)的阿特珠單抗聯(lián)合用藥現(xiàn)在已進入臨床試驗(NCT04471415),用于晚期非小細胞型肺癌與頭頸部鱗狀細胞癌患者的治療。

腫瘤細胞依賴于脂肪酸從頭合成來供給能量,因此,脂肪酸合酶(fatty acid synthase,F(xiàn)ASN)可視為潛在的治療靶點。 再刺激誘導(dǎo)的細胞死亡(restimulation-induced cell death,RICD)是TCR 重新激活后在效應(yīng)T 細胞中觸發(fā)的凋亡途徑。在抑制FASN 的條件下,腫瘤微環(huán)境中的T 細胞可避免因反復(fù)受到TCR 刺激而發(fā)生RICD,從而增強T 細胞的抗腫瘤作用[65]。TVB-2640是迄今第一個進入臨床研究的FASN 抑制劑,正處于多項實體瘤的臨床試驗中,如非小細胞型肺癌(NCT03808558)、結(jié)直腸癌(NCT02980029) 等 。 目 前 的 臨 床 研 究(NCT02223247)[66]表明,TVB-2640 與紫杉醇聯(lián)合療法在多種腫瘤類型如KRAS突變的非小細胞型肺癌、卵巢癌和乳腺癌中均有療效,部分患者可獲得完全緩解或部分緩解。

對免疫細胞代謝途徑的深入研究有助于更好地理解腫瘤免疫微環(huán)境內(nèi)的代謝。表1 總結(jié)了腫瘤免疫微環(huán)境中主要免疫細胞的代謝途徑,但是針對單一代謝酶或轉(zhuǎn)運體無法從整體水平來靶向腫瘤免疫治療。靶向免疫細胞代謝途徑的治療、放射治療、化學(xué)治療以及免疫治療之間更深入的聯(lián)合運用,將會取得更好的臨床效果。

表1 腫瘤免疫微環(huán)境中主要的免疫細胞及其主要的代謝途徑Tab 1 Main immune cells and their main metabolic pathways in the tumor immune microenvironment

5 結(jié)語與展望

腫瘤微環(huán)境作為腫瘤細胞賴以生存的基礎(chǔ),為腫瘤細胞的增殖、轉(zhuǎn)移、侵襲及其他生命活動提供物質(zhì)基礎(chǔ)。腫瘤微環(huán)境的免疫狀態(tài)是影響腫瘤進展的重要因素。腫瘤細胞可以通過營養(yǎng)競爭、分泌細胞因子及釋放代謝產(chǎn)物等途徑塑造免疫抑制的微環(huán)境,調(diào)控免疫細胞的代謝,進一步影響免疫細胞發(fā)育、分化與功能發(fā)揮,使其往促腫瘤型轉(zhuǎn)化,極大限制了抗腫瘤免疫活性,這個過程有助于促進腫瘤細胞本身的免疫逃逸。因此,研究腫瘤微環(huán)境下免疫細胞通過特定代謝途徑獲取足夠的能量以維持其抗腫瘤活性的機制就顯得尤為重要。

目前,基于腫瘤微環(huán)境代謝的研究,可以聚焦免疫抑制的腫瘤微環(huán)境中免疫細胞的代謝需求,靶向效應(yīng)免疫細胞代謝,選擇性調(diào)節(jié)免疫細胞的極化與效應(yīng)功能,將免疫應(yīng)答從促腫瘤型轉(zhuǎn)化為抑腫瘤型;同時與抗腫瘤及針對多靶點的免疫治療藥物聯(lián)合應(yīng)用,可避免適應(yīng)性耐藥,并顯著改善腫瘤的預(yù)后和生存。未來,對于腫瘤及其內(nèi)部免疫微環(huán)境層面的適應(yīng)性代謝改變的進一步研究和認識可能會發(fā)現(xiàn)新的高特異性的靶點,而且,揭示腫瘤微環(huán)境細胞間相互作用與驅(qū)動代謝變化的分子機制,實現(xiàn)相關(guān)研究的臨床轉(zhuǎn)化,對增強腫瘤免疫治療效果具有重要意義。

利益沖突聲明/Conflict of Interests

所有作者聲明不存在利益沖突。

All authors disclose no relevant conflict of interests.

作者貢獻/Authors'Contributions

林家俞、秦潔潔參與了論文的寫作和修改;蔣玲曦是項目的構(gòu)思者及負責人,指導(dǎo)論文寫作。所有作者均閱讀并同意了最終稿件的提交。

The manuscript was drafted and revised by LIN Jiayu and QIN Jiejie;JIANG Lingxi was the conceptualizer and leader of the project and guided the writing of the paper. All the authors have read the last version of paper and consented for submission.

·Received:2022-04-27

·Accepted:2022-07-27

·Published online:2022-08-28

參·考·文·獻

[1] DEBERARDINIS R J, LUM J J, HATZIVASSILIOU G, et al. The biology of cancer: metabolic reprogramming fuels cell growth and proliferation[J]. Cell Metab,2008,7(1):11-20.

[2] GUERRA L, BONETTI L, BRENNER D. Metabolic modulation of immunity: a new concept in cancer immunotherapy[J]. Cell Rep,2020,32(1):107848.

[3] DOMBLIDES C,LARTIGUE L,FAUSTIN B. Control of the antitumor immune response by cancer metabolism[J]. Cells,2019,8(2):104.

[4] BISWAS S K. Metabolic reprogramming of immune cells in cancer progression[J]. Immunity,2015,43(3):435-449.

[5] FAUBERT B, SOLMONSON A, DEBERARDINIS R J. Metabolic reprogramming and cancer progression[J]. Science, 2020, 368(6487):eaaw5473.

[6] LEONE R D,POWELL J D. Metabolism of immune cells in cancer[J].Nat Rev Cancer,2020,20(9):516-531.

[7] WARD P S, THOMPSON C B. Metabolic reprogramming: a cancer hallmark even Warburg did not anticipate[J]. Cancer Cell,2012,21(3):297-308.

[8] CHANG C H, QIU J, O'SULLIVAN D, et al. Metabolic competition in the tumor microenvironment is a driver of cancer progression[J].Cell,2015,162(6):1229-1241.

[9] BISWAS S K, ALLAVENA P, MANTOVANI A. Tumor-associated macrophages: functional diversity, clinical significance, and open questions[J]. Semin Immunopathol,2013,35(5):585-600.

[10] MANTOVANI A, ALLAVENA P. The interaction of anticancer therapies with tumor-associated macrophages[J]. J Exp Med, 2015,212(4):435-445.

[11] MANTOVANI A, MARCHESI F, MALESCI A, et al. Tumourassociated macrophages as treatment targets in oncology[J]. Nat Rev Clin Oncol,2017,14(7):399-416.

[12] DAI X M,LU L S,DENG S K,et al. USP7 targeting modulates antitumor immune response by reprogramming tumor-associated macrophages in lung cancer[J]. Theranostics, 2020, 10(20): 9332-9347.

[13] QING J N, ZHANG Z Z, NOVáK P, et al. Mitochondrial metabolism in regulating macrophage polarization: an emerging regulator of metabolic inflammatory diseases[J]. Acta Biochim Biophys Sin(Shanghai),2020,52(9):917-926.

[14] MOON J S, HISATA S, PARK M A, et al. mTORC1-induced HK1-dependent glycolysis regulates NLRP3 inflammasome activation[J].Cell Rep,2015,12(1):102-115.

[15] HASCHEMI A, KOSMA P, GILLE L, et al. The sedoheptulose kinase CARKL directs macrophage polarization through control of glucose metabolism[J]. Cell Metab,2012,15(6):813-826.

[16] VATS D, MUKUNDAN L, ODEGAARD J I, et al. Oxidative metabolism and PGC-1β attenuate macrophage-mediated inflammation[J]. Cell Metab,2006,4(1):13-24.

[17] SU P, WANG Q, BI E G, et al. Enhanced lipid accumulation and metabolism are required for the differentiation and activation of tumor-associated macrophages[J]. Cancer Res, 2020, 80(7): 1438-1450.

[18] BANTUG G R, GALLUZZI L, KROEMER G, et al. The spectrum of T cell metabolism in health and disease[J]. Nat Rev Immunol,2018,18(1):19-34.

[19] RUFFELL B, COUSSENS L M. Macrophages and therapeutic resistance in cancer[J]. Cancer Cell,2015,27(4):462-472.

[20] RODRíGUEZ-ESPINOSA O, ROJAS-ESPINOSA O, MORENOALTAMIRANO M M B,et al. Metabolic requirements for neutrophil extracellular traps formation[J]. Immunology,2015,145(2):213-224.

[21] ANCEY P B, CONTAT C, BOIVIN G, et al. GLUT1 expression in tumor-associated neutrophils promotes lung cancer growth and resistance to radiotherapy[J]. Cancer Res,2021,81(9):2345-2357.

[22] RICE C M, DAVIES L C, SUBLESKI J J, et al. Tumour-elicited neutrophils engage mitochondrial metabolism to circumvent nutrient limitations and maintain immune suppression[J]. Nat Commun,2018,9(1):5099.

[23] ISAACSON B, MANDELBOIM O. Sweet killers: NK cells need glycolysis to kill tumors[J]. Cell Metab,2018,28(2):183-184.

[24] LOFTUS R M, ASSMANN N, KEDIA-MEHTA N, et al. Amino acid-dependent cMyc expression is essential for NK cell metabolic and functional responses in mice[J]. Nat Commun,2018,9(1):2341.

[25] HARMON C, ROBINSON M W, HAND F, et al. Lactate-mediated acidification of tumor microenvironment induces apoptosis of liverresident NK cells in colorectal liver metastasis[J]. Cancer Immunol Res,2019,7(2):335-346.

[26] MICHELET X, DYCK L, HOGAN A, et al. Metabolic reprogramming of natural killer cells in obesity limits antitumor responses[J]. Nat Immunol,2018,19(12):1330-1340.

[27] KRAWCZYK C M, HOLOWKA T, SUN J, et al. Toll-like receptorinduced changes in glycolytic metabolism regulate dendritic cell activation[J]. Blood,2010,115(23):4742-4749.

[28] EVERTS B, AMIEL E, HUANG S C C, et al. TLR-driven early glycolytic reprogrammingviathe kinases TBK1-IKKε supports the anabolic demands of dendritic cell activation[J]. Nat Immunol,2014,15(4):323-332.

[29] HERBER D L, CAO W, NEFEDOVA Y, et al. Lipid accumulation and dendritic cell dysfunction in cancer[J]. Nat Med, 2010, 16(8):880-886.

[30] CUBILLOS-RUIZ J R, SILBERMAN P C, RUTKOWSKI M R, et al. ER stress sensor XBP1 controls anti-tumor immunity by disrupting dendritic cell homeostasis[J]. Cell, 2015, 161(7): 1527-1538.

[31] HOSSAIN F, AL-KHAMI A A, WYCZECHOWSKA D, et al.Inhibition of fatty acid oxidation modulates immunosuppressive functions of myeloid-derived suppressor cells and enhances cancer therapies[J]. Cancer Immunol Res,2015,3(11):1236-1247.

[32] DIAS A S, ALMEIDA C R, HELGUERO L A, et al. Metabolic crosstalk in the breast cancer microenvironment[J]. Eur J Cancer,2019,121:154-171.

[33] AL-KHAMI A A, ZHENG L Q, DEL VALLE L, et al. Exogenous lipid uptake induces metabolic and functional reprogramming of tumor-associated myeloid-derived suppressor cells[J].Oncoimmunology,2017,6(10):e1344804.

[34] MICHALEK R D, GERRIETS V A, JACOBS S R, et al. Cutting edge: distinct glycolytic and lipid oxidative metabolic programs are essential for effector and regulatory CD4+T cell subsets[J]. J Immunol,2011,186(6):3299-3303.

[35] SHARMA P, HU-LIESKOVAN S, WARGO J A, et al. Primary,adaptive, and acquired resistance to cancer immunotherapy[J]. Cell,2017,168(4):707-723.

[36] GELTINK R, KYLE R L, PEARCE E L. Unraveling the complex interplay between T cell metabolism and function[J]. Annu Rev Immunol,2018,36:461-488.

[37] WAICKMAN A T, POWELL J D. mTOR, metabolism, and the regulation of T-cell differentiation and function[J]. Immunol Rev,2012,249(1):43-58.

[38] FRAUWIRTH K A, RILEY J L, HARRIS M H, et al. The CD28 signaling pathway regulates glucose metabolism[J]. Immunity, 2002,16(6):769-777.

[39] HO P C, BIHUNIAK J D, MACINTYRE A N, et al.Phosphoenolpyruvate is a metabolic checkpoint of anti-tumor T cell responses[J]. Cell,2015,162(6):1217-1228.

[40] DE ROSA V, GALGANI M, PORCELLINI A, et al. Glycolysis controls the induction of human regulatory T cells by modulating the expression ofFOXP3exon 2 splicing variants[J]. Nat Immunol,2015,16(11):1174-1184.

[41] HAAS R, SMITH J, ROCHER-ROS V, et al. Lactate regulates metabolic and pro-inflammatory circuits in control of T cell migration and effector functions[J]. PLoS Biol, 2015, 13(7):e1002202.

[42] KUMAGAI S, KOYAMA S, ITAHASHI K, et al. Lactic acid promotes PD-1 expression in regulatory T cells in highly glycolytic tumor microenvironments[J]. Cancer Cell,2022,40(2):201-218.e9.

[43] WATSON M J, VIGNALI P D A, MULLETT S J, et al. Metabolic support of tumour-infiltrating regulatory T cells by lactic acid[J].Nature,2021,591(7851):645-651.

[44] KIDANI Y, ELSAESSER H, HOCK M B, et al. Sterol regulatory element-binding proteins are essential for the metabolic programming of effector T cells and adaptive immunity[J]. Nat Immunol,2013,14(5):489-499.

[45] YANG W, BAI Y B, XIONG Y, et al. Potentiating the antitumour response of CD8+T cells by modulating cholesterol metabolism[J].Nature,2016,531(7596):651-655.

[46] WANG H P, FRANCO F, TSUI Y C, et al. CD36-mediated metabolic adaptation supports regulatory T cell survival and function in tumors[J]. Nat Immunol,2020,21(3):298-308.

[47] ZENG H,YANG K,CLOER C,et al. mTORC1 couples immune signals and metabolic programming to establish Treg cell function[J]. Nature,2013,499(7459):485-490.

[48] TAKE Y, KOIZUMI S, NAGAHISA A. Prostaglandin E receptor 4 antagonist in cancer immunotherapy: mechanisms of action[J]. Front Immunol,2020,11:324.

[49] MUNN D H, SHARMA M D, BABAN B, et al. GCN2 kinase in T cells mediates proliferative arrest and anergy induction in response to indoleamine 2,3-dioxygenase[J]. Immunity,2005,22(5):633-642.

[50] GEIGER R, RIECKMANN J C, WOLF T, et al. L-arginine modulates T cell metabolism and enhances survival and anti-tumor activity[J]. Cell,2016,167(3):829-842.e13.

[51] BIAN YJ, LI W, KREMER D M, et al. Cancer SLC43A2 alters T cell methionine metabolism and histone methylation[J]. Nature,2020,585(7824):277-282.

[52] MOLLER S H, HSUEH P C, YU Y R, et al. Metabolic programs tailor T cell immunity in viral infection, cancer, and aging [J]. Cell Metab,2022,34(3):378-395.

[53] LIU Y N, YANG J F, HUANG D J, et al. Hypoxia induces mitochondrial defect that promotes T cell exhaustion in tumor microenvironment through MYC-regulated pathways[J]. Front Immunol,2020,11:1906.

[54] HE J L, SHANGGUAN X, ZHOU W, et al. Glucose limitation activates AMPK coupled SENP1-Sirt3 signalling in mitochondria for T cell memory development[J]. Nat Commun,2021,12(1):4371.

[55] SCHARPING N E, MENK A V, MORECI R S, et al. The tumor microenvironment represses T cell mitochondrial biogenesis to drive intratumoral T cell metabolic insufficiency and dysfunction[J].Immunity,2016,45(2):374-388.

[56] KURAI J, CHIKUMI H, HASHIMOTO K, et al. Antibodydependent cellular cytotoxicity mediated by cetuximab against lung cancer cell lines[J]. Clin Cancer Res,2007,13(5):1552-1561.

[57] PITZALIS C, JONES G W, BOMBARDIERI M, et al. Ectopic lymphoid-like structures in infection, cancer and autoimmunity[J].Nat Rev Immunol,2014,14(7):447-462.

[58] CASSIM S, POUYSSEGUR J. Tumor microenvironment: a metabolic player that shapes the immune response[J]. Int J Mol Sci,2019,21(1):157.

[59] WATERS L R, AHSAN F M, WOLF D M, et al. Initial B cell activation induces metabolic reprogramming and mitochondrial remodeling[J]. iScience,2018,5:99-109.

[60] BROWN T P, GANAPATHY V. Lactate/GPR81 signaling and proton motive force in cancer: role in angiogenesis, immune escape,nutrition, and Warburg phenomenon[J]. Pharmacol Ther, 2020, 206:107451.

[61] KOUIDHI S, BEN AYED F, BENAMMAR ELGAAIED A.Targeting tumor metabolism: a new challenge to improve immunotherapy[J]. Front Immunol,2018,9:353.

[62] HALFORD S E R,JONES P,WEDGE S,et al. A first-in-human firstin-class (FIC) trial of the monocarboxylate transporter 1 (MCT1)inhibitor AZD3965 in patients with advanced solid tumours[J]. J Clin Oncol,2017,35(15_suppl):2516.

[63] OH M H,SUN I H,ZHAO L,et al. Targeting glutamine metabolism enhances tumor-specific immunity by modulating suppressive myeloid cells[J]. J Clin Invest,2020,130(7):3865-3884.

[64] LEONE R D, ZHAO L, ENGLERT J M, et al. Glutamine blockade induces divergent metabolic programs to overcome tumor immune evasion[J]. Science,2019,366(6468):1013-1021.

[65] VOSS K, LUTHERS C R, POHIDA K, et al. Fatty acid synthase contributes to restimulation-induced cell death of human CD4 T cells[J].Front Mol Biosci,2019,6:106.

[66] FALCHOOK G, INFANTE J,ARKENAU H T, et al. First-in-human study of the safety, pharmacokinetics, and pharmacodynamics of first-in-class fatty acid synthase inhibitor TVB-2640 alone and with a taxane in advanced tumors[J]. EClinicalMedicine, 2021, 34:100797.

猜你喜歡
途徑環(huán)境功能
也談詩的“功能”
中華詩詞(2022年6期)2022-12-31 06:41:24
長期鍛煉創(chuàng)造體內(nèi)抑癌環(huán)境
一種用于自主學(xué)習(xí)的虛擬仿真環(huán)境
孕期遠離容易致畸的環(huán)境
構(gòu)造等腰三角形的途徑
環(huán)境
多種途徑理解集合語言
減少運算量的途徑
關(guān)于非首都功能疏解的幾點思考
中西醫(yī)結(jié)合治療甲狀腺功能亢進癥31例
主站蜘蛛池模板: 亚洲精品在线影院| 国产a v无码专区亚洲av| 亚洲第一成人在线| 成年人免费国产视频| 成人伊人色一区二区三区| 青青网在线国产| 亚洲综合经典在线一区二区| 亚洲高清中文字幕| 亚洲精品视频免费看| 亚洲五月激情网| 在线观看91精品国产剧情免费| 成人免费视频一区| 超清无码一区二区三区| 亚洲人成色77777在线观看| 欧美日韩国产精品va| 美女啪啪无遮挡| 草草影院国产第一页| 国产成人综合亚洲欧洲色就色| 999精品视频在线| 五月天婷婷网亚洲综合在线| 伊人无码视屏| 91亚洲精选| 亚洲国产系列| 亚洲女同一区二区| 日本一区二区三区精品视频| 香蕉久久国产精品免| 在线观看亚洲天堂| 国产自无码视频在线观看| 亚洲一级毛片在线观播放| 中文字幕天无码久久精品视频免费| 91亚瑟视频| 1769国产精品免费视频| 日韩激情成人| 久久精品免费看一| 欧美亚洲欧美| 永久免费av网站可以直接看的| 三上悠亚在线精品二区| 亚洲Va中文字幕久久一区 | 热久久这里是精品6免费观看| 在线亚洲小视频| 九九九精品成人免费视频7| 欧美视频二区| 亚洲无码熟妇人妻AV在线| 欧美人人干| 色网站在线视频| 亚洲无码高清一区| 玖玖精品在线| 亚洲中文字幕久久精品无码一区 | 亚洲视频欧美不卡| 天天色综网| 国产美女精品在线| 亚洲最新地址| 又黄又湿又爽的视频| 欧美一区二区三区不卡免费| 精品一区二区三区自慰喷水| 欧美无遮挡国产欧美另类| 日本道中文字幕久久一区| 久久综合伊人77777| 国产成人精品视频一区视频二区| 国产国拍精品视频免费看| 欧美精品1区| 国产一区二区福利| 99热国产这里只有精品无卡顿"| 亚洲妓女综合网995久久| 国产爽爽视频| 伊人久久精品无码麻豆精品| 久久精品电影| 任我操在线视频| 国产偷国产偷在线高清| 全免费a级毛片免费看不卡| 无码综合天天久久综合网| 国产XXXX做受性欧美88| 伊人久久婷婷五月综合97色| 天堂网亚洲综合在线| 久久久四虎成人永久免费网站| 亚洲人在线| 国产99视频精品免费观看9e| 97国内精品久久久久不卡| 香蕉精品在线| 激情亚洲天堂| 亚洲精品在线观看91| 在线中文字幕日韩|