重組KP52蛋白在小鼠GV期卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)成熟的作用及相關(guān)機(jī)制

錢(qián)晨曦，董 杰，雷 暉，陳書(shū)強(qiáng)，蘆 潔，金 妮，王曉紅

(空軍軍醫(yī)大學(xué)唐都醫(yī)院婦產(chǎn)科生殖醫(yī)學(xué)中心，陜西 西安 710032)

卵母細(xì)胞體外成熟(in vitro maturation，IVM)是輔助生殖技術(shù)之一，即在沒(méi)有或很少外源性促性腺激素刺激后，從卵巢組織中收集較小的未成熟卵母細(xì)胞，在體外培養(yǎng)體系中培養(yǎng)至成熟的過(guò)程[1]。與傳統(tǒng)體外受精聯(lián)合胚胎移植技術(shù)(in vitro fertilization，IVF)相比，IVM具有諸多優(yōu)勢(shì)，如降低輔助生殖治療的成本，且可不需要IVF過(guò)程中的超促排卵治療，避免了高雌激素的風(fēng)險(xiǎn)，可有效預(yù)防卵巢過(guò)度刺激綜合征的發(fā)生[2]；此外，IVM可以充分利用活體取卵中獲得的未成熟卵母細(xì)胞，減少卵母細(xì)胞的浪費(fèi)，擴(kuò)展了安全的供卵途徑，在多囊卵巢綜合征不孕患者的臨床治療和女性生育力保存方面具有廣泛的應(yīng)用和重要的價(jià)值。雖然IVM與傳統(tǒng)IVF相比有諸多優(yōu)勢(shì)，但目前全球IVM的臨床妊娠率(25%～30%)仍顯著低于傳統(tǒng)IVF(45%～50%)。從1965年Edwords團(tuán)隊(duì)首次利用體外培養(yǎng)技術(shù)使卵母細(xì)胞發(fā)育成熟以來(lái)，臨床上應(yīng)用的IVM培養(yǎng)液雖然略有不相同，但主要促成熟因子都是促卵泡激素(follicle stimulating hormone，F(xiàn)SH)或表皮生長(zhǎng)因子[2,3]，該體系最大的問(wèn)題是卵母細(xì)胞核質(zhì)成熟不同步，從而影響后續(xù)胚胎發(fā)育潛能，導(dǎo)致臨床妊娠率較低[4]。因此，探索更合適IVM培養(yǎng)液中的促成熟因子、優(yōu)化IVM培養(yǎng)體系對(duì)IVM的推廣應(yīng)用和發(fā)展尤為重要。

Kisspeptin(KISS1)是由KISS1基因編碼的多肽，在體內(nèi)被水解為不同大小的片段發(fā)揮作用，根據(jù)其片段大小命名為KP10、KP13、KP54(嚙齒動(dòng)物中為KP52)，這些多肽片段通過(guò)與其受體(kisspeptin receptor，KISS1R)結(jié)合后發(fā)揮功能。一方面，中樞神經(jīng)系統(tǒng)-下丘腦的前腹側(cè)室周核和弓狀核存在合成和分泌kisspeptin蛋白的kisspeptin神經(jīng)元[5]，其分泌的kisspeptin蛋白可以與促性腺激素釋放激素(gonadotropin releasing hormone，GnRH)神經(jīng)元上的KISS1R結(jié)合，調(diào)節(jié)GnRH的分泌，從而發(fā)揮對(duì)下丘腦-垂體-性腺軸的調(diào)節(jié)作用[6]。另一方面，在外周組織尤其是生殖發(fā)育相關(guān)組織，如睪丸、卵巢、子宮、胎盤(pán)等組織中廣泛表達(dá)KISS1基因及其受體KISS1R[7,8]。Kisspeptin可通過(guò)直接作用調(diào)節(jié)外周生殖器官或組織功能，尤其是在卵巢組織中，顆粒細(xì)胞分泌的kisspeptin蛋白通過(guò)與其自身和卵母細(xì)胞上的受體結(jié)合，調(diào)節(jié)卵泡和卵母細(xì)胞的發(fā)育成熟[9]。據(jù)此，我們推測(cè)在當(dāng)前的IVM體外成熟培養(yǎng)液中添加kisspeptin可能提高卵母細(xì)胞成熟率。本研究擬通過(guò)在IVM培養(yǎng)液中添加重組小鼠KP52蛋白，探索其對(duì)小鼠生發(fā)泡(germinal vesicle，GV)期卵母細(xì)胞的體外成熟作用及潛在機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

①實(shí)驗(yàn)動(dòng)物：6周齡C57BL/6J雌鼠，購(gòu)于北京華阜康生物科技股份有限公司。飼養(yǎng)環(huán)境為恒溫、半日光照半日黑暗環(huán)境(早8：00開(kāi)燈，晚8：00熄燈)，所有飼料、墊料、飲水均經(jīng)高壓滅菌，自由飲食飲水。所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)均經(jīng)空軍軍醫(yī)大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。②重組KP52蛋白：KISS1基因直接合成后連接于pET質(zhì)粒上并表達(dá)于感受態(tài)大腸桿菌中，利用Ni柱親和層析法將帶有His標(biāo)簽的目的蛋白純化出來(lái)，并利用蛋白濃縮管進(jìn)行目的蛋白的濃縮，然后用二喹啉甲酸蛋白定量法檢測(cè)目的蛋白濃度，以便下一步實(shí)驗(yàn)中的定量。③主要試劑與儀器設(shè)備：孕馬血清促性腺激素(pregnant mare serum gonadotropin，PMSG)、人絨毛膜促性腺激素(human chorionic gonadotrophin，HCG)為美國(guó)Merck Millipore品牌；胎牛血清為美國(guó)Gibco品牌；礦物油、srcl2為美國(guó)Sigma品牌；M199培養(yǎng)基為美國(guó)HyClone品牌；透明質(zhì)酸酶、M2培養(yǎng)液、CM培養(yǎng)液、KSOM培養(yǎng)液、rFSH均為美國(guó)Merck品牌；KP52蛋白購(gòu)于上海生工生物工程股份有限公司；細(xì)胞松弛素B為美國(guó)MedChemExpress品牌；LCA-FITC為美國(guó)Invitrogen品牌；環(huán)磷酸腺苷(cyclic adenosine monophosphate，cAMP) 檢測(cè)試劑盒購(gòu)自美國(guó)BioVision公司。

1.2 卵母細(xì)胞的收集與體外培養(yǎng)

6周齡C57BL/6J雌鼠于下午3：00進(jìn)行腹腔注射PMSG(7.5IU/只)，48小時(shí)后脫頸處死，取出卵巢組織，于37℃提前復(fù)溫的M2操作液中用1mL注射器針頭戳破卵泡，在體式顯微鏡下挑選出形態(tài)大小均一的卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體(cumulus-oocyte complexes，COCs)，并用M2操作液洗三次再進(jìn)行下一步培養(yǎng)。

取出的COCs置于礦物油覆蓋的IVM培養(yǎng)液滴中(IVM培養(yǎng)液需提前于37℃、5%CO2孵箱中平衡4h以上，IVM培養(yǎng)液為50μL/滴，每滴IVM培養(yǎng)液中放入30枚COCs)，于37℃、5%CO2孵箱中靜置培養(yǎng)16～18h，通過(guò)觀察其第一極體排出情況來(lái)統(tǒng)計(jì)成熟率。

1.3 孤雌激活與皮質(zhì)顆粒染色

挑選發(fā)育成熟的MⅡ卵母細(xì)胞去除顆粒細(xì)胞后移入含5.34mg/mL srcl2的CM培養(yǎng)液中，并于37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)1h后取出，用提前4h 37℃預(yù)熱的KSOM培養(yǎng)液洗5次，再移入含5μg/mL細(xì)胞松弛素B的KSOM培養(yǎng)液中，并于37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)4h，再次用提前4h 37℃預(yù)熱的KSOM培養(yǎng)液洗5次，最后移入預(yù)平衡過(guò)的KSOM培養(yǎng)液中，繼續(xù)于37℃、5%CO2孵箱中進(jìn)行培養(yǎng)。

MⅡ卵母細(xì)胞去除顆粒細(xì)胞后移入4%多聚甲醛中，室溫孵育30min后移入含0.02% TritonX-100、1%牛血清蛋白(bovine serum albumin,BSA)的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)中，室溫孵育10min；然后用含7.5% BSA的PBS室溫下封閉30min，再移入100μg/mL的LCA-FITC中室溫下避光孵育30min進(jìn)行皮質(zhì)顆粒染色；而后再移入10μg/mL Hoechst中室溫下孵育30min進(jìn)行細(xì)胞核染色；最后用含0.1% 聚乙烯醇的PBS洗3次后封片，于倒置熒光顯微鏡下采集圖像。

1.4 卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平檢測(cè)

9只6周齡C57BL/6J雌鼠腹腔注射PMSG(7.5IU/只)，平均分三組，第一組48h后繼續(xù)給予HCG(7.5IU/只)，然后分別于HCG后1h、2h、3h將小鼠脫頸處死后取卵巢組織進(jìn)行取卵；第二、三組小鼠PMSG注射48h后立即脫頸處死取COCs，分別進(jìn)行體外培養(yǎng)，第二組IVM培養(yǎng)液添加FSH，第三組培養(yǎng)液添加KP52蛋白，分別培養(yǎng)1h、2h、3h。每組取5枚去除顆粒細(xì)胞的卵母細(xì)胞經(jīng)PBS洗3次后，加入500μL含1% Triton X-100的 0.1N HCl后于4℃冷藏20min，離心(4℃，10 000g)10min，收集上清液。96孔板每孔加入50μL樣品上清液或配制好的標(biāo)準(zhǔn)品和50μL cAMP Reaction Mix，混勻后37℃孵育30min，然后在405 nm處測(cè)量熒光強(qiáng)度。

1.5 統(tǒng)計(jì)分析方法

2 結(jié)果

2.1 不同濃度KP52蛋白作用后卵母細(xì)胞體外成熟率的比較

為探索IVM中KP52蛋白的最合適添加量，將COCs在不含KP52蛋白的M199培養(yǎng)基(對(duì)照組)和含有不同濃度(0.05nmol/L、0.125nmol/L、0.25nmol/L、0.5nmol/L)KP52蛋白的M199培養(yǎng)液中分別培養(yǎng)16～18 h 后觀察第一極體排出情況。結(jié)果如表1所示，與對(duì)照組相比，添加KP52蛋白可以明顯提高小鼠GV期卵母細(xì)胞的體外成熟率，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=59.725，P<0.01)，其中0.125nmol/L組與其他三種濃度的KP52蛋白組相比卵母細(xì)胞成熟率最高，因此后續(xù)實(shí)驗(yàn)均選擇0.125nmol/L為KP52蛋白的添加濃度。

表1 不同濃度KP52蛋白作用后卵母細(xì)胞體外成熟率的比較

2.2 不同促成熟因子作用后卵母細(xì)胞成熟率的比較

為研究KP52蛋白對(duì)卵母細(xì)胞體外成熟的促進(jìn)作用與傳統(tǒng)促成熟因子FSH之間的效果差異，將COCs在含有不同促成熟因子的體外培養(yǎng)液中培養(yǎng)16～18h后觀察第一極體排出情況。結(jié)果如表2所示，與IVM中的傳統(tǒng)促成熟因子FSH相比，KP52蛋白組卵母細(xì)胞成熟率較低，但聯(lián)合使用KP52與FSH可以明顯促進(jìn)卵母細(xì)胞的成熟(F=240.556，P<0.01)。

表2 不同促成熟因子作用后卵母細(xì)胞成熟率的比較

2.3 不同促成熟因子作用后囊胚形成率的比較

進(jìn)一步探索KP52蛋白對(duì)胚胎發(fā)育潛能的影響，將COCs在含有不同促成熟因子的體外培養(yǎng)液中培養(yǎng)成熟后獲得的MⅡ卵母細(xì)胞進(jìn)行孤雌激活，觀察其囊胚形成率。結(jié)果如表3所示，與單獨(dú)添加FSH組相比，單獨(dú)添加KP52蛋白組囊胚形成率顯著升高(F=66.204,P<0.01)，而聯(lián)合使用FSH和KP52蛋白組的囊胚形成率與單獨(dú)添加KP52蛋白組相比無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。

表3 不同促成熟因子作用后囊胚形成率的比較

2.4 不同促成熟因子作用后卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟度的比較

為探索KP52蛋白對(duì)卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟的影響，將COCs在含有不同促成熟因子的體外培養(yǎng)液中培養(yǎng)成熟后獲得的MⅡ卵母細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光染色，觀察皮質(zhì)顆粒分布情況。結(jié)果如圖1A所示，與FSH組相比，KP52組的MⅡ期卵母細(xì)胞胞質(zhì)中央的皮質(zhì)顆粒向卵母細(xì)胞膜下擴(kuò)散的更明顯(卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟標(biāo)志之一)。對(duì)各組胞質(zhì)中的皮質(zhì)顆粒密度進(jìn)行定量分析后也發(fā)現(xiàn)(圖1B)，KP52組MⅡ期卵母細(xì)胞胞質(zhì)中皮質(zhì)顆粒密度明顯降低(F=48.602，P<0.01)。

圖1 不同促成熟因子作用后卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟度的比較

2.5 不同培養(yǎng)方案中卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平的動(dòng)態(tài)變化

進(jìn)一步探索KP52蛋白促進(jìn)卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟的機(jī)制，通過(guò)檢測(cè)GV期卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平發(fā)現(xiàn)，雖然添加KP52蛋白進(jìn)行體外培養(yǎng)的卵母細(xì)胞中cAMP水平(0.06±0.006)顯著低于體內(nèi)成熟的卵母細(xì)胞(0.14±0.009)，但體內(nèi)成熟的卵母細(xì)胞和添加KP52蛋白進(jìn)行體外培養(yǎng)的卵母細(xì)胞中cAMP水平在2h 均有明顯的增高，而添加FSH進(jìn)行體外培養(yǎng)的卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平呈現(xiàn)下降趨勢(shì)，詳見(jiàn)圖2。

圖2 不同培養(yǎng)方案中卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平的動(dòng)態(tài)變化

3 討論

IVM技術(shù)自1991年在韓國(guó)被應(yīng)用并成功誕生一名嬰兒以來(lái)，全世界累計(jì)已有超過(guò)5 000例IVM試管嬰兒出生。IVM技術(shù)因其安全性高、成本低、卵巢過(guò)度刺激綜合征(ovarian hyperstimulation syndrome，OHSS)風(fēng)險(xiǎn)低等諸多優(yōu)勢(shì)受到廣泛關(guān)注，但研究發(fā)現(xiàn)與IVF相比，IVM卵母細(xì)胞在體外培養(yǎng)成熟過(guò)程中由于胞核、胞質(zhì)發(fā)育成熟不同步問(wèn)題導(dǎo)致其后續(xù)胚胎發(fā)育潛能和臨床妊娠率較低。為解決這一問(wèn)題，近些年大量研究者致力于優(yōu)化IVM培養(yǎng)液或IVM培養(yǎng)過(guò)程等相關(guān)研究[10]。

3.1 KP52蛋白對(duì)GV期卵母細(xì)胞體外成熟的影響

既往研究發(fā)現(xiàn)，哺乳動(dòng)物下丘腦中的kisspeptin蛋白可以通過(guò)與GnRH神經(jīng)元上的受體KISS1R結(jié)合發(fā)揮對(duì)下丘腦-垂體-性腺軸的調(diào)節(jié)功能，從而影響生殖系統(tǒng)的內(nèi)分泌功能[11]。除此之外，近些年越來(lái)越多的研究還發(fā)現(xiàn)，KISS1與KISS1R基因同時(shí)廣泛表達(dá)于外周生殖系統(tǒng)如卵巢組織、子宮組織等，并且發(fā)現(xiàn)在卵母細(xì)胞及其周邊的顆粒細(xì)胞膜表面大量表達(dá)KISS1R受體[12,13]，強(qiáng)烈提示kisspeptin蛋白對(duì)顆粒細(xì)胞和卵母細(xì)胞可能發(fā)揮直接調(diào)節(jié)作用。本研究通過(guò)在卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)基中添加重組小鼠KP52蛋白，探索KP52蛋白在IVM中對(duì)卵母細(xì)胞成熟的影響。結(jié)果顯示，KP52蛋白可以促進(jìn)卵母細(xì)胞的體外成熟，雖效果并未優(yōu)于傳統(tǒng)促成熟因子FSH，但KP52蛋白可以通過(guò)提高GV期卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平而促進(jìn)卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟，促進(jìn)卵母細(xì)胞胞質(zhì)、胞核成熟的同步化，提高IVM胚胎發(fā)育潛能。

3.2 KP52蛋白促進(jìn)IVM中卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟的可能機(jī)制

環(huán)磷酸腺苷(cAMP)在細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)中起著關(guān)鍵作用，卵母細(xì)胞中高濃度的cAMP通過(guò)抑制成熟促進(jìn)因子的激活維持減數(shù)分裂的停滯，促進(jìn)卵母細(xì)胞胞質(zhì)的發(fā)育和成熟，調(diào)節(jié)卵母細(xì)胞胞質(zhì)胞核成熟同步化[14-16]。Albuz F.K等人[16]通過(guò)在IVM培養(yǎng)前將牛或小鼠的COCs用腺苷酸環(huán)化酶激活劑forskolin處理后增加卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平，從而顯著提高了牛和小鼠的囊胚形成率、囊胚質(zhì)量、著床率等。我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也證明GV期卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平的提高可以通過(guò)促進(jìn)卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟而改善囊胚形成的數(shù)量和質(zhì)量。體外添加KP52蛋白可以模擬出卵母細(xì)胞體內(nèi)發(fā)育過(guò)程中出現(xiàn)的cAMP激增過(guò)程，從而延緩減數(shù)分裂的進(jìn)程，促進(jìn)胞質(zhì)的成熟，改善成熟卵母細(xì)胞的質(zhì)量和后續(xù)發(fā)育能力。臨床研究發(fā)現(xiàn)，KP54蛋白體內(nèi)注射后可以通過(guò)提高多囊卵巢綜合征患者顆粒細(xì)胞上FSH受體、黃體生成素(luteinizing hormone，LH)受體以及雌激素受體表達(dá)量，從而在不引起OHSS發(fā)生的情況下仍能獲得大量成熟卵母細(xì)胞[17,18]。但在體外培養(yǎng)環(huán)境下，kisspeptin蛋白對(duì)卵母細(xì)胞和顆粒細(xì)胞的作用和影響及可能機(jī)制仍處于未知的狀態(tài)。我們的研究結(jié)果提示體外添加KP52蛋白可能通過(guò)直接與顆粒細(xì)胞和卵母細(xì)胞上的KISS1R受體結(jié)合，促進(jìn)卵母細(xì)胞內(nèi)cAMP水平的升高，提高卵母細(xì)胞胞質(zhì)成熟度及成熟卵母細(xì)胞質(zhì)量，從而改善IVM卵母細(xì)胞胚胎發(fā)育潛能，提高IVM臨床妊娠率。

綜上所述，我們的研究結(jié)果為進(jìn)一步改善體外成熟卵母細(xì)胞質(zhì)量提供了新的思路和方法，初步揭示了kisspeptin蛋白對(duì)小鼠卵母細(xì)胞的體外成熟作用，為探索更加有效的IVM培養(yǎng)液提供了新的實(shí)驗(yàn)證據(jù)，有助于向人類(lèi)輔助生殖技術(shù)臨床轉(zhuǎn)化應(yīng)用。