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基于微針途徑的艱難梭菌類毒素A經皮免疫效應研究

2022-05-14 06:46:44何菁榮代文秀王月穎傅思武
中國當代醫藥 2022年11期
關鍵詞:小鼠血清

何菁榮 張 祎 代文秀 王月穎 傅思武

西北民族大學醫學部,甘肅蘭州 730030

艱難梭菌為革蘭氏陽性厭氧芽孢桿菌,通常定植于人體腸道,是抗生素相關性腹瀉的主要病原菌之一。當腸道微生態被破壞,艱難梭菌乘機大量繁殖產毒,導致艱難梭菌感染,其致病毒素以A 毒素(TcdA)和B 毒素(TcdB)為主,故目前艱難梭菌感染的預防及疫苗研究以TcdA、TcdB 為主要候選抗原[1-2]。面對國內外艱難梭菌感染的新特點和國內潛在爆發流行的趨勢,積極研究基于艱難梭菌毒素A 疫苗并探索其最佳疫苗免疫途徑,可以從根本上預防艱難梭菌感染的發生,有效阻止耐藥菌株的擴散[3-4]。目前常用的免疫方式有腹腔注射、口服免疫、黏膜免疫[5-6]等,微針作為一種新型經皮免疫方式,通過在皮膚造出大量微細管道,使抗原活性成分快速滲入,有效地克服皮膚角質層屏障作用;不僅避免了口服給藥帶來的胃腸道副作用及肝臟的“首過效應”,且減弱了注射免疫的痛感及針刺恐懼癥的限制,具有精準、快速,安全等特點[7-9]。本研究通過比較微針免疫與腹腔注射給藥兩種途徑的免疫效果,探討基于微針途徑的艱難梭菌類毒素A 疫苗的黏膜免疫效應。

1 對象與方法

1.1 實驗動物

SPF 級BALB/c 小鼠,雌性18~22 g,6 周齡,購自中國農業科學院蘭州獸醫研究所實驗動物中心,本研究已經西北民族大學實驗動物倫理委員會審核通過。于室溫22~26℃,濕度適宜,無菌環境喂養。

1.2 主要儀器與試劑

BHI 培養基(美國BBL 公司);DEAE-Toyopearl 650M(日本東洋曹達株式會社);三溴乙醇(SIGMA,T48402-25 g);酶標儀(美國BIO-RAD680);96 孔ELISA板、1 ml 無菌注射器、HRP-兔抗鼠(蘭州生物制品研究所);微針(YMR30,0.3 mm,540 Needle);ABTS 底物、PBST 封閉液、甲醛、37℃培養箱(西北民族大學中心實驗室)。

1.3 實驗分組及處理

1.3.1 艱難梭菌類毒素A 疫苗制備 參考傅思武等[10]介紹的方法制備純化艱難梭菌A 毒素后,加入終濃度0.4%的甲醛,放入37℃培養箱,脫毒10~14 d。細胞毒檢測合格后,經透析,測定蛋白濃度,即得到艱難梭菌類毒素A 疫苗。

1.3.2 疫苗免疫 適應喂養1 周后,將24 只BALB/c 小鼠采用隨機數字表法將其分為對照組與觀察組,每組各12 只(每組免疫劑量均為10 μg/ml)。觀察組將小鼠背部3~5 cm2面積進行脫毛,次日用三溴乙醇麻醉(400 mg/kg)消毒后,利用微針按照垂直和水平方向分別滾動5 次,滴加抗原待吸收后將小鼠放回飼養盒,觀察。對照組注射抗原后將小鼠放回飼養盒,隨時觀察。

兩組小鼠皆使用艱難梭菌類毒素A 分別于處理第0、7、14、28、42 天共分5 次進行免疫。

1.4 觀察指標及檢測方法

1.4.1 糞便IgA 及血清中特異性IgG 的效價檢測 于處理第7、14、28、42 天前,小鼠尾部取血分離得血清;小鼠糞便樣品用5 倍體積的NS 稀釋。使用間接酶聯免疫吸附測定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)法測定效價,方法如下:以純化的艱難梭菌A毒素包被ELISA 板,用含10%BSA 的PBST 封閉,小鼠血清為一抗,HRP-兔抗鼠免疫球蛋白G(immunoglobulin G,IgG)為二抗,ABTS 底物顯色后測定OD450值。

1.4.2 艱難梭菌產毒株攻毒實驗 末次免疫后第7 天,對已經免疫的BALB/c 小鼠使用艱難梭菌產毒株VPI10463(1×108CFU/ml)灌胃,進行人工感染,單只隔離觀察并統計動物發病及死亡情況,再將艱難梭菌感染2 d 后的小鼠處死,取盲腸中段用4%多聚甲醛固定,石蠟包埋、切片、HE 常規染色,光鏡下觀察盲腸組織結構。

1.5 統計學方法

使用SPSS 19.0 統計學軟件處理數據,計量資料先進行正態性檢驗和方差齊性檢驗,滿足正態性且兩組方差齊的資料采用均數±標準差(±s)表示,采用重復測量方差分析主效應、時間效應和交互效應,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,組內不同時間采用配對樣本t檢驗,以P<0.05 為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 兩組小鼠血清特異性IgG 測定結果的比較

整體分析發現:兩組小鼠血清抗體IgG 效價的組間比較,差異無統計學意義(P>0.05),但兩組小鼠血清抗體IgG 效價的時間、交互作用比較,差異有統計學意義(P<0.05),提示隨著免疫次數的增加,兩組小鼠血清抗體IgG 效價皆逐步增高。進一步進行兩兩比較,組間比較:兩組處理第7、14、42 天的血清抗體IgG 效價比較,差異無統計學意義(P>0.05);觀察組處理第28 天的血清抗體IgG 效價低于對照組,差異有統計學意義(P<0.05)。組內比較:兩組處理第14、28、42 天的血清抗體IgG 效價分別高于本組處理第7天,處理第42 天的血清抗體IgG 效價均高于本組處理第14、28 天,差異有統計學意義(P<0.05);觀察組處理第28 天的血清抗體IgG 效價與本組處理第14 天比較,差異無統計學意義(P>0.05);對照組處理第28 天的血清抗體IgG 效價高于本組處理第14 天,差異有統計學意義(P<0.05)(表1)。

表1 兩組小鼠血清IgG 效價的比較(±s)

表1 兩組小鼠血清IgG 效價的比較(±s)

注 IgG:免疫球蛋白G

時間觀察組(n=12)對照組(n=12)t 值P 值處理第7 天處理第14 天處理第28 天處理第42 天F 時間,P 時間F 組間,P 組間F 交互,P 交互0.189±0.063 0.705±0.221 0.781±0.074 0.873±0.150 0.243±0.154 0.634±0.152 0.858±0.081 0.964±0.093 0.930 0.992 3.664 1.915 0.372 0.343 0.004 0.082 166.027,<0.001 0.825,0.383 3.910,0.017 t 處理第14 天與處理第7 天比較值P 處理第14 天與處理第7 天比較值t 處理第28 天與處理第7 天比較值P 處理第28 天與處理第7 天比較值t 處理第42 天與處理第7 天比較值P 處理第42 天與處理第7 天比較值t 處理第28 天與處理第14 天比較值P 處理第28 天與處理第14 天比較值t 處理第42 天與處理第14 天比較值P 處理第42 天與處理第14 天比較值t 處理第42 天與處理第28 天比較值P 處理第42 天與處理第28 天比較值10.025<0.001 24.001<0.001 20.682<0.001 1.344 0.206 5.321<0.001 2.782 0.018 6.387<0.001 13.58<0.001 15.929<0.001 4.490 0.001 7.745<0.001 4.526 0.001

2.2 兩組小鼠糞便IgA 測定結果的比較

整體分析發現:兩組小鼠糞便免疫球蛋白A(immunoglobulin A,IgA)效價的時間、組間、交互作用比較,差異均有統計學意義(P<0.05),提示兩組小鼠糞便中IgA 效價隨著免疫次數的增加而逐步增高,觀察組的免疫效果優于對照組。進一步進行兩兩比較,組間比較:兩組處理第7 天的糞便IgA 效價比較,差異無統計學意義(P>0.05);觀察組處理第14、28、42 天的糞便IgA 效價高于對照組,差異有統計學意義(P<0.05)。組內比較:兩組處理第42 天的糞便IgA 效價高于本組處理第7、14、28 天,差異有統計學意義(P<0.05);觀察組處理第14、28 天的糞便IgA 效價高于本組處理第7 天,差異有統計學意義(P<0.05);對照組處理第14、28 天的糞便IgA 效價與本組處理第7天比較,差異無統計學意義(P>0.05);兩組處理第28 天的糞便IgA 效價與本組處理第14 天比較,差異均無統計學意義(P>0.05)(表2)。

表2 兩組小鼠糞便IgA 效價的比較(±s)

表2 兩組小鼠糞便IgA 效價的比較(±s)

注 IgG:免疫球蛋白A

時間觀察組(n=12)對照組(n=12)t 值P 值處理第7 天處理第14 天處理第28 天處理第42 天F 時間,P 時間F 組間,P 組間F 交互,P 交互0.486±0.087 0.699±0.080 0.714±0.163 0.848±0.129 0.540±0.149 0.570±0.075 0.589±0.060 0.669±0.086 1.007 3.951 2.570 4.678 0.335 0.002 0.026 0.001 16.874,<0.001 11.658,0.006 6.710,0.001 t 處理第14 天與處理第7 天比較值P 處理第14 天與處理第7 天比較值t 處理第28 天與處理第7 天比較值P 處理第28 天與處理第7 天比較值t 處理第42 天與處理第7 天比較值P 處理第42 天與處理第7 天比較值t 處理第28 天與處理第14 天比較值P 處理第28 天與處理第14 天比較值t 處理第42 天與處理第14 天比較值P 處理第42 天與處理第14 天比較值t 處理第42 天與處理第28 天比較值P 處理第42 天與處理第28 天比較值7.862<0.001 3.827 0.003 8.019<0.001 0.265 0.796 3.261 0.008 2.650 0.023 0.668 0.518 1.100 0.295 2.583 0.025 0.692 0.503 2.825 0.017 2.626 0.024

2.3 組織病理學特點

艱難梭菌產毒株攻毒后,兩組小鼠均受到不同程度的保護,小鼠全部存活。處死小鼠后,小鼠盲腸病理切片結果顯示:未經免疫的小鼠攻毒后,表現為小鼠黏膜上皮潰瘍、伴有充血、水腫、大量粒細胞浸潤的黏膜炎癥(圖1,封四);對照組與觀察組小鼠的腸黏膜損傷程度輕微,上皮結構較完整,僅表現為輕度炎癥(圖2、3,封四)。

3 討論

3.1 艱難梭菌感染治療現狀

目前,臨床上主要采用萬古霉素、甲硝唑、非達霉素等抗生素進行艱難梭菌感染治療,但仍有15%~35%的復發率[11]。其他的防治措施有:益生菌治療[12]、糞菌移植[13]、手術治療等。進行臨床試驗的治療藥物及生物制劑有:毒素吸附劑Tolevamer、免疫球蛋白、單克隆抗體、艱難梭菌疫苗[14]等。然而,由于高致病菌株的出現和菌株耐藥的增加,加上目前尚無安全合格的疫苗,艱難梭菌感染性疾病的防治仍是一個非常棘手的難題。本研究針對TcdA 制備出艱難梭菌類毒素A 疫苗免疫小鼠后,以艱難梭菌感染各疫苗組,小鼠無死亡現象,說明CDI 疫苗可有效預防艱難梭菌感染[15-16];同時研究微針免疫途徑保護效果及可能存在的問題,結合小鼠免疫后血清學特異抗體IgG 效價、糞便中黏膜抗體糞便中IgA 效價、攻毒后小鼠組織學切片病理觀察結果整體分析發現:對照組與觀察組的血清特異抗體IgG 效價的時間、交互作用比較,差異有統計學意義(P<0.05),兩組小鼠的血清特異抗體IgG效價組間比較,差異無統計學意義(P>0.05)。兩組小鼠糞便中IgA 效價的時間、組間、交互作用比較,差異均有統計學意義(P<0.05);攻毒后小鼠無死亡現象,盲腸病理切片中兩組小鼠僅表現為輕度的黏膜炎癥。綜合提示微針介導艱難梭菌類毒素疫苗進入機體后,可產生效果良好的黏膜免疫效果。

3.2 微針艱難梭菌類毒素A 疫苗的前景

針對耐藥菌的控制,世界衛生組織(World Health Organization,WHO)認為只有疫苗的群體免疫才能減少這些廣譜耐藥菌的擴散[17]。且迄今為止,腸道細菌性疫苗的防治效果不甚理想,考慮到抗生素制劑本身的缺點,積極研制高效、安全的疫苗是控制腸道細菌感染的關鍵手段。目前研究中的疫苗有被動免疫疫苗、減毒疫苗、活菌疫苗、DNA 重組疫苗等,但尚無疫苗面市[18]。微針作為一種新型物理促滲技術,與傳統注射免疫相比,能更為有效地將疫苗抗原投遞給皮下的抗原遞呈細胞網,使其產生黏膜免疫,同時黏膜免疫的產生可以有效地阻擋來自黏膜的細菌和病毒感染[19]。除此之外,微針在用藥安全性及患者依從性上也具明顯優勢,在醫藥領域主要針對惡性腫瘤、糖尿病、免疫治療、類風濕性關節炎等方面進行熱點研究[20-21],然而現研發階段中微針僅適用于短期內釋放且高效的制劑,對于需長期緩慢釋放的藥物仍需重點探索。本實驗初步測試了艱難梭菌類毒素A 疫苗微針經皮接種的黏膜免疫效果,為艱難梭菌類毒素人用疫苗的研制提供新的理論與技術參考。

綜上所述,基于微針途徑的艱難梭菌疫苗經皮免疫效應良好,提示微針可以用于蛋白類毒素疫苗黏膜免疫且具有較好免疫效果,今后將針對抗原通過微針介導進入黏膜后的分子免疫學機制進行更為深入的研究。

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