張 靜,王剛獅,劉瑞霞,時寶凌,廉梅霞
(山西林業職業技術學院,山西 太原 030009)
試驗材料選用新鮮采挖的山西運城平陸縣野生葛根Pueraria lobata(Willd.)Ohwi作為外植體。試劑為植物激素:2,4-D,6-BA,KT;蔗糖,瓊脂粉。
1.2.1 MS、B5基本培養基誘導野葛根愈傷組織情況
選擇直徑約1 cm、外表皮無破損的根,切成10 cm 的長段,進行外植體消毒。先放入75% 的酒精溶液中30 s,用鑷子取出后,再倒入0.2% 的HgCl2水溶液中浸泡8 min,取出后用無菌水沖洗5~6 次。在超凈工作臺將滅菌后的根段切成0.5 cm 長的小段,接種于B5培養基和MS培養基中,激素種類和濃度一致,均為2 mg/L 2,4-D、0.5 mg/L KT。2 種培養基分別接種20 瓶,每瓶4 段外植體,置于培養箱中,條件為25℃、黑暗培養。每隔3 d 觀察培養情況,記錄生長狀況,30 d 后統計誘導率。
1.2.2 不同外源植物激素的添加對野葛愈傷組織誘導情況
在MS 基本培養基中添加外源激素,分別為2,4-D、6-BA、KT、NAA,激素的配比和濃度見正交試驗表1。試驗重復3次。

表1 外源植物激素對野葛愈傷組織誘導影響正交試驗Tab.1 The orthogonal effects of exogenous phytohormones on induction of wild callus
1.2.3 愈傷組織生長曲線繪制及不同時期總黃酮含量測定
稱取上一步培養的愈傷組織1.0±0.1 g,要求質地松軟,長勢良好。接種于繼代培養基中,培養基配方為:MS+蔗糖3%+0.6% 瓊脂+2.0 mg/L 2,4-D+0.5 mg/L KT。培養條件不變,黑暗、25℃。共接種90 瓶。培養周期為30 d,每隔2 d 取出6 瓶,用天平稱量愈傷組織的鮮質量并記錄。之后低溫烘干,取0.2 g 粉末,放入具塞錐形瓶中,加入20 mL 70% 的酒精,超聲波處理30 min,溫度為70℃,冷卻、過濾,等濃度的酒精定容至20 mL容量瓶中,用分光光度法測定吸光度,計算總黃酮含量。
1.2.4 光照條件對愈傷組織生長及總黃酮合成的影響
將接種的愈傷組織90 瓶,平均分成3 組。每組采用不同的光照周期:分別為24 h光照、16 h光照+8 h黑暗、24 h黑暗。培養30 d 后,稱量愈傷組織鮮質量,記錄。低溫烘干,提取、分光光度法測定不同光照時間對總黃酮含量的影響。
根據外植體出愈時間、愈傷組織誘導率、愈傷組織細胞狀態來評價愈傷組織誘效果。由表2可知:MS基本培養基誘導愈傷組織的效果最好,誘導率為95%。接種外植體后的第10 d,在根的橫斷面、去掉表皮的根表面,均長出淡黃色、質地松軟的愈傷組織圖1(1)。在培養25 d時,愈傷組織數量明顯增多,細胞疏松,分散性好,顏色鮮艷,質地軟嫩。相比較B5培養基中的愈傷組織,出現時間較晚,在18 d 才初露少量的細胞,后期生長速度緩慢,分散性差,顏色為黃褐色。

表2 基本培養基對野葛根愈傷組織誘導的影響Tab.2 The effects of basic media on induction of callus
使用SPSS19.0進行數據極差分析,見表3。
由表3極差R可知,2,4-D是影響野葛根愈傷組織誘導的最主要影響因素。最優激素組合為:A3B2C2D2。即:2.0 mg/L 2,4-D + 0.3 mg/L KT+ 1.0 mg/L 6-BA + 0.5 mg/L NAA。

表3 不同激素對野葛愈傷組織誘導的影響Tab.3 The effects of different hormones on induction of callus
在接種10 d 后,外植體的斷面開始形成黃白色的愈傷組織,在生長17 d時體積增大一倍,鮮質量為2.74 g,見圖1(2),在生長26 d 時,愈傷組織幾乎擴張至整瓶,鮮質量高達為7.51 g,見圖1(3);在培養28 d后,愈傷組織細胞停止生長,甚至有些開始死亡,顏色由淡黃色轉變為黃褐色,鮮質量在30 d時下降為6.67 g,見圖1(4)。生長曲線見圖2。
由圖2 可知:0~10 d 為愈傷組織生長的延滯期,10~22 d為愈傷組織指數生長期,22~26 d 為穩定期,26~30 d 為衰亡期。總黃酮的含量與細胞生長量呈正相關。延滯期總黃酮含量最低,為1.35%;在指數生長期,總黃酮含量迅速增高,在26 d時含量高達15.17%;到衰亡期總黃酮含量開始下降。

圖2 野葛根愈傷組織生長曲線與總黃酮含量變化Fig.2 The growth curve and callus total flavonoids content
由圖3可知:在光照24 h條件下,愈傷組織顏色為黃褐色圖1(5),鮮質量為7.56 g,總黃酮含量為16.75%。24 h黑暗條件下,愈傷組織為黃白色圖1(6),鮮質量6.3 g,總黃酮含量為14.83%。在16 h 光照+8 h 黑暗條件培養下,愈傷組織為淡黃色圖1(7),鮮質量為7.60 g,總黃酮含量為15.30%。因此,最適合愈傷組織培養的條件為16 h光照+8 h黑暗。

圖1 愈傷組織變化Fig.1 The changes of callus

圖3 光照時間對野葛細胞生長及總黃酮合成的影響Fig.3 The effects of light time on wild Ge cell growth and total flavonoid synthesis
基本培養基的作用是為植物細胞提供基本的營養,常用的基本培養基有4 中MS、B5、N6 和White。其中MS 培養基在組織培養中被廣泛使用,因為其具有較高濃度的無機鹽。而B5培養基中銨鹽含量低,適用于雙子葉植物的組織培養以及懸浮細胞培養[1];N6 培養基中營養成分簡單,氮源含量低,適用于谷類植物的花藥培養;White 培養基中無機鹽濃度低,一般用于生根培養[2]。
本試驗選取MS 和B5 基本培養基進行篩選。結果表明:在愈傷組織誘導階段,MS 培養基產生的愈傷組織誘導率高,細胞分散性好,是理想的愈傷組織誘導培養基。
一般情況下,在培養基中外植體脫分化形成愈傷組織,與所添加的外源植物激素的種類、濃度和配比有很大的關系。外源激素起著傳遞信號的作用,其作用效果與外植體中內源激素的種類和濃度密切相關,外源激素通過內源激素發揮作用[3]。因此,只有合理地使用各種外源激素,才能適應外植體對激素的特定要求,充分發揮激素的調節作用,從而誘導愈傷組織的產生[4]。
2,4-D對于愈傷組織的誘導和生長非常有效[5],一般情況下,誘導產生愈傷組織的2,4-D 的濃度多為0.1~2.0 mg/L。在本試驗中,單純使用2,4-D 時,愈傷組織可以快速形成,但細胞呈黏液化,因此,需要與其他的細胞分裂素一起使用,保證細胞呈現很好的顆粒狀與分散性。NAA 雖然不是愈傷組織誘導中重要的植物激素,但很多研究表明,NAA 對愈傷組織的誘導也有很重要的影響。林婭等[6]和龍雯虹[7]分別發現在月季和蘿卜愈傷組織的誘導中NAA的效果優于2,4-D;田文忠[8]在含2.0 mg/L 2,4-D 的培養基中添加1.0 mg/L KT 和1.0 mg/L NAA后,愈傷組織不再粘液化,并且顆粒增多。因此,本試驗選擇將NAA 作為誘導愈傷組織的激素,與2,4-D、KT 一起使用,得到了分散性好的疏松、顆粒狀的愈傷組織。
愈傷組織的生長過程是細胞分裂的過程,而細胞的分裂需要培養基為其提供養分,隨著細胞量的增多,培養基中的養分會逐漸消耗,錐形瓶的空間也會逐漸減小,而細胞的代謝產物隨著細胞生長的積累也會逐漸增多,過多的次級代謝產物又會對細胞造成傷害,因此,為了確定最適的繼代培養周期,本試驗對細胞的生長曲線進行了測定。
植物細胞的生長進程大致相同,生長曲線呈“S”型。包括4 個時期:①延遲期。指剛接入培養基的細胞還未適應新的環境,細胞生長緩慢的時期。②指數生長期。指經過延遲期的適應,加之培養基中營養充足,細胞迅速生長的時期。③穩定期。指隨著營養物質逐漸被消耗,細胞生長速度減緩,細胞的死亡率等于生長率的時期。④衰亡期。指培養基中營養物質消耗殆盡,細胞死亡率大于生長率的時期[9]。在本研究中通過愈傷組織生長曲線,可以看出野葛愈傷組織的停滯期較長,為10 d;整個生長周期為28 d左右,總黃酮在26 d左右達到最大。這一結果與陳剛等[10]的研究結果相一致。在藥用植物細胞培養中,細胞一般會在指數生長期后期,由初生代謝進入次生代謝[11],因而在穩定期末期可以獲得最高的次級代謝產物量。
光不僅是植物進行光合作用的能量來源,也作為重要的環境信號調節植物的基因表達、影響酶活性以及植物的形態建成等[2]。光照對藥用植物細胞培養的影響主要體現在光質、光強和光照時間上[12]。許多研究均表明,光照有利于植物細胞中黃酮物質的合成。如陳學森[13]將銀杏愈傷組織在不同光照條件下培養后,發現光照培養所得黃酮是暗培養的3 倍。許多研究[14]也證明光照可以加強黃酮生物合成過程中的關鍵酶(PAL)的活性。但是,光照時間過長會引起脅迫,導致產生酚類化合物,導致褐化的發生。因此,獲得高生物量和獲得高次級代謝產物的條件往往是矛盾的,尋找恰當的光周期是獲得高產與高效成分的關鍵。本研究的光周期為16 h光照+8 h黑暗此時,生物量與總黃酮含量均較高。