999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

不同來源的外泌體對特發性肺纖維化的免疫調節作用

2022-05-23 01:12:30吳佳敏張煒張興陳麒
新醫學 2022年5期

吳佳敏 張煒 張興 陳麒

【摘要】 特發性肺纖維化(IPF)是一種慢性進行性的間質性肺病,其發病機制目前尚無定論。成纖維細胞直接參與IPF過程的理論已被廣泛接受,同時研究認為IPF的形成、發展與炎癥、免疫息息相關,主要表現為免疫細胞與成纖維細胞間的相互作用。外泌體是細胞間進行生物信息通信的重要載體,不同細胞來源的外泌體攜帶著不同的信號因子,可作為免疫細胞與成纖維細胞的橋梁,在IPF的炎癥反應和免疫調節中發揮作用,同時外泌體或將成為臨床診斷和治療IPF的重要方法。該文就不同細胞來源的外泌體在IPF中的研究進展進行綜述,以了解外泌體作為細胞間信息交流的載體在調節IPF的形成與發展中的作用。

【關鍵詞】 特發性肺纖維化;外泌體;炎癥;免疫;成纖維細胞;間質性肺炎

【Abstract】 Idiopathic pulmonary fibrosis (IPF) is a chronic progressive interstitial lung disease. The pathogenesis of IPF remains elusive. The theory that fibroblasts directly participate in the IPF process has been widely accepted. Moreover, studies have demonstrated that the incidence and development of IPF is intimately related to inflammatory and immunity, which is mainly manifested with the interaction between immune cells and fibroblasts. Exosomes are important carriers for biological information communication between cells, and exosomes from different cell sources can carry different signal factors, which serve a bridge between immune cells and fibroblasts, and play a role in the inflammatory response and immune regulation of IPF. Therefore, exosomes may become a vital pattern for clinical diagnosis and treatment of IPF. In this article, research progress on the roles of exosomes from different cell sources in IPF was reviewed, aiming to understand the roles of exosomes, as the carriers of information communication between cells, in regulating the incidence and progression of IPF.

【Key words】 Idiopathic pulmonary fibrosis; Exosome; Inflammatory; immunity; Fibroblast; Interstitial pneumonia

特發性肺纖維化(IPF)是一種慢性進行性的間質性肺病,其主要特點是肺部纖維化、呼吸困難加重、肺功能下降以及病死率高[1]。目前認為IPF的發病機制主要與上皮細胞的反復損傷、異常組織損傷修復導致纖維化和膠原蛋白的積累等相關,研究表明炎癥細胞與成纖維細胞間的相互作用可促進IPF的發生與發展[2]。此外,作為信息交流載體的外泌體在IPF過程中的作用越來越受到研究者的關注,其可通過炎癥反應或免疫調節傳遞抑制或促進纖維化的物質來參與IPF的發展。為了解外泌體在調節IPF的形成與發展中的作用機制,本文就不同細胞來源的外泌體在IPF中的研究進展進行綜述。

一、外泌體的形成和功能

目前細胞外囊泡根據其生成方式主要分為3大類:外泌體、微囊泡和凋亡小體[3]。其中外泌體是由細胞膜向內生成內吞的囊泡,隨后形成囊泡腔,并在囊泡腔中形成體積更小的腔內囊泡,這些囊泡或是在細胞中降解、或是通過胞吐的方式釋放于細胞外(圖1)[4]。外泌體的膜結構中包含一系列特殊的表面蛋白,如膜轉運/融合蛋白、熱休克蛋白和四跨膜蛋白等[5]。免疫功能是外泌體所執行功能中的一個重要方面,在不同的病理因素刺激下,細胞產生的外泌體中所攜帶的物質和執行的功能皆會發生變化,呈現出一定的特異性,就目前的研究而言,這一形成過程的具體機制還有待進一步挖掘。

二、IPF的炎癥免疫反應

成纖維細胞參與IPF過程的理論已被廣泛接受,由于抗炎藥物及免疫抑制劑在IPF治療過程中療效欠佳,有研究者認為炎癥免疫機制可能并非是導致IPF的直接機制[6]。但也有研究者發現免疫細胞通過與成纖維細胞相互作用從而影響IPF的形成與發展[2]。IPF患者肺部2型輔助性T淋巴細胞(Th2)產生的細胞因子(如IL-4、IL-5和IL-13) 增多,其中IL-4和IL-13可促進巨噬細胞活化,誘導巨噬細胞Fra-2的表達[7]。Fra-2是人類IPF的致病因素之一[8]。另外,炎癥因子可刺激成纖維細胞的增殖及膠原蛋白的合成,從而加速IPF的進程[9]。免疫細胞與肺成纖維細胞的作用呈雙向性,被激活的纖維細胞可分泌促炎因子(IL-11、IL-6和TGF-β)和趨化因子刺激免疫細胞介導免疫反應[10-11]。炎癥細胞與成纖維細胞的相互作用過程中,外泌體作為信號載體,也參與了細胞間的信息交流,從而調節IPF的形成與發展。

三、不同細胞來源的外泌體對IPF的作用

近年來,外泌體在纖維化疾病中的作用越來越受到學者們的重視,通常不同細胞分泌的外泌體攜帶各種信息,包括炎癥因子、微RNA(miR)和基質蛋白等,參與IPF的各個過程。

1. 肺成纖維細胞來源的外泌體對IPF的作用

IPF表現為成纖維細胞樣細胞外基質(ECM)的擴展以及正常肺結構和功能的喪失[12]。成纖維細胞轉化為肌成纖維及ECM積累是造成IPF的直接因素,而肺成纖維細胞衍生的外泌體可影響肺部其他細胞,從而促進IPF[13]。目前研究顯示,激活Wnt蛋白介導的信號通路(如Wnt/β-catenin)也可促進IPF[14]。人肺成纖維細胞來源的外泌體富含Wnt5A,其可誘導肺成纖維細胞增殖[15]。轉化生長因子-β(TGF-β)作為關鍵的纖維化細胞因子,可刺激肺成纖維細胞中Wnt分泌所需的穿梭蛋白G蛋白偶聯受體177(GPR177)生成增加,進一步誘導Wnt5A分泌增多。肌成纖維細胞可產生載有TGF-β和Wnt/β-catenin信號分子的外泌體將纖維化信號傳至成纖維細胞,誘導其向肌成纖維細胞轉化[16]。此外,外泌體還可通過激活Wnt/β-catenin信號通路調節巨噬細胞活化從而促進IPF發生發展[17]。

2. 巨噬細胞來源的外泌體對IPF的作用

巨噬細胞是人體內固有免疫細胞之一,巨噬細胞在IPF過程中的作用受到了廣泛關注。一方面,巨噬細胞可分泌多種促進纖維化的細胞因子(如TGF-β和IL-13)[9]。另一方面,其與成纖維細胞的相互作用,被認為是IPF的“調節者”[18]。在急性肺損傷(ALI)過程中,巨噬細胞是肺泡灌洗液中外泌體的重要來源,而外泌體中攜帶多種促炎因子,其可激活嗜中性粒細胞分泌攜帶IL-10的外泌體,而IL-10反過來刺激巨噬細胞極化,這可能是導致ALI后纖維化的原因[19]。攜帶miR是巨噬細胞來源外泌體的另一種重要的作用形式[20]。如富含miR-155的外泌體在巨噬細胞活化后明顯增加,而這些外泌體可轉移至成纖維細胞中,并促進成纖維細胞表達炎癥因子(如IL-1β、IL-6和TNF-α等)[21]。巨噬細胞除了產生炎癥因子誘導其他細胞增殖釋放基質成分外,還可通過外泌體攜帶并分泌ECM。有學者用博來霉素建立IPF模型,其中巨噬細胞對于Fra-2和Ⅵ型膠原蛋白(ColⅥ)基因的表達上調,且巨噬細胞來源的外泌體中檢測到ColⅥ的3條肽鏈(α1、α2和α3)[7]。無獨有偶,Tsitoura等[22]通過免疫熒光法同樣發現膠原蛋白1a主要在肺泡巨噬細胞中過度表達。由此可見,巨噬細胞來源的外泌體可攜帶趨化因子和炎癥因子來募集成纖維細胞及其他炎性細胞,直接刺激成纖維細胞轉化為肌成纖維細胞,甚至將膠原蛋白運輸至細胞外。

3. 間充質干細胞(MSC)來源的外泌體對IPF的作用

目前IPF的治療手段有限且預后差,因此學者在尋找更有效的治療方式時將目光轉向MSC移植[23]。MSC是一類具有自我更新和多向分化潛能的多能干細胞,具有減少膠原蛋白等的沉積,改善IPF的程度,降低肺部炎癥指標等作用,并被應用于IPF的治療[24-25]。現有研究表明,在IPF過程中,MSC可通過抑制Smad-3 /TGF-β介導的信號通路,下調炎癥因子(TNF-α、IL-6)的表達來發揮抗炎作用[26]。MSC的具體作用機制被認為主要是細胞外囊泡(包括外泌體)的旁分泌[27]。目前研究表明,MSC可以分泌具有免疫活性的外泌體,并通過外泌體調節肺巨噬細胞表型,促炎性經典活化巨噬細胞受到抑制,而與之相互拮抗的替代性活化巨噬細胞得到激活,進而起到抑制肺部炎癥和免疫反應的作用[23]。Mansouri等[28]研究也發現在博來霉素誘導的IPF模型中,MSC來源的外泌體(MEx)可使促炎性經典單核細胞比例減少,而非經典單核細胞比例增加,改善肺部形態,減少膠原蛋白沉積并恢復肺部結構,甚至MEx可直接干預骨髓來源的單核細胞向非經典單核細胞轉變。目前多項體內、體外研究的數據均表明MSC可通過抑制促炎途徑和上調抗炎途徑來預防和治療IPF,MSC在IPF患者的治療中也表現出正面作用[29]。因此,MSC有望成為IPF患者安全有效的治療方式之一。

4. 其他來源的外泌體對IPF的作用

肌成纖維細胞一直是IPF研究的關鍵點,周細胞是肌成纖維細胞的主要來源之一[30]。周細胞是存在于體內血管化組織中的多能細胞,參與免疫應答的調節。在炎性細胞因子的刺激下,周細胞可分泌大量趨化因子和細胞因子并將免疫細胞吸引至炎癥部位,還可促進免疫細胞的跨內皮遷移[31]。在肺纖維的臨床或實驗研究中,肺微血管內皮細胞來源的外泌體中,miR-107均下調,并與周細胞誘導的纖維化相關[32]。另有學者在IPF模型小鼠的支氣管-肺泡灌洗液中分離出含有let-7d的外泌體,可直接靶向和抑制TGF-β受體1,發揮其調節肺周細胞纖維化相關信號通路和基因表達的作用[33]。

四、小 結

體內大多數細胞均可產生外泌體,且可從各種體液中分離獲得。外泌體被廣泛認為是各種生理病理情況下細胞間信息傳遞的重要載體。在IPF過程中,根據不同細胞來源,外泌體可攜帶促進或者抑制肺纖維形成的物質,發揮截然相反的作用,這一功能尤其表現在免疫細胞之間或者其他細胞與免疫細胞之間。但是目前對于外泌體的研究并不局限于此,最新研究表明吸入肺干細胞來源的外泌體可促進IPF小鼠的肺修復[34]。隨著對IPF研究的深入,外泌體或將成為臨床治療IPF的重要途徑。

參 考 文 獻

[1] Martinez F J, Lederer D J. Focus on idiopathic pulmonary fibrosis: advancing approaches to diagnosis, prognosis, and treatment. Chest, 2018, 154(4): 978-979.

[2] Heukels P, Moor C C, von der Thüsen J H, et al. Inflammation and immunity in IPF pathogenesis and treatment. Respir Med, 2019, 147: 79-91.

[3] 邊素艷, 劉宏斌. 細胞外囊泡的分離及鑒定方法. 新醫學, 2019, 50(9): 658-662.

[4] Hessvik N P, Llorente A. Current knowledge on exosome biogenesis and release. Cell Mol Life Sci, 2018, 75(2): 193-208.

[5] Perez-Hernandez D, Gutiérrez-Vázquez C, Jorge I, et al. The intracellular interactome of tetraspanin-enriched microdomains reveals their function as sorting machineries toward exosomes. J Biol Chem, 2013, 288(17): 11649-11661.

[6] Ayed K, Serairi Beji R, Jameleddine S. Idiopathic pulmonary fibrosis: pathophysiological data. Tunis Med, 2017, 95(8/9): 756-766.

[7] Ucero A C, Bakiri L, Roediger B, et al. Fra-2-expressing macrophages promote lung fibrosis in mice. J Clin Invest, 2019, 129(8): 3293-3309.

[8] Eferl R, Hasselblatt P, Rath M, et al. Development of pulmonary fibrosis through a pathway involving the transcription factor Fra-2/AP-1. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, 105(30): 10525-10530.

[9] Li D, Guabiraba R, Besnard A G, et al. IL-33 promotes ST2-dependent lung fibrosis by the induction of alternatively activated macrophages and innate lymphoid cells in mice. J Allergy Clin Immunol, 2014, 134(6): 1422-1432.

[10] Ng B, Dong J, Viswanathan S, et al. Fibroblast-specific IL-11 signaling drives chronic inflammation in murine fibrotic lung disease. FASEB J, 2020, 34(9): 11802-11815.

[11] Fernando M R, Giembycz M A, McKay D M. Bidirectional crosstalk via IL-6, PGE2 and PGD2 between murine myofibroblasts and alternatively activated macrophages enhances anti-inflammatory phenotype in both cells. Br J Pharmacol, 2016, 173(5): 899-912.

[12] Chanda D, Otoupalova E, Smith S R, et al. Developmental pathways in the pathogenesis of lung fibrosis. Mol Aspects Med, 2019, 65: 56-69.

[13] Kadota T, Yoshioka Y, Fujita Y, et al. Extracellular vesicles from fibroblasts induce epithelial-cell senescence in pulmonary fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol, 2020, 63(5): 623-636.

[14] Shi J, Li F, Luo M, et al. Distinct roles of Wnt/β-catenin signaling in the pathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease and idiopathic pulmonary fibrosis. Mediators Inflamm, 2017, 2017: 3520581.

[15] Martin-Medina A, Lehmann M, Burgy O, et al. Increased extracellular vesicles mediate Wnt5A signaling in idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med, 2018, 198 (12): 1527-1538.

[16] van de Vlekkert D, Demmers J, Nguyen X X, et al. Excessive exosome release is the pathogenic pathway linking a lysosomal deficiency to generalized fibrosis. Sci Adv, 2019, 5(7): eaav3270.

[17] Feng Y, Ren J, Gui Y, et al. Wnt/β-catenin-promoted macrophage alternative activation contributes to kidney fibrosis. J Am Soc Nephrol, 2018, 29(1): 182-193.

[18] Hough K P, Chanda D, Duncan S R, et al. Exosomes in immunoregulation of chronic lung diseases. Allergy, 2017, 72(4): 534-544.

[19] Ye C, Li H, Bao M, et al. Alveolar macrophage - derived exosomes modulate severity and outcome of acute lung injury. Aging, 2020, 12(7): 6120-6128.

[20] Guiot J, Cambier M, Boeckx A, et al. Macrophage-derived exosomes attenuate fibrosis in airway epithelial cells through delivery of antifibrotic miR-142-3p. Thorax, 2020, 75(10): 870-881.

[21] Wang C, Zhang C, Liu L, et al. Macrophage-derived mir-155-containing exosomes suppress fibroblast proliferation and promote fibroblast inflammation during cardiac injury. Mol Ther, 2017, 25(1): 192-204.

[22] Tsitoura E, Wells A U, Karagiannis K, et al. miR-185/Akt and miR-29a/collagen 1a pathways are activated in IPF BAL cells. Oncotarget, 2016, 7(46): 74569-74581.

[23] Willis G R, Fernandez-Gonzalez A, Anastas J, et al. Mesenchymal stromal cell exosomes ameliorate experimental bronchopulmonary dysplasia and restore lung function through macrophage immunomodulation. Am J Respir Crit Care Med, 2018, 197 (1): 104-116.

[24] 郭春, 葉小康. 間充質干細胞胞外囊泡的研究及應用進展. 中國現代醫學雜志, 2021, 31(6): 79-84.

[25] Zhang B, Yin Y, Lai R C, et al. Mesenchymal stem cells secrete immunologically active exosomes. Stem Cells Dev, 2014, 23(11): 1233-1244.

[26] Gad E S, Salama A A A, El-Shafie M F, et al. The anti-fibrotic and anti-inflammatory potential of bone marrow-derived mesenchymal stem cells and nintedanib in bleomycin-induced lung fibrosis in rats. Inflammation, 2020, 43(1): 123-134.

[27] Toh W S, Lai R C, Zhang B, et al. MSC exosome works through a protein-based mechanism of action. Biochem Soc Trans, 2018, 46(4): 843-853.

[28] Mansouri N, Willis G R, Fernandez-Gonzalez A, et al. Mesenchymal stromal cell exosomes prevent and revert experimental pulmonary fibrosis through modulation of monocyte phenotypes. JCI Insight, 2019, 4(21): e128060.

[29] Glassberg M K, Minkiewicz J, Toonkel R L, et al. Allogeneic human mesenchymal stem cells in patients with idiopathic pulmonary fibrosis via intravenous delivery (AETHER): a phase I safety clinical trial. Chest, 2017, 151(5): 971-981.

[30] Yamaguchi M, Hirai S, Tanaka Y, et al. Pericyte-myofibroblast transition in the human lung. Biochem Biophys Res Commun, 2020, 528(2): 269-275.

[31] Proebstl D, Voisin M B, Woodfin A, et al. Pericytes support neutrophil subendothelial cell crawling and breaching of venular walls in vivo. J Exp Med, 2012, 209(6): 1219-1234.

[32] Navarro R, Compte M, álvarez-Vallina L, et al. Immune regulation by pericytes: modulating innate and adaptive immunity. Front Immunol, 2016, 7: 480.

[33] Xie H, Gao Y M, Zhang Y C, et al. Low let-7d exosomes from pulmonary vascular endothelial cells drive lung pericyte fibrosis through the TGFβRI/FoxM1/Smad/β-catenin pathway. J Cell Mol Med, 2020, 24(23): 13913-13926.

[34] Dinh P U C, Paudel D, Brochu H, et al. Inhalation of lung spheroid cell secretome and exosomes promotes lung repair in pulmonary fibrosis. Nat Commun, 2020, 11(1): 1064.

(收稿日期:2021-09-07)

(本文編輯:林燕薇)

主站蜘蛛池模板: 亚洲另类国产欧美一区二区| 欧美精品成人一区二区在线观看| 国产va视频| 日韩精品中文字幕一区三区| 呦视频在线一区二区三区| 免费无码AV片在线观看国产| 亚洲综合国产一区二区三区| 日韩av在线直播| 欧美a级完整在线观看| 91在线精品免费免费播放| 高清色本在线www| 国产精品综合久久久| 日韩av手机在线| 国产精品美女网站| 国产成人乱码一区二区三区在线| yjizz视频最新网站在线| 久久久久久久97| 亚洲激情区| 欧美中文字幕在线播放| 日本三级黄在线观看| 国产69囗曝护士吞精在线视频| 欧美三级自拍| 51国产偷自视频区视频手机观看 | 波多野结衣一区二区三区四区视频| 一本大道无码高清| 国产网站黄| 日韩毛片免费视频| 亚洲浓毛av| 久久99国产乱子伦精品免| 暴力调教一区二区三区| 91麻豆国产精品91久久久| 国产精品视频第一专区| 美女啪啪无遮挡| 99热这里只有免费国产精品| 亚洲AV永久无码精品古装片| 国产精品亚洲αv天堂无码| 国产欧美日韩18| 久久精品aⅴ无码中文字幕| 毛片久久久| 在线观看精品国产入口| 亚洲天堂网在线观看视频| 人妻无码一区二区视频| 亚洲国产午夜精华无码福利| 国产极品美女在线观看| 找国产毛片看| 国产精品30p| 这里只有精品在线播放| 在线欧美一区| 美女被狂躁www在线观看| 一级毛片中文字幕| 中文字幕在线播放不卡| 日韩亚洲综合在线| 91精品啪在线观看国产91| 国产黄色片在线看| 日韩不卡免费视频| 手机永久AV在线播放| 伦伦影院精品一区| 欧美成人免费| 色老头综合网| 五月天在线网站| 欧美影院久久| 亚洲av无码人妻| 一本大道视频精品人妻| 制服丝袜无码每日更新| 国产国产人成免费视频77777| 71pao成人国产永久免费视频 | 久久婷婷六月| 激情国产精品一区| 夜夜操狠狠操| 天天综合网色| 久久国产黑丝袜视频| 亚洲综合国产一区二区三区| 精品成人一区二区| 国产精品网曝门免费视频| 欧美亚洲第一页| 国产日韩欧美中文| 久久国产黑丝袜视频| 在线播放91| 精品久久香蕉国产线看观看gif| 国产91久久久久久| 国内毛片视频| 无码中文字幕精品推荐|