褪黑素殼聚糖微粒防止褪黑素降解并有效提高其抗旱功能

周 彬，于小晶*，張 民*，田虹雨，董晶晶，郭 蕾，張天驕

[1 山東農業大學資源與環境學院/土肥高效利用國家工程研究中心, 山東泰安 271018；2 山東農業大學經濟管理學院(商學院), 山東泰安 271018]

小麥 (TriticumaestivumL.)是我國第二大糧食作物，其產量的高低直接影響人民生活水平和國家糧食安全。華北地區作為我國冬小麥重要產區之一，該區域水資源量僅占全國水資源總量的6%，人均水資源占有量大大低于全國平均水平[1–2]。干旱在冬小麥苗期出現頻繁，且易導致小麥植株生理傷害，導致產量減少45%以上，嚴重威脅糧食安全[3]。干旱通過降低植物體內相對含水量、葉片水勢，抑制細胞生長和增殖，引起光合色素含量下降，造成細胞損傷，嚴重時甚至會導致植物死亡[4]。為了減輕干旱脅迫對作物造成的損傷，可通過適量添加生物刺激素來誘導植物的分子和生理防御機制，達到促生保收的效果，這也成為保障我國糧食安全的重要途徑之一[5]。

褪黑素又名N-乙酰-5-甲氧基色胺 (N-acetyl-5-methoxytryptamine)，是一種動植物內源性抗氧化劑和自由基清除劑[6]。有研究表明，外源施加褪黑素是提高植物抗逆性的有效手段[7–8]。Sharma等[9]研究發現，褪黑素通過調控抗氧化防御的關鍵基因提高抗旱性。然而，由于褪黑素存在易氧化、光敏感等問題，導致外源添加褪黑素時需要在黑暗條件下高頻次施用，這嚴重限制了褪黑素在農業上的推廣應用[10]。

通過合理的封裝技術控制褪黑素的釋放是防止褪黑素失效，且實現其在農業中應用的有效手段[11]。傳統農藥封裝技術主要是微膠囊技術，基于水相和油相互不相容，從而使得壁材能夠在芯材表面凝聚形成微膠囊，保護芯材實現緩釋提高利用率[12]。由于褪黑素直接作用于植物，且溶于乙醇等與水互溶的溶劑，其通過水油體系封裝較為困難。殼聚糖(CS)是一種聚陽離子電解質多糖，具有生物相容性、可生物降解特性[13]。三聚磷酸鈉(TPP)是一類水溶性線狀聚磷酸鹽。當CS與帶相反電荷的TPP作用時，通過CS的氨基和TPP的磷酸基團之間的靜電吸引作用從而產生微粒負載藥品[14]。研究表明，殼聚糖/三聚磷酸鈉微粒負載氟樂靈能夠實現其緩釋并減少環境毒性[14]。果膠是存在于植物細胞壁中的一種多糖，帶負電荷且易被植物吸收。有研究表明，殼聚糖/三聚磷酸鈉/果膠納米粒子負載百草枯可以有效提升百草枯的活性，降低其光降解速率和提高其利用效率[15]。本研究嘗試采用殼聚糖、果膠及三聚磷酸鈉，開發具有緩釋和抵御光降解能力的褪黑素殼聚糖微粒并進行表征評價。本研究的目的在于：1)明確褪黑素殼聚糖微粒的制備原理及形態特征；2)褪黑素殼聚糖微粒抵抗光降解能力的評價；3)施用褪黑素殼聚糖微粒對小麥苗期抗旱性的影響。這項技術能為功能物質提供一種低成本、高效的保活緩釋手段，為功能物質在農業生產中大面積推廣應用提供技術參考。

1 材料與方法

1.1 供試材料

殼聚糖(CS，脫乙酰度，90%～95%)、褪黑素(MT)、三聚磷酸鈉(TPP)、果膠(≥74.0%)、乙酸、甲醇購自上海源葉生物科技有限公司；透析袋(3500 Da)購自北京瑞達恒輝科技發展有限公司；0.45 μm濾膜購自上海必泰生物科技有限公司；小麥(濟麥22)購自山東登海種業股份有限公司。

供試基質來源于丹麥品氏托普公司，主要以優質泥炭蘚為原料，基本理化性質為有機質434 g/kg、NO3–-N 296 mg/kg、NH4+-N 84.1 mg/kg、有效磷 99.2mg/kg、速效鉀1169 mg/kg、最大持水量為66.67%。育苗采用梯形方盒，上口邊長10 cm、高8 cm、底面邊長 7 cm。

1.2 試驗設計

1.2.1 褪黑素殼聚糖微粒的制備 微粒的制備方法(圖1)在Rashidipour等[15]的離子凝膠化技術基礎上進行了一些參數的優化和調整：稱取0.1 g殼聚糖粉末，溶解在100 mL的0.2% (V/V)醋酸溶液中，磁力攪拌12 h至完全溶解。同時制備質量分數為0.1%的三聚磷酸鈉水溶液和質量分數為0.08%的果膠溶液。為了去除不溶性或聚集的物質，三種溶液均通過0.45 μm的濾膜過濾。不含褪黑素殼聚糖微粒的制備：在磁力攪拌下緩慢的將5 mL TPP溶液和2 mL果膠溶液滴加到20 mL殼聚糖溶液中，60℃下攪拌30 min，在 4℃，10000 g 離心 20 min 后棄掉上清液，將沉淀冷凍干燥12 h，得到不含褪黑素的殼聚糖微粒(MP)。含褪黑素的殼聚糖微粒的制備：先將0.1、0.3、0.5、1.0 mL 的褪黑素甲醇溶液 (10 mg/mL)分別與20 mL殼聚糖溶液混合，再按照上述步驟添加5 mL TPP和2 mL果膠，制得褪黑素添加量為1、3、5、10 mg的褪黑素殼聚糖微粒。在4℃，10000 g離心20 min，后棄掉上清液，沉淀用蒸餾水洗滌3次，保證去除未負載的褪黑素。經12 h冷凍干燥后獲得粉末樣品，密封避光下儲存。

圖1 褪黑素殼聚糖微粒制備原理示意圖Fig.1 Schematic diagram of the preparation principle of melatonin chitosan microparticles

1.2.2 小麥干旱脅迫試驗 供試品種為濟麥22，所用基質以優質泥炭蘚為主要原料，所用MP-MT為褪黑素添加量為5 mg的褪黑素殼聚糖微粒。試驗采用基質培養方法，以基質最大持水量的80%為正常供水對照(CK1)，40%為干旱脅迫對照(CK2)，在干旱條件下，設施用1.0 g/L普通褪黑素溶液(MT1.0)，殼聚糖微粒溶液(MP)，以及含褪黑素0.5、1.0、1.5 g/L(MP-MT0.5、MP-MT1.0、MP-MT1.5，即每 1 L 溶液中添加5、10、15 g褪黑素殼聚糖微粒溶液制成) 共7個處理，各處理重復4次。選取顆粒飽滿的小麥種子進行消毒滅菌處理(經75%乙醇浸泡30 s，20%的NaClO溶液浸泡15 min)，用蒸餾水清洗干凈，浸種催芽后選取萌發水平一致的種子，均勻點播于方盒中，每盆10粒，種子上部用0.5 cm厚蛭石覆蓋，蛭石表面噴灑20 mL蒸餾水，在25℃下，14 h光照/10 h黑暗，光強6000 lx進行培養，稱重法每天補充水分，培養至兩葉一心后每盆保留5株健壯且生長水平一致的小麥幼苗。進行試驗處理，每天使用稱重法補充水分，連續處理8 天。干旱脅迫后第1天和第5天，分別用20 mL相應濃度的褪黑素殼聚糖水溶液進行灌根，對照處理以等量蒸餾水澆灌，第8天收獲。

1.3 測定項目與方法

1.3.1 包封率測試 將制備完成的微粒懸浮液放入50 mL 離心管中，以 10000 g，4℃ 離心 20 min。取上清液，測量未包覆的褪黑素。通過超高效液相色譜測量殘留在濾液中的褪黑素量間接計算包封率。將未負載褪黑素的殼聚糖微粒濾液作為空白對照。以含有已知濃度的褪黑素溶液做校準曲線。

包封率 (%) =100×(1–殘留褪黑素量/褪黑素總量)[15]

1.3.2 形態觀察 為了觀察褪黑素殼聚糖微粒個體形貌，減少冷凍干燥對微觀形貌的影響，對褪黑素殼聚糖懸浮液滴進行SEM掃描。將褪黑素殼聚糖微粒懸浮液滴加到硅片并在室溫下干燥，進行噴金處理，然后使用掃描電子顯微鏡(SEM)進行形態觀察。儀器采用日本日立公司的SU8020型掃描電子顯微鏡。

1.3.3 紅外光譜測試 將褪黑素殼聚糖微粒、褪黑素、殼聚糖、三聚磷酸鈉、果膠分別同溴化鉀粉末混合壓片，將制好的薄片置于傅里葉紅外光光譜儀中測定紅外光譜。儀器采用美國Nicolet公司的Nexus型紅外光譜儀，掃描次數為32，分辨率為2 cm–1，掃描范圍為 4000～400 cm–1。

1.3.4 緩釋性能測試和釋放動力學分析 褪黑素殼聚糖微粒在不同pH條件下的釋放行為測試：將10 mg褪黑素殼聚糖微粒和空白殼聚糖微粒放置在3500 Da透析袋中，分別放置于pH 5.0和pH 7.0的100 mL磷酸緩沖溶液中。室溫下，以預定時間2、4、6、8、10、12、24、36 h 為時間點間隔取 1 mL 樣品。使用超高效液相色譜儀分析所收集樣品中褪黑素的量。每個樣品3次重復。

Ritger-Peppas模型[16]現在常被用于描述骨架片的藥物釋放規律，數學表達式如下：

Mt/M∞=?ktn

式中：Mt為微粒釋放出來的褪黑素質量，M∞為微粒中褪黑素的總質量，Mt/M∞是藥物累積釋放率，k是釋藥速率常數，t為釋放時間，n是擴散釋放指數。當n≤0.43時，藥物以Fick擴散(濃度梯度越大，擴散通量越大)為主；當0.43

1.3.5 光降解率測試 褪黑素殼聚糖微粒和褪黑素純物質換算成10 mg/L的濃度添加到水溶液中。用4 W的LED燈管模擬可見光照射溶液，溶液與燈之間的距離為50 cm，分別在照射 1、2、3、4 h的時間間隔破壞性取樣。之后將10 mL溶液加入離心管中，并以10000 ×g的離心力，4℃下離心20 min。測定上清液中褪黑素濃度。每個樣品重復3次。

1.3.6 小麥幼苗生理指標測定 分別測定每個處理小麥幼苗株高、鮮重、干重、SPAD、根系長度、根表面積、根體積、根直徑、抗氧化酶(超氧化物歧化酶、過氧化物酶、過氧化氫酶)活性和丙二醛含量。植株葉片 SPAD 值采用日本Minolta公司生產的SPAD-502葉綠素儀測定；采用萬深LA-S根系掃描儀進行根系掃描，測量根系長度、根表面積、根體積、根直徑。抗氧化酶活性的測定：取小麥幼苗葉片樣品加入磷酸緩沖液冰浴研磨，低溫離心后取上清液進行酶活性測定；超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)活性測定采用氮藍四唑(nitro-blue tetrazolium, NBT)法；過氧化物酶(peroxidase,POD)活性測定采用愈創木酚法；過氧化氫酶(catalase, CAT)活性測定采用紫外吸收法[17]。丙二醛(malondialdehyde, MDA)含量測定采用硫代巴比妥酸法[17]。

1.4 數據處理分析

ANOVA方差分析及 Duncan 差異顯著性檢驗通過Excel 2016和IBM SPSS軟件完成；采用Excel 2016軟件進行作圖。

2 結果與分析

2.1 褪黑素殼聚糖微粒的包封率

經過前期試驗研究，CS、果膠、TPP濃度分別為0.1%、0.08%和0.1%，添加量分別為20、2和5 mL的條件下制備的褪黑素殼聚微粒的包封率是最佳的。在最適配比條件下分別測定了投入質量為1、3、5、10 mg褪黑素的包封率。褪黑素添加量在1、3和5 mg時包封率并無顯著差異，添加量為10 mg時包封率顯著降低。其中褪黑素添加量為1 mg時包封率不穩定，在21.8%～67.4%波動較大。投入褪黑素質量為5 mg時制備的褪黑素殼聚糖微粒(MP-MT)包封率最高且較為穩定(圖2)，平均包封率達52.14%，因此隨后試驗所用微粒均采用該比例進行制備。

圖2 不同褪黑素投入量下褪黑素殼聚糖微粒的包封率Fig.2 The encapsulation efficiency of composite particles with different melatonin amount

2.2 褪黑素殼聚糖微粒表面形貌

圖3為殼聚糖微粒(A、C)和褪黑素添加量為5 mg時制備的褪黑素殼聚糖微粒(B、D)在光學顯微鏡放大400倍(A、B)下的表觀形貌和掃描電鏡(C、D)下的微觀形貌。400倍顯微鏡下殼聚糖微粒顆粒粒徑較小，顆粒之間無團聚和黏連現象(圖3A)；圖3B中形成的顆粒粒徑較大，呈分散分布。掃描電鏡顯微照片圖3C和D均能清楚觀察到有顆粒物存在，基底為殼聚糖。圖3C顯示均勻的顆粒堆積，粒徑較小；圖3D顯示大量的粒徑較大顆粒，表面粗糙。這可能是由于添加褪黑素后褪黑素充斥于顆粒內部，從而導致顆粒粒徑增大。

圖3 殼聚糖微粒掃描電鏡圖Fig.3 Electron scanning images of chitosan particle structure

2.3 褪黑素殼聚糖微粒化學結構

對褪黑素殼聚糖微粒進行了紅外光譜(FTIR)分析，同時與MT、MP、CS、TPP、果膠FTIR光譜進行了比較(圖4)。殼聚糖(CS)在3458、1658、1076 cm–1處的特征吸收峰分別歸屬于N―H拉伸振動峰、氧橋伸縮振動峰、碳氧伸縮震動吸收峰。TPP在1218 cm–1處有P―O拉伸振動峰，果膠在1638 cm–1處有COO–對稱吸收峰。褪黑素(MT)的N―H拉伸振動，N―H彎曲振動和C―O―C拉伸振動分別是3301、1626和1213 cm–1的吸收峰。在MPMT的光譜中，觀察到CS與TPP交聯后，CS中3524 cm–1處的峰移至較低波數 3454 cm–1，在 1537 cm–1處出現了一個新峰(酰胺II)，這可能是由于CS的–NH2基團與TPP磷酸基團之間存在靜電相互作用造成的。通過MT-MP與MP對比，發現MPMT中擁有與MT相關的N―H彎曲振動和C―O―C拉伸振動峰，這能表明MP-MT中含有MT相關組分。

圖4 褪黑素殼聚糖(MP-MT)、空載殼聚糖微粒(MP)、褪黑素(MT)、殼聚糖(CS)、三聚磷酸鈉(TPP)和果膠(Pectin)的紅外光譜Fig.4 Infrared spectra of melatonin chitosan (MP-MT),chitosan microparticles (MP), melatonin (MT), chitosan(CS), sodium tripolyphosphate (TPP), and pectin (Pectin)

2.4 褪黑素殼聚糖微粒的緩釋特性和動力學擬合

從室溫下MP-MT在pH 5.0或pH 7.0的磷酸緩沖溶液中的釋放曲線(圖5)可以看出，MP-MT呈現雙相釋放模式，初始階段為快速釋放，褪黑素在4 h內釋放率達到 44.83% (pH 5.0)和 27.6% (pH 7.0)，此后表現為緩慢釋放，最終在36 h內釋放率達到65.43% (pH 5.0)和 50.13% (pH 7.0)。初始階段的爆發釋放是由于吸附在MT-MP表層的褪黑素釋放，而后期的緩釋是由于殼聚糖微粒內部褪黑素緩慢釋放。與pH7.0下相比，pH5.0下累積釋放率升高。可見，褪黑素殼聚糖微粒可以有效延長褪黑素的釋放時間，且MP-MT在酸性條件下會加快褪黑素的釋放。

圖5 褪黑素殼聚糖微粒在磷酸緩沖溶液中的釋放速率Fig.5 Release rate of melatonin chitosan in phosphate buffer solution

使用Ritger-Peppas數學模型對釋放數據進行擬合，MP-MT在pH 5.0的磷酸緩沖溶液中的釋放指數和線性相關系數(R2)分別為0.138和0.86，MPMT在pH 7.0的磷酸緩沖溶液中的釋放指數和線性相關系數(R2)分別為0.228和0.90 (圖6)。兩者的釋放指數都小于0.45，這表示褪黑素在微粒中的釋放行為主要以擴散控制為主。

圖6 Ritger-Peppas數學模型擬合的褪黑素殼聚糖微粒中褪黑素隨時間的釋放率Fig.6 Melatonin release rate of melatonin chitosan with time fitted by Ritger-Peppas model

2.5 褪黑素殼聚糖微粒的光降解性能

由褪黑素(MT)和褪黑素殼聚糖微粒(MPMT)水溶液在光照射下褪黑素的降解率(圖7)可知，MT在1 h時的降解率為11.47%，4 h時的降解率為23.68%；MP-MT在1 h時褪黑素降解率為5.33%，在4 h時降解率僅為9.73%，相較于MT降解率降低了58.91%。這表明褪黑素負載在殼聚糖微粒后可有效降低褪黑素的降解，延長其持效時間。

圖7 可見光下殼聚糖微粒負載褪黑素(MP-MT)和褪黑素(MT)隨時間的降解率Fig.7 Degradation rate of melatonin with (MP-MT) and without chitosan microparticles (MT) under visible light

2.6 干旱條件下褪黑素殼聚糖微粒對小麥幼苗的生長狀況和生理指標的影響

由表1可知，干旱對照(CK2)比正常對照(CK1)小麥幼苗株高、干重分別顯著降低了25.72%、28.58%。與CK2相比，MP對小麥株高、生物量及SPAD值均無顯著影響，MT和3個MP-MT處理有不同程度的增加，MT1.0處理和MP-MT0.5處理可以有效的提高小麥葉片的SPAD值14.47%和23.56%。與MT1.0相比，MP-MT1.0顯著增加了小麥株高，3個MP-MT處理的小麥幼苗干重增加4.50%～22.73%，3個MP-MT處理均提高了SPAD值。以上結果表明，MT-MP提高小麥幼苗抗旱性的效果好于MT。

表1 干旱脅迫下不同處理小麥株高、鮮重、干重和葉片SPAD值Table 1 Plant height, fresh weight, dry weight and leaf SPAD value of wheat with different treatments under drought stress

干旱脅迫顯著影響了小麥的根系發育情況(表2)。MP處理除根系體積外，其他指標與CK2處理無顯著差異，而MT1.0、MP-MT0.5、MP-MT1.0和MPMT1.5處理的根長和根表面積則分別較CK2處理增加18.71%、37.75%、57.40%、40.65%和22.94%、25.59%、38.61%和17.82% (表2)。與MT1.0處理相比，3個MP-MT處理根系長度增加 15.92%～32.56%，增加幅度以MP-MT1.0最大。

表2 干旱脅迫下不同處理小麥根系生長情況Table 2 Root growth of wheat with different treatments under drought stress

過氧化物酶是植物體內活性氧清除系統的主要成分之一，能夠緩解植物因干旱引起的氧化損傷。干旱條件會導致小麥葉片的SOD、POD、CAT活性下降(表3)，而MT和MP-MT處理的小麥葉片SOD、POD、CAT活性均較CK2處理出現明顯上升。其中，與MT1.0處理相比，3個MP-MT處理的過氧化酶活性提高了19.56%～20.34%。丙二醛(MDA)含量可以在一定程度上反映植物遭受干旱脅迫傷害的程度。MP-MT0.5、MP-MT1.0和MPMT1.5處理比CK2處理小麥葉片的MDA含量分別顯著降低28.16%、27.80%和26.12%。與MT1.0處理相比，3個MP-MT處理的小麥幼苗MDA含量降低9.77%～12.30%。MP-MT0.5與MP-MT1.0、MPMT1.5處理之間POD、CAT活性和MDA含量無顯著性差異。綜合以上結果可知，干旱條件下，MT1.0處理能夠增強小麥抗旱能力，而MT-MP處理較MT1.0處理進一步顯著提升小麥幼苗的抗旱能力，且MP-MT0.5處理所需褪黑素施加量更少。

表3 干旱脅迫下不同處理小麥抗氧化酶活性和丙二醛含量Table 3 Antioxidant activity and malondialdehyde content with different treatments under drought stress

3 討論

通過殼聚糖/三聚磷酸鈉/果膠與褪黑素的雜化成粒可以實現褪黑素緩釋保活。超高效液相色譜法測定，裝載的MP-MT的封裝效率為52.23%，與殼聚糖/卵磷脂載藥體系相比包封率升高，這可能是體系中添加果膠的原因。果膠作為一種新的負電荷組分和易被吸收的植物分子，能夠增強殼聚糖與三聚磷酸鈉的交聯反應，由此可能會獲得更優的封裝效果和更高的利用效率[18]。與褪黑素多孔淀粉封裝系統相比，包封率雖無顯著差異，但是殼聚糖/三聚磷酸鈉/果膠的雜化包裹褪黑素會使其混合更為均勻，而且封裝材料相比多孔淀粉等更為廉價易得，更加適用于農業生產[19]。相比殼聚糖/三聚磷酸鈉制備的納米顆粒，殼聚糖/三聚磷酸鈉/果膠裝載褪黑素的微粒粒徑具有明顯的增加，這可能與添加果膠有關，果膠是具有粘性的溶液會導致微粒的聚集變大。

褪黑素殼聚糖微粒是一種擴散控制的緩慢釋放系統，表現為前期的爆發釋放和后期的緩慢釋放，這種延遲釋放可以有效的增加植物對褪黑素的利用效率。前期快速釋放使植物的脅迫狀況可以及時得到緩解，后期緩慢釋放使植物持續處于褪黑素分子的刺激作用下。在36 h時MP-MT的累計釋放率為65.43%，對比卵磷脂/殼聚糖/褪黑素納米顆粒4 h釋放70%，緩釋期明顯增加。這主要與微粒的粒徑相對較大有關，有研究表明微粒的粒徑增加會增強緩釋性能[20]。而且微粒成分中含有果膠，果膠與水接觸后會迅速形成粘性溶液和凝膠，通過滲透作用調節膨脹程度，增加交聯密度，調節釋放速率[21]。有研究表明植物在逆境脅迫條件下，會通過分泌質子、有機酸等來抵抗逆境脅迫，從而導致局部根系pH的降低，MP-MT在酸性條件下加快釋放，有利于褪黑素釋放快速緩解植物的脅迫狀況[22]。酸性條件下MPMT釋放加速，主要與殼聚糖特性有關，弱酸條件下殼聚糖的氨基被質子化，破壞了殼聚糖分子間氫鍵作用，二級結構被破壞，使得褪黑素的溶出增加，釋放加快[23]。本研究中發現殼聚糖封裝系統還能有效的降低褪黑素的光降解作用。褪黑素的光降解可能是由于在光照和氧氣存在的條件下，吲哚環生成過氧化物中間體，然后迅速成為穩定的產物N1-乙酰基-N2-甲酰-5-甲氧基犬尿氨酸(AFMK)所造成的。MP-MT光降解下降可能與殼聚糖外殼減少了褪黑素與光和氧的直接接觸有關[10, 24]。

在干旱脅迫條件下，相比CK2處理，MT1.0處理和MP-MT0.5處理可以有效提高小麥葉片的SPAD值14.47%和23.56%，這可能與褪黑素參與調節光合作用相關的蛋白質有關。研究表明，褪黑素下調部分與葉綠素降解有關的蛋白或酶，如衰老脫水相關蛋白、α-淀粉酶，從而減少葉綠素的降解，維持葉綠體功能[25]。本試驗中褪黑素殼聚糖微粒通過緩釋褪黑素來提高干旱脅迫下葉綠素相關酶的表達，減少葉綠素降解，從而保證光合作用的正常進行。

促進根系發育，是減少干旱脅迫造成的不良影響的重要手段。在許多植物中，褪黑素已被證明能促進根的生長。在甜櫻桃砧木的試驗中，發現低濃度的褪黑素對砧木的根數和根長有自生反應[26]；Zhou等[27]研究發現，mDREB1在轉基因植物中可以調節褪黑素的合成，增加褪黑素的含量，從而減輕干旱脅迫對根系發育的抑制作用。在本研究中，通過對植株根系形態的對比分析，結果表明，MT1.0、MP-MT0.5處理分別顯著促進根長和根表面積增長18.71%、37.75%和22.94%、25.59%，使其擁有更豐富的根去獲取水分，從而抵御干旱脅迫，這與王華美等[28]的研究結果是一致的。褪黑素微粒在提高干重、SPAD值和根系發育方面的效用較MT更加明顯，原因可能在于褪黑素在殼聚糖封裝體系中降低光降解速率并緩慢釋放，使得植物能夠在干旱脅迫條件下，外源褪黑素濃度保持在有效范圍之內，增強植物抗旱性。

干旱脅迫時，植物葉綠體和線粒體中積累大量自由基，破壞植物的正常代謝，導致作物減產[29]。Ali等[30]研究發現，干旱脅迫累積大量活性氧(ROS)，導致植物細胞損傷產生MDA，抑制植物生長發育。施加褪黑素可以誘導干旱脅迫下植株抗氧化能力的提高，增強對細胞膜的保護作用。本研究中MP-MT0.5處理顯著增強了干旱脅迫下小麥SOD、POD、CAT的活性，增強清除ROS的能力。這可能是因為外源褪黑素可以誘導內源一氧化氮的產生，從而下調miR398表達以激活ROS清除酶活性，促進相關基因的表達并最終清除細胞內ROS[31]。且MT1.0和MP-MT0.5處理顯著降低了葉片MDA含量，其中MP-MT0.5降低效果更為明顯，顯著減少了28.16%。這可能與褪黑素提高了抗氧化酶活性和調節C-重復序列結合因子(CBFs)等逆境反應基因的表達有關[32]。本研究MP-MT處理在提升小麥幼苗抗旱性上明顯優于MT處理，這主要是因為殼聚糖/三聚磷酸鈉/果膠封裝體系提高了褪黑素的利用率。另外本試驗在不限制黑暗條件下施用且減少施用頻次的情況下提高了小麥幼苗的抗旱能力，這可能與褪黑素殼聚糖微粒對褪黑素的緩慢持續釋放和光降解速率降低有關。

4 結論

殼聚糖/三聚磷酸鈉/果膠體系能夠有效包封褪黑素，在褪黑素加入量5 mg時，包封率達到52.14%；褪黑素殼聚糖微粒具有緩釋性能，符合Ritger-Peppas釋放機理Fick擴散；光降解試驗表明，褪黑素殼聚糖微粒可有效降低褪黑素的光降解速率；小麥干旱脅迫試驗表明，褪黑素殼聚糖微粒在降低褪黑素的使用量情況下，提高小麥幼苗SPAD值，促進根系發育，增強抗氧化酶活性，從而緩解干旱損傷，提高小麥幼苗抗旱能力。